ウイルスタイターの測定 96ウェルプレートを用い、未感染のHuh-7.5.1細胞を約3 x 10³ cells/wellで播種する。翌日、HCV RNAをトランスフェクションした細胞から回収した無細胞培養上清を、増殖培地を用いて10倍段階希釈し、Huh-7.5.1細胞に3連で接種する。感染から72時間後に、メタノール(-20 ºCで30分間)を用いて細胞を固定し、HCV NS5Aタンパク質を免疫染色する。細胞をPBSで3回洗浄し、IFAブロッキングバッファーでブロッキングを行う。ウサギ抗NS5Aポリクローナル一次抗体またはマウス抗dsRNAモノクローナル抗体J2を1:200(1 μg/ml)に希釈して使用し、4 ºCで5時間から一晩インキュベートする。一次抗体処理後、細胞をPBSで3回洗浄する。ヤギ抗ウサギIgG-488ポリクローナル二次抗体またはヤギ抗マウスIgG-594ポリクローナル二次抗体を1:1,000(1 μg/ml)に希釈して添加し、室温で1時間インキュベートする。細胞をPBSで3回洗浄し、蛍光顕微鏡で観察する。最高希釈倍率を用いてNS5A陽性フォーカスをカウントし、1ミリリットルあたりの平均フォーカス形成単位(FFU)数を算出する。HCVタイターについては図1を参照すること。 Ren, S., 他C型肝炎ウイルスの複製を解析するためのプロトコル。 J. Vis. Exp. (2014)
このビデオでは、細胞培養中の感染性C型肝炎ウイルスを定量するために用いられる蛍光フォーカスアッセイについて解説します。ウイルス含有上清の段階希釈、肝細胞がん細胞への感染、および抗体を用いた蛍光顕微鏡によるウイルス複製部位の検出について実演します。
