方法論記事

特定のウイルスゲノム配列を検出するためのネストPCR

2025年7月8日

この記事について

要約

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出典:Feng, Y., et al.リッサウイルスの検出のためのユニバーサルネステッド逆転写ポリメラーゼ連鎖反応の評価。J. Vis. Exp.(2019年)。

このビデオでは、2つのプライマーセットを使用した2つの連続的なPCR増幅プロセスで構成される手法であるネストポリメラーゼ連鎖反応について説明しています。プライマーの第1のセットは、第2のセットの上流の配列にアニーリングすることを意図しており、その結果、特定の遺伝子配列の選択的増幅がもたらされます。このPCRは、通常のPCRよりも感度と特異性が高く、さまざまな疾患の検出技術として広く使用されています。

プロトコル

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1. ウイルスRNAの逆転写

  1. 表1に記載されているRT試薬を冷凍庫から取り出し、氷上に保管し、解凍して渦巻き状にしてから使用してください。
  2. 0.2 mL PCRチューブに12 μLのRT反応ミックスを、表1に示す試薬と共に調製します。必要以上に1つの反応サイズ以上のマスターミックスの量を調製することにより、ピペッティングのバリエーションを可能にします。
  3. 8 μLのサンプル、ポジティブコントロールRNA、またはネガティブコントロールを、テンプレートルームのPCRワークステーション内のRT反応ミックスに加えます。RTポジティブコントロールは、固定RABV株CVS-11(チャレンジウイルススタンダード-11)に感染した細胞培養物から抽出したRNAで、-80°Cで保存します。ネガティブコントロールには、RNaseフリーのddH2Oが含まれています。
  4. RTチューブの内容物を頂点で混合し、その後、短時間遠心分離します。
  5. 反応チューブをサーマルサイクラーにロードします。次の条件でcDNA合成プログラムを設定します:42°Cで90分間、95°Cで5分間、4°Cを保留にします。反応量を20 μLに設定し、RTランを開始します。

2. ファーストラウンドPCR

  1. 表2に記載されているPCR試薬は、使用までクリーンルームの氷上に置いておき、その後、解凍してボルテックスします。
  2. 1回目のPCRミックスを0.2 mL PCRチューブで調製し、表2に記載されている試薬を添加します。
  3. cDNAまたはプラスミドの2 μLサンプルを、テンプレートルームのPCRワークステーション内のファーストラウンドPCRミックスに加えます。PCR陽性コントロールは、上記のRT法のステップ1.3で述べたように調製したCVS-11 cDNAである。PCR陰性コントロールはddH2Oです。
  4. 密封されたチューブをPCRサーマルサイクラーに移し、表3にリストされているパラメータを使用してサイクルします。

3. 2回目のPCR

  1. 表4に記載されている試薬を使用して、0.2 mL PCRチューブで2回目のPCRミックスを調製します。
  2. 第1ラウンドPCR産物2 μLを第2ラウンドPCRミックスに加えます。さらに、第2ラウンドPCRの陰性制御としてddH2Oを含めます。
  3. ステップ2.4で示したのと同じパラメータを使用してPCRサーマルサイクリングを実行します。

表1:cDNA合成のための逆転写試薬。

コンポーネント反応あたりの容量 (μl)
dNTPs (2.5 mM )4
ランダムプライマー (50 μM)1.5
オリゴ(dT) 15 (50 μM)0.5
M-MLVバッファ(5倍)4
M-MLV逆転写酵素(200 IU/μL)1
RNasin(40 IU/μL)1
総ボリューム12

表2:第1ラウンドPCRの試薬。

% 名
コンポーネント反応あたりの容量 (μl)
dNTP(10 mM)1
Ex-Taq(5 U/μL)0.3
Taqバッファ(10倍)5
N127 (20 μM)1
N829 (20 μM)1
dd H2O39.7
総ボリューム48

表3:1回目および2回目のPCRのサイクリングパラメータ

名 名 名
温度 時間 サイクル
94°C2分間1
94°C30秒35
56°C30秒35
72°C40秒35
72°C10分間1
4 °C

表4:第2ラウンドPCRの試薬。

% 名
コンポーネント反応あたりの容量 (μl)
dNTP(10 mM)1
Ex-Taq(5 U/μL)0.3
Taqバッファ(10倍)5
N371F(20μM)1
N371R (20 μM)1
dd H2O39.7
総ボリューム48

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開示事項

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
利益相反は宣言されていません。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
ddHの2O
dNTP(10 mM)タカラ4019
dNTPs(2.5 mM)タカラ4030
Ex-Taq(5 U/μL)タカラRR001
マイクロ遠心チューブ
M-MLV逆転写酵素(200 IU/μL)タカラ2641Aさん
オリゴ(dT)15タカラ3805
PCRマシンバイオラッドT100
PCRチューブ
ピペッター
ランダムプライマータカラ3801
RNase阻害剤(40 IU/μL)タカラ2313Aの
RNaseフリーddH2Oタカラ9102
Taqバッファ(10倍)タカラ9152Aの
ヒント
ボルテックスミキサー
年 名 名 名

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タグ

Nested PCRViral Sequence DetectionPolymerase Chain ReactionPrimer AmplificationDNA AmplificationThermal CyclingAmplicon AnalysisOuter PrimersInner PrimersPCR Controls

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