方法論記事

アデノ随伴ウイルスベクターを用いたヒト化ラット肝臓への導入

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2026年8月31日

この記事について

要約

肝臓モデルへの導入 リン酸緩衝生理食塩水(PBS)を規定量加え、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター溶液を、5 mlあたり2.7 x 10¹³ベクターゲノムの最終濃度に調整する。カニューレからチューブを取り外し、肝臓を培地回路から切り離す。門脈のカニューレに5 mlシリンジを接続し、AAVベクター溶液全量(5 ml)を注入する。 注:オプションとして、フェノールレッド(5 µg/ml)を添加することで、肝臓全体へのAAVベクター溶液の分布を確認できる。 ポンプを作動させずに1時間インキュベートする。流速を段階的に上げ、1.25 ml/minで10分間、2.5 ml/minで20分間、そして3.75 ml/minで30分間とする。再細胞化したラット肝臓を6日間培養する。 注:1日おきに培地の3分の1を新鮮な培地(50 ml)と交換する。培養液をサンプリングし、乳酸脱水素酵素活性、培地サンプルのpH、ならびにグルコースおよび乳酸濃度などの生理学的パラメータを測定する。 Hiller, T., ヒト肝細胞癌細胞株HepG2を用いて再構築された三次元肝臓モデルにおけるウイルスベクターの研究 J. Vis. Exp., (2016)

このビデオでは、ヒト化ラット肝臓スキャフォールドにおけるアデノ随伴ウイルス(AAV)を介した遺伝子導入について実演します。ベクターは、受容体介在性エンドサイトーシスを通じて、蛍光レポーターと遺伝子サイレンシングRNAをコードする外来遺伝子を肝細胞に導入します。このモデルは、灌流による3D肝組織システムにおける効率的な導入を可能にします。

プロトコル

肝臓モデルの導入

  1. リン酸緩衝生理食塩水(PBS)を適量加え、アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクター溶液の最終濃度を5 ml中に2.7 x 1013ベクターゲノムに調整する。
  2. カニューレからチューブを取り外し、肝臓を培地回路から切り離す。門脈のカニューレに5 mlシリンジを接続し、AAVベクター溶液(5 ml)を全量注入する。
  3. 注:任意で、フェノールレッド(5 µg/ml)を添加し、肝臓全体へのAAVベクター溶液の分布を追跡する。
  4. ポンプを作動させずに1時間インキュベートする。流速を段階的に上げ、まず1.25 ml/minで10分間、次に2.5 ml/minで20分間、最後に3.75 ml/minで30分間流す。再細胞化したラット肝臓を6日間培養する。
  5. 注:1日おきに培地の3分の1を新鮮な培地(50 ml)に交換する。培養液をサンプリングし、乳酸脱水素酵素活性、培地サンプルのpH、ならびにグルコースおよび乳酸濃度などの生理学的パラメータを測定する。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
インキュベーターFraunhofer/ 
ペリスタルティックポンプFraunhofer/ 
グルーブ付きフランジDuran2439454 
透明OリングDuran2922551 
クイックリリースクランプDuran2907151 
フラットフランジ蓋Duran2429857 
スクリューネジ付きチューブDuran2483802 
スクリューネジ付きチューブDuran2483602 
シリコン製シーリングリングDuran2862012 
スクリューキャップDuran2924013 
スクリューキャップDuran2924008 
孔付きスクリューキャップDuran2922709 
孔付きスクリューキャップDuran2922705 
フィルターSarstedt831,826,001 
シリコンチューブVWR228-1500 
チューブコネクターIsmatecISM556A 
生体適合性チューブIsmatecSC0736 
T175培養フラスコGreiner bio-one660 160 
RPMI 1640BioWest SAS (Th. Geyer)L0501-500 
グルタミンBioWest SAS (Th. Geyer)X0551-100 
トリプシンBioWest SAS (Th. Geyer)L0940-100 
ペニシリン/ストレプトマイシンBioWest SAS (Th. Geyer)L0022-100 
ウシ胎児血清cc proS-10-M 
HepG2DSMZACC 180 

タグ

RNA