1. Hh受容体導入遺伝子過剰発現のエレクトロポレーション:pEGFP-Smo
- 2 mm ギャップキュベットを使用したエレクトロポレーションでは、エレクトロポレーションの各反応について、1.2 × 106 マウス初代小脳顆粒細胞前駆細胞細胞と 10 μg の pEGFP-mSmo (Tris-EDTA バッファーまたは滅菌 dH2O 中の DNA ストック濃度を ~2-5 μg/μL に調整) 100 μL の Opti-MEM
手記:セルが不十分な場合は、総セル数を減らします(ただし、エレクトロポレーション効率が低下する可能性があります)。ただし、プラスミドの量やキュベットごとに使用されるOpti-MEMの総量を調整しないでください。実験に必要な総細胞数が1.5×106細胞を超える場合は、それに応じてエレクトロポレーション混合物をスケールアップし、複数のエレクトロポレーション反応を別々に行ってください。キュベットは最大5回再利用できます。
- コーティングされたカバースリップを含む24ウェル培養プレートの各ウェルに0.5 mLの培地を加えて、エレクトロポレーション後の細胞播種プレートを調製し、CO2インキュベーターで37°Cで保温します。細胞接着用のカバースリップを調製するには、オートクレーブ処理した12 mmガラスカバースリップを100 μg/mLのポリ-D-リジン(PDL、滅菌dH2O中の1 mg/mL)と37°Cで少なくとも1時間インキュベートします。カバースリップを同じPDL溶液に4°Cで使用まで保管してください。
- 必要な数の細胞を滅菌済みの1.5mL微量遠心チューブにピペットで移し、室温で200 × gで5分間回転させ、上清を捨て、細胞ペレットを200 μLのOpti-MEMに再懸濁します。Opti-MEMでこのステップを2回繰り返して、チューブ内に残留培地が存在しないことを確認します。
手記:24ウェルプレートの各ウェル/カバースリップについて、1.2-1.3×10個の6細胞/ウェルをエレクトロポレーションしてシードし、培養の翌日に~70-75%の細胞密度を得ます。
- エレクトロポレーションのパラメータを表1に示すように設定します。
- エレクトロポレーション反応を穏やかにピペットで動かしてよく混合し、長いP200チップを使用して、混合物の正確な量100μLを2mmギャップキュベットに移します。気泡の形成を避けてください。
- キュベットをキュベットチャンバーに入れます。
- エレクトロポレーターのΩボタン(材料の表を参照)を押して、インピーダンス値(~30-35)をメモします。電気インピーダンス値Ωが30〜35の範囲に収まるようにするには、100μLの正確な体積に固着してください。
- スタートボタンを押してパルスを開始します。
- 読み取りフレームに表示される測定電流とジュールの値を記録します。
- キュベットをキュベットチャンバーから取り外します。
- すぐに100μLの予熱培地をキュベットに加え、ピペッティングで2〜3回穏やかに上下させて再懸濁します。ステップ1.2.
で調製したコーティングされたカバースリップを含む24ウェルプレートに細胞懸濁液を直ちに移します
手記:細胞死を最小限に抑えるには、エレクトロポレーションの直後に細胞に播種します。
- CO2インキュベーターで細胞を37°Cでインキュベートします。細胞の剥離を避けるために、細胞を3時間放置します。
- 播種後3時間で、上清培地の半分を穏やかに吸引して廃棄し、浮遊する死細胞や破片を取り除き、同量の予熱培地と交換します。
- 細胞をCO2インキュベーターで37°Cでインキュベートします。
| ポーリングパルス設定 | トランスファーパルス設定 |
| マウスプライマリGCP | 一次ニューロン | マウスプライマリGCP | 一次ニューロン |
| 電圧 | 275ボルト | 275ボルト | 20 V | 20 V |
| 長さ | 1ミリ秒 | 0.5ミリ秒 | 50ミリ秒 | 50ミリ秒 |
| 間 | 50ミリ秒 | 50ミリ秒 | 50ミリ秒 | 50ミリ秒 |
| いいえ。 | 2 | 2 | 5 | 5 |
| Dレート | 10% | 10% | 40パーセント | 40パーセント |
| 極性 | + | + | ± | ± |
表1:スーパーエレクトロポレーターNEPA21 TYPEを用いたマウス初代GCPおよび初代神経細胞のエレクトロポレーションパラメータ