1. 組換えアデノ随伴ウイルス9(rAAV9)プラスミドを用いたHEK293細胞へのトランスフェクション 1.1 1 µg/µlの線状ポリエチレンイミン(PEI)溶液を調製する。PEI粉末を70~80 °Cに加熱したエンドトキシンフリーのdH2Oに溶解させる。室温まで冷却後、1 M HClを用いて溶液をpH 7.0に中和する。溶液をフィルター滅菌(0.2 µm)する。1 µg/µlのPEIストック溶液を分注し(1,40 µl/チューブ)、-20 °Cで保存する。 1.2 10%胎児ウシ血清(FBS)および1%ペニシリン/ストレプトマイシンを含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)でHEK293細胞を培養する。細胞は、37 °C、5 ± 0.5%二酸化炭素(CO2)インキュベーター内で培養する。 1.3 0日目に、トランスフェクションの18~20時間前に、90%以上のコンフルエントに達した細胞を1:2に希釈して10枚の150 mmディッシュに播種する。 注:1日目に細胞が90%コンフルエントに達している必要がある。 1.4 1日目に、PEIを用いて、rAAV9プラスミド(例:rAAV9.cTNT::GFPまたはrAAV6.U6::shRNAコンストラクト)、Ad-Helperプラスミド、およびAAV-Rep/CapプラスミドをHEK293細胞にトランスフェクションする。 1.4.1 90%コンフルエントの細胞10枚分として、AAV-Rep/Capプラスミド70 µg、rAAV9プラスミド70 µg、およびAd-Helperプラスミド20 µgを50 ml遠心チューブに混ぜ合わせる。 1.4.2 細胞のコンフルエント率が低い場合は、DNA量を比例して調整する。例えば、コンフルエント率が75%の場合、DNA量を比例して減らす(ステップ1.4.1に示した量の75/90倍とする)。具体的には、AAV-Rep/Capプラスミド 70 x 75/90 = 58.3 µg、rAAV9プラスミド 70 x 75/90 = 58.3 µg、およびAd-Helperプラスミド 20 x 75/90 = 16.7 µgを50 ml遠心チューブに混ぜ合わせる。 1.4.3 50 mlチューブに室温のDMEM(FBSなし)49 mlを加え、十分に混ぜ合わせる。 1.4.4 PEI:DNA比(v/w)が4:1となるように、PEI溶液1,360 µlを加える。十分に混ぜ合わせ、室温で15~30分間インキュベートする。 1.4.5 ステップ1.4.4で調製した混合液5 mlを各150 mmディッシュに加える(150 mmディッシュ10枚分で混合液50 ml)。 1.4.6 37 °C、5 ± 0.5% CO2インキュベーター内で60~72時間、細胞を培養する。 Ding, J., 他マウス心臓における遺伝子の過剰発現またはノックダウンのためのrAAV9の調製。 J. Vis. Exp. (2016)
このビデオでは、哺乳類細胞へのプラスミド導入による組換えアデノ随伴ウイルス粒子の作製について解説します。核内でのウイルスゲノムの複製およびカプシドの構築を促進するRep、Cap、およびヘルパータンパク質の協調的な発現について重点的に説明します。