方法論記事

フローサイトメトリーを用いたウイルス誘発性ホスト転写抑制の解析

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2026年9月30日

この記事について

要約

Source: Kalveram, B., et al. Using Click Chemistry to Measure the Effect of Viral Infection on Host-Cell RNA Synthesis. J. Vis. Exp. (2013)

This video demonstrates the use of click chemistry and flow cytometry to measure virus-induced suppression of host-cell transcription. Mammalian cells are infected with a virus that expresses a nuclear virulence protein disrupting the host transcription factor complex, while control cells remain transcriptionally active. Incorporation of 5-ethynyl uridine labels newly synthesized mRNA, enabling quantification of transcriptional activity in infected and control cells through dual fluorescence detection.

プロトコル

1. 細胞をMP-12で感染させ、5-ethynyluridine (EU)を用いて新生RNAを標識する

  1. 293細胞を増殖培地(10%胎児牛血清、100 U/ml ペニシリン、100 μg/ml ストレプトマイシンを含むDMEM)を用いて6ウェル組織培養プレートに播種する。細胞が80 - 100%コンフルエントになるまで、37 °C、5% CO2の加温加湿インキュベーターで培養する。
  2. m.o.i. 3でMP-12を細胞に感染させる。未感染のウェルを少なくとも2つ用意する。そのうち1つのウェルは未感染コントロールとし、もう1つのウェルはステップ1.4でActD処理を行う。増殖培地を除去し、各ウェルへの添加合計量が400 μlとなるようにウイルスストックを希釈する。37 °C、5% CO2の加温加湿インキュベーターで1時間インキュベートする。
  3. 接種液を除去し、1ウェルあたり2 mlの新鮮な増殖培地を加える。37 °Cで12時間インキュベートする。

注意:本プロトコルを他のウイルスに応用する場合は、ラベリングおよび回収の最適な時点を決定するために、タイムコース実験を行うことが推奨されます。このタイムコース実験を行う際は、感染させる時間をずらして設定し、すべてのサンプルを同時にラベリング、回収、および染色できるようにしてください。

  1. 感染後12時間(12 h.p.i.)で、増殖培地を0.5 mM EUを含む培地に交換する。模擬感染(mock infected)させたウェルのうち1つに、5 μg/ml ActDも添加する。ActDはDNA依存性RNA合成を阻害するため、これを転写抑制のコントロールとする。その後、細胞をインキュベーターに戻す。
  2. 感染後13時間(13 h.p.i.)で、細胞をPBSで1回洗浄し、トリプシン処理により回収する。回収した細胞を、1 mM EDTAを含むPBS(PBS-EDTA)で3回洗浄する。

注意: このステップおよび以降のステップでは、細胞の破壊を防ぐため、500 - 1,000 x g より速い速度で細胞を遠心分離しないでください。細胞を沈降させるために1-2分間遠心分離します。

注意:クリック反応後に表面免疫染色の実施を予定している場合は、代わりにラバーポリシーマンまたは使い捨てセルスクレーパーを使用して回収してください。

  1. 細胞を 4% PFA 1 ml に再懸濁して固定し、RT で 30 分間インキュベートする。
  2. 1ウェルあたり 1 ml の PBS-EDTA で 1 回洗浄する。直ちにステップ 6 へ進む。

注意: RNAはこの段階で長時間放置すると分解するため、速やかにクリック反応に進むことが重要です。同様に、タイムコース実験を行う場合は、必ずすべてのサンプルのラベル付け、固定、染色を同時に行ってください。

2. ラベル化RNAを検出するためのクリック反応

  1. PBSで希釈した0.2% Triton X-100を0.5 ml加え、細胞を再懸濁して透過処理を行う。室温で10分間インキュベートする。

注記: ステップ2.1から2.3で使用するすべての溶液は、ヌクレアーゼフリーである必要があります。このステップで細胞が適切に沈降しない場合は、遠心分離時間を5分に延長してください。細胞をFACSバッファーに懸濁させると、沈降挙動が改善されます。

