ジカウイルスゲノム複製アッセイ 12ウェルプレートを用い、1ウェルあたり1 x 10⁵個の未感染Vero細胞を2 mlの容量で播種する。翌日、無血清培地を用いて、低タイターおよび高タイターのウイルス接種液(感染多重度(MOI)を0.01および0.1とし、1ウェルあたり400 µl)を3連で調製する。模擬感染(モック感染)には、無血清培地のみ(1ウェルあたり400 µl)を使用する。接種したプレートを37 °C、5% CO₂条件下で4〜6時間インキュベートする。1時間ごとにプレートをゆっくりと左右に傾け、接種液を広げる。インキュベーション終了後、接種液を血清添加培地(1ウェルあたり2 ml)に交換する。48時間および96時間の時点で、免疫細胞化学(ICC)用のサンプルを回収する。メタノール固定した細胞を用いてICCを行う。固定した細胞を1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で3回洗浄し、ICCブロッキングバッファー(PBS含有3%ヤギ血清、3%ウシ血清アルブミン(BSA)、0.1% Triton-x 100)でブロッキングする。マウスモノクローナル抗dsRNA抗体J2(1 µg/ml)をブロッキングバッファーで1:100に希釈して使用し、4 °Cで一晩インキュベートする。細胞を1x PBSで洗浄し、二次抗体であるヤギ抗マウスIgG-594(1 µg/ml)をブロッキングバッファーで1:1,000に希釈して加え、室温で1時間インキュベートする。細胞を1x PBSで洗浄し、Hoechst染料を用いて核を染色し、蛍光顕微鏡を用いて100倍の倍率で細胞を観察する(図1)。 Contreras, D., 他ジカウイルス感染細胞培養系およびインターフェロンのin vitro予防効果 J. Vis. Exp. (2016)
このビデオでは、免疫細胞化学を用いて、感染した上皮細胞におけるジカウイルスのdsRNA中間体の検出について説明します。感染細胞を固定し、ブロッキング液でブロッキングします。その後、一次抗体および二次抗体を添加します。核を蛍光染料で染色し、ラベル化されたウイルスのdsRNAを蛍光顕微鏡下で観察します。
