放射性物質(RAM)の使用には、各機関の指定安全委員会による事前承認が必要です。
1. 細胞内でのアミノ酸の取り込み
- 12ウェル組織培養プレートの各ウェルに5 x 104個のST2細胞をプレートします。10% FBS、100 U/mL ペニシリン、および 0.1 μg/mL ストレプトマイシン (Pen/Strep) を含む α-MEM のプレートセル。ステップ1.12のノーマライゼーションの条件ごとの細胞数を定量化するために、細胞の追加ウェルをプレート化します。加湿細胞培養インキュベーターで細胞を37°C、5% CO2でインキュベー
トします。
- コンフルエントになるまで細胞を2〜3日間培養します。
- 実験当日は、以下の溶液を調製します:1x Phosphate Buffered Saline (PBS)、pH 7.4 および Krebs Ringers HEPES (KRH) buffer、pH 8.0: (120 mM NaCl、5 mM KCl、2 mM CaCl2、1 mM MgCl2、NaHCO3、5 mM HEPES、1 mM D-Glucose)。37°Cまで予温します。
- 培地を吸引し、1x PBS(pH 7.4.
1 mL)で細胞を2回洗浄します
手記:このプロトコールは、非コンフルエントな細胞を迅速に分裂させるのにも適しています。この場合、放射能を絶対細胞数またはDNA含有量のいずれかに正規化することが重要です。さらに、培養プレートまたはフラスコのサイズを大きくして、全体の細胞数とcpmの値を増やすことを検討してください。これは、個別に経験的に決定することが重要です。
- 1x PBSを吸引し、細胞を1mLのKRHで1回洗浄します。
- KRH.
1 mL あたり 4 μL の [1 μCi μL-1] L-[3,4-3 H]-グルタミンストックを希釈して、4 μCi/mL L-[3,4-3 H]-グルタミン作動培地を作製します
手記:放射性物質を使用する前に、所属機関の放射線安全室に連絡し、承認を受けてください。放射線に関連するすべての手順は、プレキシガラスシールドの背後で実行する必要があります。
- 4 μCi/mL L-[3,4-3 H]-グルタミン作動培地を含む0.5 mLのKRHと細胞を5分間インキュベートします。
- 放射性媒体を収集し、廃液容器に分注します。細胞を氷冷したKRHで3回短時間洗浄し、反応を終了します。放射性廃液容器に洗浄した洗剤をすべて集めて捨てる。
- 1 mLの1% SDSを各ウェルに加え、10倍に漸増して細胞を溶解し、均質化します。細胞ライセートを1.5 mLチューブに移します。細胞培養プレート、血清ピペット、ピペットチップは固形放射性廃棄物容器に捨ててください。
- >10,000 x gで10分間遠心分離し、上清を8 mLのシンチレーション溶液を含むシンチレーションバイアルに移します。シンチレーションバイアルを激しく振って混ぜます。チューブとピペットチップは固形放射性廃棄物容器に捨ててください。
- シンチレーションカウンターを使用して、放射能を1分あたりのカウント数(cpm)で読み取ります。シンチレーションバイアルはシンチレーションバイアル廃棄物容器に廃棄します。
- 細胞の残りの非放射性プレートから細胞をトリプシン化し、再懸濁し、カウントします(ステップ1.1を参照)溶解した放射性培養物中の細胞数を推定します。血球計算盤を使用して、各実験条件の非放射性ウェルあたりの細胞数をカウントします。ステップ 1.11 の cpm を、非放射性プレートからの推定セル番号に正規化します。
- 実験終了後、細胞培養フード、ベンチ、およびすべての器具を放射能除染スプレーで除染します。最後に、ワイプテストを実行して、作業領域が放射線を受けていないことを確認します。