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動物モデルを含むすべての手順は、地元の施設動物管理委員会とJoVE獣医審査委員会によって審査されています。
>注:このプロトコルで使用される溶液のレシピについては、表1を参照してください。
>1. 線虫アッセイのための材料の準備
- C.エレガンス株の維持
- 線虫(AM141およびHA759)および大腸菌(OP50およびNA22)株を入手します(材料表を参照)。
- 大腸菌OP50を播種した線虫増殖培地(NGM)プレート上で、AM141の場合は20°C、HA759の場合は15°Cで線虫を維持します。
- 大腸菌OP50細菌培養物の調製
- Luria-Bertani(LB)ストリークプレートから大腸菌OP50のコロニーを1つ選択し、50 mLの液体LB培養物に接種します。
- OP50 バクテリアをシェーカーで 37 °C、200 rpm でインキュベートし、光学密度が 570 nm で ~0.5 になるまでインキュベートします (OD570)。
- OP50細菌培養液は4°Cで保存し、2週間以内にご使用ください。
- OP50細菌を用いたNGMプレートの調製
- 20 gの寒天、2.5 gのペプトン、3.0 gのNaCl、および975 mLの脱イオン水を1 Lのオートクレーブ可能なボトルに加えます。オートクレーブを121°Cで30分間保存します。
- 液体NGM寒天瓶をベンチに置いて~60°Cに冷却した後、1 mLの1 M CaCl2、1 mLの1 M MgSO4、1 mLの5 mg/mLコレステロール1 mL、および25 mLの1 Mリン酸カリウム(pH 6.0)の滅菌ストック溶液を加えます。
- 滅菌済みの90 mmシャーレに20 mLのNGMを注ぎ、プレートをベンチに置いて冷まして固めます。プレートを逆さまにして、室温のベンチで2日間乾燥させます。
- OP50細菌培養物200 μLを各NGMプレートに分注し、滅菌ガラスコーティングロッドで均一に広げます。蓋を閉め、プレートを37°Cで一晩インキュベートします。
- OP50を播種したNGMプレートは、カバー付きのプラスチック箱に室温で保存し、2週間以内に使用してください。
- 年齢同期したC.エレガンス集団の調製
- 妊娠した成虫の線虫を滅菌済みの1.5mL微量遠心チューブに集め、1000×gで1分間遠心分離する。3回洗浄し、線虫をM9緩衝液に再懸濁する。
- 等量の漂白剤溶液を加え、3〜5分間穏やかに攪拌し、解剖顕微鏡で15秒ごとに漂白を監視します
手記:漂白剤溶液は、使用前に10%NaOClと1MのNaOHを等量混合して新たに調製する必要があります(表1)。
- ほとんどの線虫が壊れたら、M9バッファーで希釈して消化を停止します。迅速に遠心分離して上清を取り除き、ペレットをM9バッファーに再懸濁して、洗浄を3回繰り返します。
- ペレットをS媒体に再懸濁します。卵が上清に残っている間、線虫の残留物を重力によって2〜3分間落ち着かせます。
- 上清を新しい滅菌マイクロ遠心チューブに吸引します。卵を1000 × gで1分間遠心分離して収集します。
- 上清を~80%廃棄し、卵を20mLのS培地が入った滅菌フラスコに移します。フラスコをシェーカーに入れ、卵を餌なしで120rpmで一晩インキュベートして、同期したL1線虫を得る。
2. PolyQを介した神経毒性アッセイ
- C.エレガンス(C.elegans)の試験サンプルによる治療
- polyQ 神経毒性アッセイ用の線虫を調製するには、HA759 の 300-500 同期 L1 幼虫を OP50 を含む 500 μL の S 培地 (OD570 は 0.7-0.8) と 5 mg/mL のアストラガラン (通常は各処理に 3 つのレプリケートウェル) を入れた 48 ウェルプレートの各ウェルに移します。
- プレートをパラフィルムで密封し、15°C、120rpmで3日間インキュベー
トします。
- 線虫を遠心分離により回収し、M9緩衝液で3〜5回洗浄する。線虫をM9バッファーに再懸濁して、ニューロンの生存および回避アッセイに使用します。
- 浸透圧回避アッセイ
- 食品不使用のNGMプレート(9 cm)を、中央の8 Mグリセロール(~30 μL)ラインでノーマル(N)ゾーンとトラップゾーン(T)に分けます。200 mMのアジ化ナトリウム(~20 μL)ラインをグリセロールラインから~1 cm離れた場所に広げて、グリセロールバリアを通過する線虫をゾーンTに麻痺させます。
- ~200個の線虫を、各グループごとに3つの複製プレートのゾーンNに移します。1%ブタンジオン(~2μL)をゾーンT(プレートの端から1cm)に滴下して、線虫を引き付けます。すぐにペトリ皿の蓋をして、23°Cで90分間インキュベートします。
- 顕微鏡下でNゾーンとTゾーンの線虫の数をスコアリングします。eq.
