我々はニワトリE4 statoacoustic神経節とE6脊髄の外植片を細かく分析し、文化に方法を示しています。外植片は、24時間3Dコラーゲンゲル中での無血清条件下で培養される。神経突起の応答性は、成長因子添加培地および蛋白質でコーティングされたビーズを使用してテストされています。
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我々はニワトリE4 statoacoustic神経節とE6脊髄の外植片を細かく分析し、文化に方法を示しています。外植片は、24時間3Dコラーゲンゲル中での無血清条件下で培養される。神経突起の応答性は、成長因子添加培地および蛋白質でコーティングされたビーズを使用してテストされています。
鶏内耳の感覚器官はstatoacoustic神経節(SAG)ニューロンの末梢プロセスによって神経支配されています。感覚器官の神経支配は成長している軸索および/ またはそれらの感覚器官のターゲット内での軌道に沿って位置する軸索ガイダンスの手がかり1と生存因子2の組み合わせによって異なります。例えば、古典的な軸索 ガイダンスシグナル伝達経路、セマフォリン-ニューロピリン、との機能的な干渉が耳軸索の3の経路変更を生成。また、ニューロトロフィン-3(NT - 3)と脳由来神経栄養因子(BDNF)を含む、内耳の感覚目標で表現されるいくつかの増殖因子は、、再びSAGの軸索4の経路変更につながる、トランスジェニック動物で操作されている。これらの同じ分子は 、in vitro 5,6 でひよこのSAGの神経細胞の生存と神経突起伸長の両方を促進する。
ここで、我々は現在、Uなのin vitroの方法を説明し、実証既知のようなWntsなどのモルフォゲンだけでなく、SAGの神経突起伸長と神経細胞の生存を促進するための重要な成長因子を含む可溶性タンパク質、にひよこのSAGの神経突起の応答性をテストするために歌う。このモデルシステムを使用して、我々は、分泌配位子は、SAGのニューロンの生存と神経突起伸長に及ぼすことができる効果について結論を出すと思っています。
SAGの外植片は、胎生4(E4)で解剖し、24時間無血清条件下での三次元コラーゲンゲル内で培養されています。最初に、神経突起の応答性は、タンパク質含有培地で培養外植片によってテストされます。その後、分泌される配位子の点源が神経突起伸長に対する指向性の影響を持つことができるかどうか尋ねるために、外植片は、タンパク質でコーティングされたビーズと共培養し、局所的に伸長を促進または抑制するためにビーズの能力についてアッセイされています。我々はまた、E6脊髄の外植片の解剖のデモ(プロトコル7を変更)し、文化が含まれています。我々は日常的にタンパク質とタンパク質に浸したビーズの生物活性を確認するために、脊髄の外植片を使用し、SAGの外植片と同一の培養条件下で、ニワトリ組織で種の交差反応性を確認する。 in vitroアッセイこれらは、特にin vivoでの研究を実行する前に、迅速にSAGの神経細胞に栄養(生存)または熱帯(方向性)効果を発揮する分子をスクリーニングするのに便利です。また、この方法は高いニューロンの生存8で、無血清条件下での個々の分子のテストが可能。
レシピ
チックリンガー
| 7.2グラム | NaClを |
| 0.23グラム | のCaCl 2 + 2H 2 O |
| 0.37グラム | 塩化カリウム |
| 0.115グラム | のNa 2 HPO 4 |
| 900ミリリットル | 水(組織培養グレード) |
注意:7.4にpHを調整する。水で1000mlに最終的なボリュームをもたらす。
10 × PBS
| 40グラム | NaClを |
| 1グラム | 塩化カリウム |
| 7グラム | のNa 2 HPO 4 |
| 1.2グラム | KH 2 PO 4 |
| 450ミリリットル | DEPC水 |
注意:7.4にpHを調整する。最終的にもたらす水500 mlにボリューム。ワーキング濃度(1X)は、このような18MΩ- cmの導電性と水を生成するためにミリポアのUV照射システムで得られるような組織培養グレードの水、9部で1部10X株式を希釈することによって行われます。