  1. 1 mlのPBSで1回洗浄する。

注意: このステップでは、クリック反応に必要なCu²⁺イオンをキレートしてしまうため、EDTAを使用しないでください。

  1. 200 μlのクリック染色溶液(100 mM Tris pH 8.5, 1 mM CuSO4, 蛍光色素標識アジド [最大励起/蛍光波長: 650/665 nm] 200nM, 100 mM アスコルビン酸)で細胞を再懸濁する。室温、暗所で1時間インキュベートする。

注記: クリック染色溶液は、このステップの直前に調製してください。1.5 M Tris pH 8.5、100 mM CuSO4、および 500 mM アスコルビン酸のストック溶液は 4 °C で保存可能です。ただし、黄色に変色したアスコルビン酸ストック溶液は廃棄してください。このステップで細胞が凝集した場合は、ピペッティングを数回繰り返して再懸濁してください。使用するフローサイトメーターで検出可能な蛍光色素を選択してください。また、クリック染色手順を行わない感染細胞のサンプルを1つ用意してください。これはフローサイトメーターのキャリブレーションに必要となります。感染細胞の半分を使用するか、ステップ 1.2 で感染細胞のウェルを追加してください。

FACSバッファー(1 mM EDTAおよび0.5% (w/v) BSAを含むPBS)で2回洗浄します。

3. ウイルス蛋白質の発現を検出するための免疫蛍光染色

  1. FACSバッファーで希釈した一次抗体(anti-RVFV、1:10,000)200 μlに細胞を再懸濁し、室温・暗所で1時間インキュベートする。

注: あるいは、このステップは4 °Cの暗所で一晩(O/N)で行うことも可能です。

注意: また、クリック染色手順を行うが免疫染色は行わない、非感染細胞のサンプルを1つ用意してください。これはフローサイトメーターのキャリブレーションに使用します。模擬感染細胞の半分を使用するか、ステップ1.2で非感染のウェルを追加してください。

注意: このプロトコルを別のウイルスに適用する場合は、まず一次抗体の最適な希釈倍率を決定してください。

  1. FACSバッファーで細胞を2回洗浄する。
  2. FACSバッファーで希釈した(1:1,000)二次抗体(蛍光色素結合抗マウスIgG[最大励起/蛍光波長:495/519 nm])200 μlに細胞を再懸濁し、室温・暗所で1時間インキュベートする。
  3. FACSバッファーで細胞を1回洗浄する。

注意: この時点で、細胞を 4 °C の暗所で一晩(O/N)保存することが可能です。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
5-エチニルウリジンBerry AssociatesPY 7563DMSOに溶解して100 mMストック溶液を調製
12 mm ラウンドカバーガラスFisherbrand12-545-82 
5 ml ポリスチレンチューブBD Biosciences352058 
アクチノマイシン D (ActD)Sigma9415DMSOに溶解して10 mMストック溶液を調製
Alexa Fluor 488 山羊抗マウスIgGInvitrogenA-11029 
ウシ血清アルブミン (BSA)Santa Cruzsc-2323 
CuSO₄SigmaC-8027H2Oに溶解して100 mMストック溶液を調製
DAPISigmaD-9542H2Oに溶解して5 mg/mlストック溶液を調製
DMEMInvitrogen11965092 
FBSInvitrogen16000044 
蛍光アジド (Alexa Fluor 594結合)InvitrogenA10270 
蛍光アジド (Alexa Fluor 657結合)InvitrogenA10277 
Fluoromount-GSouthern Biotech0100-01 
L-アスコルビン酸SigmaA-5960H2Oに溶解して500 mMに調製
ろ紙VWRbrand28333-087 
パラホルムアルデヒドSigma158127 
ペニシリン-ストレプトマイシンInvitrogen15140122 
poly-L-リシン (MW ≥ 70000)SigmaP1274 
Triton X-100SigmaT-8787 
Trizma baseSigmaT-1503H2Oに溶解して1.5 Mストック溶液を調製、pH 8.5
トリプシン-EDTAInvitrogen25200056 
蛍光顕微鏡  例:Olympus IX71
フローサイトメーター  例:BD Biosciences LSRII Fortessa

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