方法論記事

ウイルス癌遺伝子のレトロウイルス導入による血管内皮細胞の不死化

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2026年8月31日

この記事について

要約

乳頭腫ウイルスE6およびE7遺伝子による血管内皮細胞(EC)の導入 注:一次ECの培養には通常、標準的な組織培養フラスコを使用する。しかし、ECの増殖が不十分な場合は、市販の培養フラスコの使用を検討すべきである。 一次ヒト真皮微小血管内皮細胞またはリンパ管内皮細胞を、EC増殖培地(EGM;EC基底培地[EBM]にEGM-2 BulletKit[胎児牛血清、ヒドロコルチゾン、ヒト線維芽細胞増殖因子-B、血管内皮細胞増殖因子、インスリン様増殖因子-1、アスコルビン酸、ヒト上皮細胞増殖因子、抗生物質、およびヘパリンを含む]を添加したもの)を用いて、T75細胞培養フラスコ内で、37 °C、5% CO2の加湿インキュベーターにて、コンフルエンスが約50%になるまで培養する。 導入のため、PA317 LXSN 16E6E7細胞を、10%胎児牛血清および抗微生物剤を添加したDulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) 中で、T150細胞培養フラスコを用いて、37 °C、5% CO2の加湿インキュベーターにて、コンフルエンスが約90%になるまで培養する。その後、16 mLの培地中で一晩インキュベートする。 PA317培地を、室温で300 × gで5分間遠心分離して清澄化する。 EC培養液からEGMを取り除き、細胞に12 mLの清澄化したPA317培地を重層させ、4時間インキュベートする。 注:16 mLの条件化培地を300 × gで5分間遠心分離するとコンパクトなペレットが形成されるため、その後の12 mLの清澄上清の慎重な回収によって撹乱されることはない。ただし、PA317 LXSN 16E6E7細胞の一次EC培養への混入が懸念される場合(パッケージング細胞株がECよりも急速に増殖するため)、転移前に条件化上清を0.45 µmフィルターでろ過することができる。 PA317培地の6 mLを新鮮なEGMに置換し、一晩インキュベートする。 ECに12 mLの新鮮なEGMを再添加し、さらに48時間インキュベートする。 ECを継代するには、培地を除去してカチオン不含のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)12 mLで洗浄し、市販の酵素解離液(例:TrypLE)3 mLを加えて37 °Cで3分間インキュベートする。 細胞懸濁液を15 mLコニカルチューブに移し、室温で300 × gで5分間遠心分離する。得られた細胞ペレットを新鮮なEGMで再懸濁し、1フラスコあたり最終容量12 mLのEGMとなるように、3本のT75フラスコに等量ずつ分注する。 E6およびE7が導入されたECを選別するため、G418を最終濃度200 µg/mLで2継代分添加する。その後、導入されたECを感染用プレートに播種するか、液体窒素中で凍結保存することができる。 McAllister, S. C., Hanson, R. S., カポジ肉腫関連ヘルペスウイルスによる細胞形質転換を研究するためのインビトロモデル J. Vis. Exp.(2017)

このビデオでは、HPV16 E6/E7オンコジーンを用いた初代内皮細胞のレトロウイルス導入について解説します。統合されたオンコジーンは腫瘍抑制因子であるp53およびRbを不活性化し、細胞の寿命を延長させます。G418による選択を行うことで導入細胞を濃縮し、形質転換研究に適した不死化内皮細胞培養株を得ることができます。

プロトコル

パピローマウイルスE6およびE7遺伝子による血管内皮細胞(EC)の導入

注記: 通常、初代ECの培養には標準的な組織培養フラスコを使用します。しかし、ECの増殖が不十分な場合は、市販の培養フラスコの使用を検討してください。

  1. 初代ヒト皮膚微小血管またはリンパ管内皮細胞(EC)を、加湿インキュベーター内、37 °C、5% CO2の条件下で培養する。 37 °C および5% CO22 EC増殖培地(EGM;EBM[EC基礎培地]にEGM-2 BulletKit[胎児牛血清、ヒドロコルチゾン、ヒト線維芽細胞増殖因子-B、血管EC増殖因子、インスリン様増殖因子-1、アスコルビン酸、ヒト上皮細胞増殖因子、抗生物質、ヘパリンを含む]を添加したもの)を用いて、T75細胞培養フラスコ内でコンフルエンスが約50%になるまで培養する。
  2. 導入には、PA317 LXSN 16E6E7細胞を、37 °C、5% CO2の加湿インキュベーター内で、 37 °C および5% CO22 10%胎児牛血清および抗菌剤を添加したDulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) 中で、T150細胞培養フラスコを用いて、細胞密度が約90%コンフルエントになるまで培養する。その後、16 mLの培地中で一晩インキュベートする。
  3. PA317培地を300 × gで遠心分離し、清澄化する。 × 室温で300 × g、5分間遠心分離する。
  4. EC培養液からEGMを除去し、12 mLの清澄化したPA317培地を細胞に重層して4時間インキュベートする。
    注: 16 mLのコンディショニング培地を300 × gで遠心分離すると × 5分間遠心分離するとコンパクトなペレットが形成されるため、その後の12 mLの精製上清の慎重な回収によってペレットが乱されることはない。しかし、初代EC培養へのPA317 LXSN 16E6E7細胞の混入が懸念される場合(パッケージング細胞株はECよりも急速に増殖するため)、回収した上清を0.45 µmフィルターでろ過した後に転写することができる。 0.45 µm 移入前に、0.45 µmフィルターでコンディション済み上清をろ過することができる。
  5. PA317培地の6 mLを新鮮なEGMに交換し、一晩インキュベートする。
  6. ECに12 mLの新鮮なEGMを添加し、さらに48時間インキュベートする。
  7. ECを継代するには、培地を除去して陽イオン不含リン酸緩衝生理食塩水(PBS)12 mLで洗浄し、市販の酵素解離液(TrypLEなど)3 mLを加えて、以下(の温度)でインキュベートする。 37 °C 3分間。
  8. 細胞懸濁液を15 mLコニカルチューブに移し、300 × gで遠心分離する。 × 室温で5分間、300 × gで遠心分離する。得られた細胞ペレットを新鮮なEGMで再懸濁し、3つの容器に均等に分注する。 × T75フラスコに、1フラスコあたり最終容量12 mLのEGMを分注する。
  9. E6およびE7が導入されたECを選択するために、G418を最終濃度が 200 µg/mL 2継代の間、G418を添加し、その後、導入されたECを感染用に播種するか、液体窒素中で凍結保存する。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
BCBL-1細胞NIH AIDS Reagent Program3233 
PA317細胞ATCCCRL-2203 
新生児皮膚微小血管内皮細胞LonzaCC-2505 
EBM-2 Basal MediumLonzaCC-3156 
EGM-2 BulletKitLonzaCC-3162 
RPMI   
DMEM   
カルシウムおよびマグネシウム含有PBS   

タグ

血管内皮細胞の不死化HPV16 E6 E7腫瘍抑制因子の不活性化G418選択初代血管内皮細胞細胞形質転換モデル抗生物質耐性選択細胞培養技術