外植片保持培地のサグ
移植片培養の培地
脊髄解剖と保持培地
37から38で卵をインキュベート℃を解剖のツールと70%エタノールでSylgard解剖皿を滅菌する。料理やツールを解剖してもUVは一晩滅菌することができる。
1。ビーズの準備
2。 Statoacoustic神経節郭清術
注:SAGは、明視野、ベース照明とすぐに表示されている背袋、そしてventromedially投射と咽頭のアーチによって隠されて腹側蝸牛管とのほぼ中間、耳胞の前腹側縁に位置している。蝸牛管伸長し、その背腹寸法が徐々にハンバーガー - ハミルトンのステージ23から25 9の間にE4に増加します。
3。脊髄の解剖
4。神経突起の応答性をテストするために精製されたタンパク質と文化を外植片
注:私達は42時間に文化のSAGの外植片に同じプロトコルを使用している。
5。外植体タンパク質でコーティングされたビーズと共培養方向の神経突起伸長をテストする
6。免疫組織化学による神経突起伸長の可視化
7。代表的な結果

図1。精製NT - 3とE4ひよこのSAGの外植片上でNT - 3でコーティングされたビーズの神経突起促進効果の代表的な結果。 ニューロンの細胞体および神経突起β-チューブリンで免疫染色し、共焦点顕微鏡で10倍目的で撮像されたのサグ。 in vitroで 24時間後、SAGの外植片は、100の存在下でより大きな神経突起伸長を表示ng / mlの精製ヒトNT - 3は、コントロール(1A)と比較して、細胞培養培地(1B)に追加。 SAGのニューロンは、NT - 3の点源が局所的に神経突起伸長を促進できることを実証するIN100 ng / mlのNT - 3を浸したビーズと共培養した。外植片は長く表示され、側面の密度が高い神経突起の伸長反対側(1D)と比較してPBS(1C)に浸したビーズと文化をコントロールと比較してビーズが直面している植。スケールバー= 200μmの。

図2。 E6ひよこ脊髄上で精製したWnt5aやWnt5aコートビーズの神経突起促進効果の代表的な結果。 脊髄の外植片は、β-チューブリンを用いて免疫染色し、共焦点顕微鏡で画像化した。精製マウスWnt5a(400ng/ml)の存在下で成長の24時間後、ニワトリ脊髄の外植片からの神経突起伸長はWnt5a(2A)なしで培養した対照と比較して(2B)に増加した。 500 ng / mlのWnt5aに浸したビーズは、また文化(2C)を制御するために比較して神経突起伸長(2D)を推進し、脊髄の外植片の端から300から500ミクロンを置いた。類似の共培養の結果は、以前はWnt5a発現細胞8で発表された。スケールバー= 200μmの。
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我々は、無血清の条件下で、ひよこから、E4のSAGとE6脊髄の外植片を細かく分析し、文化に方法を提示する。このプロシージャは、現在SAGのニューロンの生存と神経突起伸長に対する様々な分泌配位子の効果を研究する私たちのラボで使用されています。このプロトコルの小説の側面は、培養の外植片とSAGの神経突起伸長への影響を研究する成長因子を染み込ませたビーズの使用のための無血清システムの使用を含む。私たちと同様のビーズ法はひよこ脊髄10に対して記載されている。伝統的に、ビーズは、古典的な軸索ガイダンス因子とモルフォゲンと研究に使用されている。ここで、我々は、ビーズアッセイはまた、神経突起伸長(図1)上に神経栄養因子(または他の増殖因子)の影響を調査するために使用できることを示している。
異なるアプリケーション用に変更または最適化する必要がある手順の重要なステップがあります。これらの手順はまたtroubのための重要な変数です。失敗したように見えるル - 撮影の実験。最初に、ニューロトロフィン-3(NT - 3)、毛様体神経栄養因子(CNTF)およびITS(インスリン、トラ...
