<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3126">根茎切開術後の背根軸索のライブイメージング</a></h2>
Andrew Skuba1, B. Timothy Himes2, 3, Young-Jin Son4 1テンプル大学、シュライナーズ病院小児科研究センターおよび解剖学細胞生物学部、2退役軍人省病院医学研究部、3ドレクセル大学医学部神経生物学および解剖学教室、テンプル大学医学部4シュライナーズ病院小児科研究センターおよび解剖学および細胞生物学科
後根潰れ後の一次感覚軸索を監視するためのin vivoイメージングプロトコルが説明されています。この手順では、広視野蛍光顕微鏡とthy1-YFPトランスジェニックマウスを利用し、PNSの4cmを超える軸索再生とCNSのインターフェースとの軸索相互作用の繰り返しイメージングを可能にします。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3241">細菌接着の研究におけるせん断応力の導入</a></h2>
Magali Soyer, Guillaume Duménil 感染の標的としての血管, パリ心臓血管研究センター, INSERM U970
感染過程における重要なステップは、病原体と宿主細胞との接着です。ほとんどの場合、この接着ステップは、流れる液体によって生成される機械的ストレスの存在下で発生します。細菌の接着性の研究における重要なパラメータとしてせん断応力を導入する手法について説明します。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=2837">Guide Wire Assisted Catheterization and Colored Dye Injection for Vascular Mapping of Monochorionic Twin Placentas(モノ絨毛膜双生胎盤の血管マッピングのためのガイドワイヤー支援カテーテル法と着色染料注入)</a></h2>
Eric B. ジェリン1, Samuel C. シェクター1, Kelly D. ゴンザレス1, 廣瀬信二郎1, HanminLee 1, Geoffrey A. Machin2, Larry Rand3, Vickie A. フェルドスタイン4 1カリフォルニア大学サンフランシスコ校外科小児胎児外科 2 アルバータ大学病理学部 3 カリフォルニア大学サンフランシスコ校産婦人科 4 カリフォルニア大学サンフランシスコ校放射線科 
出生後の単絨毛膜(MC)双胎盤の血管マッピングは、双子の循環間の血管接続を詳細に実証する手段を提供します。 これらの接続の不均衡は、双子間輸血症候群を含むMC双発の合併症の発症に極めて重要な役割を果たすと考えられています。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3208">着色染料を用いた単絨毛膜胎盤における血管吻合の正確で簡便な評価</a></h2>
エンリコ・ロプリオーレ1, Femke Slaghekke2, Johanna M. Middeldorp2, Frans J. Klumper2, Jan M. van Lith3, Frans J. ワルサー1, Dick Oepkes2 1ライデン大学医療センター小児科新生児科, 2ライデン大学医療センター産科胎児治療科, 3ライデン大学医療センター産科
双子間輸血症候群と双子貧血多血症の配列は、周産期医療における潜在的に壊滅的な問題です。 どちらの障害も一絨毛膜双生児にのみ発生し、胎盤血管吻合を通る不均衡な血流に起因します。私たちは、出生後の胎盤血管への着色染料注入を使用して血管吻合の存在を正確に評価するための簡単なプロトコルを提供します。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=2767">実験用ラットおよびマウスにおける外部寄生虫および内部寄生虫の診断</a></h2>
Christina M. パーキンソン1, アレクサンドラ・オブライエン1, Theresa M. アルバース1, Meredith A. サイモン1、Charles B. クリフォード1, Kathleen R. Pritchett-Corning2、3 1Research Animal Diagnostic Services、Charles River、2Research Models and Services、Charles River、3Department of Comparative Medicine、ワシントン大学
この記事では、ラットとマウスをスクリーニングして内分泌症または外来性を検出するためのさまざまな手順について説明します。 生きた動物での使用に適したものと動物の安楽死後に使用されるものの両方、いくつかの診断アッセイが実証されます。 ラットとマウスの寄生虫の同定に役立つ写真が含まれます。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3197">大動物モデルにおける心血管デバイスのための自家内皮前駆細胞播種技術と生体適合性試験</a></h2>
アレクサンドラ・E. Jantzen1, ホイットニー O. レーン2, Shawn M. ゲージ3、Justin M. Haseltine1, Lauren J. Galinat1, Ryan M. Jamiolkowski4, Fu-Hsiung Lin3, George A. トラスキー1, Hardean E. Achneck3 1デューク大学医用生体工学科 , 2デューク大学医学部 , 3デューク大学医学部外科 4 ペンシルベニア大学医学部 
チタンの血液接触性生体材料に自家細胞を播種し、生体適合性をテストする方法が説明されています。 この方法では、内皮前駆細胞とチタンチューブを使用し、外科的移植から数分以内にブタ静脈に播種します。 この技術は、他の多くの埋め込み型生物医学デバイスに適応できます。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3160">Langendorff灌流ウサギ心臓のマルチパラメトリック光学マッピング</a></h2>
<font color='black'>Qing Lou, Wenwen Li, Igor R. Efimov セントルイスのワシントン大学生物医学工学科
この記事では、パノラマイメージングシステムを使用してランゲンドルフ灌流ウサギ心臓の光学マッピング実験を行うための基本的な手順と、デュアル(電圧とカルシウム)イメージングモダリティについて説明します。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3275">マウス心臓の活動電位とカルシウム過渡現象の光学マッピング</a></h2>
<font color='black'>Di Lang, Matthew Sulkin, Qing Lou, Igor R. Efimov セントルイスのワシントン大学生物医学工学科
この論文では、無傷で単離されたランゲンドルフ灌流マウス心臓における膜貫通電位(Vm)および細胞内カルシウム過渡性(CaT)の光学マッピング中の解剖手順、機器のセットアップ、および実験条件について詳しく説明します。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3128">Dicyostelium Discoideumの走化性を制御するGタンパク質共役受容体(GPCR)媒介シグナル伝達イベントのイメージング</a></h2>
Xuehua Xu, Tian Jin 化学化性シグナルセクション, 国立アレルギー・感染症研究所, 国立衛生研究所
ここでは、走化性を調べるための詳細なライブセルイメージング法について説明します。 私たちは、移動する細胞におけるシグナル伝達イベントの時空間ダイナミクスを監視するための蛍光顕微鏡法を紹介します。 シグナル伝達イベントの測定により、GPCRシグナル伝達ネットワークが化学誘引物質の勾配検出をどのように達成し、真核細胞の方向性移動を制御するかをさらに理解することができます。
<h2><a href="https://www.jove.com/details.php?id=3173">比較種アプローチを使用して父方の反応の神経生物学を調査する</a></h2>
キャサリン・L. Franssen1, Massimo Bardi2, Kelly G. ランバート1 1ランドルフ・メイコン大学心理学部、2マーシャル大学心理学部
比較種アプローチにより、行動神経科学者は、特定の動物モデルの特徴と見なされる特定の行動に関連するさまざまな神経生物学的要因を探求することができます。 この技術は、密接に関連する種間で自然に発生する行動の違いを利用して、行動の表現を操作するための侵襲的な技術を必要としません。

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