を使用して回避指数を計算します
回避指数 = N /(T + N)
ここで、NとTはそれぞれNゾーンとTゾーンの線虫の数です。データは、>3 回の独立した実験を代表する 3 回の反復の平均±標準偏差 (SD) として表されます。
- 対応のない両側 t 検定を実行して、アストラガラン群と対照群のデータを比較します。
表 1:
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ます
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してください
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します。
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します。
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します。
ます
します
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ます
します。
に加えます。
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| 解決 | 準備手順 | 貯蔵 |
| 1 M CaCl2 | 111 g CaCl2 | 室温で保存(RT) |
| dH2Oを1 Lに加え |
| オートクレーブ |
| 1 M リン酸カリウム (pH 6.0) | 108.3 g KH2PO4 | RTでストア |
| 35.6 K2HPO4 |
| dH2Oを1 Lに加え |
| オートクレーブ |
| 1 M MgSO4 | 246 g MgSO4・7H2O | RTに保管 |
| dH2Oを1 Lに加え |
| オートクレーブ |
| エタノール中のコレステロール(5 mg / mL) | コレステロール0.5g | -20°Cで保存 |
| エタノールを100mLに加え |
| オートクレーブしないでください! |
| 1 M クエン酸カリウム (pH 6.0) | 10.0gのクエン酸一水和物を加えます | RTでストア |
| 146.75 gの三カリウムクエン酸一水和物を加えます |
| dH2Oを1 Lに加え |
| オートクレーブ |
| 微量金属溶液 | 0.93 g EDTA二ナトリウム | RTで暗闇に保管 |
| 0.345 g FeSO4・7H2O |
| 0.1 g MnCl2・4H2O |
| 0.145 g ZnSO4・7H2O |
| 0.0125 gのCuSO4・5H2Oを加えます |
| dH2Oを500 mLに加え |
| オートクレーブ |
| 1 M NaOH | 4 g NaOH | RTに保管 |
| dH2Oを100 mLに加え |
| 漂白剤溶液 | 1 M NaOH 0.5 mL | 使用前に新たに準備してください |
| 10% NaOCl 0.5 mL |
| M9バッファ | 5 g NaCl | RTで保存 |
| 3 g KH2PO4 |
| 6 g Na2HPO4 |
| dH2Oを1 Lに加え |
| オートクレーブ |
| 1 mL の 1 M MgSO4 を添加 |
| >S 基礎 | 5.85 g NaCl | RTで保存 |
| 6.0 g KH2PO4 |
| 1.0 g K2HPO4 |
| dH2Oを973 mLに加え |
| オートクレーブ処理を行い、~60°Cまで冷却 |
| エタノールに5 mg / mLコレステロール1 mLを追加します |
| S 中 | S基礎 | RTで保存 |
| 1 M CaCl2 3 mL を添加 |
| 1 M MgSO4 3 mL を添加 |
| 10 mLの1 Mクエン酸カリウムを加え |
| 微量金属溶液10mLを加えます |
| すべてのコンポーネントはオートクレーブ処理されており、オートクレーブ処理は行っていません |
| 5 mg/mL アストラガラン | アストラガラン 0.1g | -80°Cでアリコートに格納 |
| S培地20mLを加えます |
| 0.22 μmシリンジフィルターによるフィルター |
| >200 mM アジ化ナトリウム | 1.3 g NaN3 | 4°Cで保存 |
| S培地100mLを加えます |
| 8 M グリセロール | 73.67 gグリセロール | RTに保管 |
| dH2Oを100 mLに加え |
| 10%ブタンジオンストック | 10 μL のブタンジオンと 90 μL の dH2O を混合 | RTでストア |
| 1%ブタンジオン | 10 μL のブタンジオンストックを 90 μL の dH2O | RTでストア |
| 1 L の Luria-Bertani (LB) 文化 | NaCl 10 g | RTで保存 |
| トリプトン 10 g |
| 酵母エキス5g |
| dH2Oを1 Lに加え |
| オートクレーブ |