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利害の衝突は宣言されません。
この作品は、健康グラントRO1DC002756とパデュー研究財団の国民の協会によって資金を供給された。我々は、実験と数値のヘルプについてはロドニーのマクフェイルとのアドバイスをドリス呉とWieseのチャンに感謝する。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 試薬 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
| 機器の | |||
| 解剖顕微鏡 | 我々は、明視野、ベース照明とライカM80実体顕微鏡を使用してください | ||
| ウォーマーをスライドさせ | CS&E. | コラーゲン重合 | |
| 鶏の卵のインキュベーター | |||
| 37℃/ 5%CO 2の加湿インキュベーター | |||
| 解剖の材料 | |||
| Sylgard&コピー、コーティングされたペトリ皿 | |||
| 24ウェル細胞培養プレート | コーニング | 3526 | |
| #5デュモン鉗子 | ファイン科学ツール | 11252〜30 | |
| #55デュモン鉗子 | ファイン科学ツール | 11295〜51 | |
| ステンレス製解剖用ピン | ファイン科学ツール | 26002〜10 | 胚ピニング、細かい解剖 |
| モリア穴あきスプーン | ファイン科学ツール | 10370〜17 | 胚の収穫/転送 |
| 200μlの広口ピペットチップ | ドットサイエンティフィック株式会社 | 118 - 96R | 外植片の転送 |
| E4とE6の鶏の卵 | &nbのSP; | ||
| チックリンゲル液 | 胚の収穫 | ||
| HBSS | シグマ | H8264 | 解剖のサグ |
| L15培地 | シグマ | L5520 | 脊髄解剖媒体 |
| ウシ胎児血清 | アトランタバイオ | S11150 | 脊髄解剖媒体 |
| Vannasはさみ | 世界の精密機器 | 501778 | 脊髄の解剖 |
| コラーゲン製剤 | |||
| ラットテールコラーゲンタイプI | BDバイオサイエンス | 354249 | 移植片培養 |
| 10 × PBS(滅菌) | ノイへコラーゲンをtralize | ||
| 1NのNaOH(滅菌) | コラーゲンを中和する | ||
| 蒸留水(滅菌) | コラーゲンを中和する | ||
| pH指示薬の論文(6.0〜8.1) | ワットマン紙 | 2629-990 | コラーゲンのpHを確認するには |
| 15 mlコニカルチューブ | ドットサイエンティフィック株式会社 | 818 - PG | |
| 500μlの広口ピペットチップ | ドットサイエンティフィック株式会社 | 119 - R100 | ピペットのコラーゲンへ |
| 移植片培養 | |||
| DMEM/F12培地 | シグマ | D8437 | 移植片培養の培地 |
| その1 | シグマ | I2521 | 培地サプリメント |
| ペニシリン - ストレプトマイシン | インビトロジェン | 15140-122 | 培地サプリメント |
| CNTF(ラット) | シグマ | C3835 | 培地サプリメント |
| NT - 3(ヒト) | シグマ | N1905 | 培地サプリメント |
| 精製マウスWnt5a | R&Dシステムズ | 645 - WN - 010 | |
| アッフィ - ゲルブルーゲルビーズ | Bio - Rad社 | 153-7302 | |
| 免疫組織化学 | |||
| パラホルムアルデヒド | シグマ | P6148 | 固定 |
| PBS | リンス | ||
| トリトンX - 100 | シグマ | T9284 | ブロッキング溶液 |
| ナトリウムアジド | シグマ | S8032 | ブロッキング溶液 |
| 子牛血清 | インビトロジェン | 16170-078 | ブロッキング溶液 |
| マウスモノクローナルIgG2b抗βチューブリン1 + II抗体 | シグマ | T8535 | ラベルの細胞体および神経突起 |
| のAlexa Fluor ® 488ヤギ抗マウスIgG2のBの抗体 | インビトロジェン | A21141 | βチューブリン抗体を検出 |
| テフロンマイクロスパチュラ | VWR | 57949-033 | ウェルからリリースコラーゲンゲル |
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