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方法論記事

非侵襲的方法

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DOI:

10.3791/50498

2014年2月7日

この記事について

サマリー

アメリカンロブスター漁業として利用甲殻類漁業への漁業による変化、潜在的に交尾の成功が低下する、生殖ダイナミクスに影響を与える可能性があります。この研究の目標は、生理学的または機能的に成熟したことが女性のロブスターの交尾の成功を確認するための非侵襲的方法を開発することでした。

要約

北西大西洋で最も生産漁業の1であるにもかかわらず、多くのアメリカのロブスターの自然な生殖ダイナミクスについて不明である。悪用甲殻類の個体数(カニやエビ)での最近の研究は、成熟したメスによる精子の制限により、完全な生殖能力を達成することができない事情があることを示唆している。アメリカンロブスター漁業の異なる領域にこの可能性を検討するために、信頼性があり、非侵襲的方法は、海上で女性のロブスターを大量にサンプリングするために開発されました。この方法は、精子プラグの有無を判定し、精子の存在について調べることができる試料を撤回する雌の精液容器に鈍い先端が針を挿入することを含む。制御一連の研究は、この技術の信頼性をテストするために、ドックで、実験室で行った。こうした努力は、294の女性ロブスターを確認するために、サンプリングを伴うことプレゼンスOFA精子プラグは、信頼性の高い容器の中の精子の指標、したがって、交配した。本論文では、方法論とサンプリングされた合計の女性のサブセットから得られた結果の詳細を示します。ジョージの銀行とCape Annのマサチューセッツ(甲長サイズ範囲= 71〜145ミリメートル)からサンプリングされた230の女性ロブスターのうち、90.3%が精子陽性であった。一部の女性では精子の不在のための潜在的な説明は次のとおりです。未熟さ(生理学的成熟がないこと)、卵のクラッチを受精するために使用された後の精子のプラグの故障、と相手活性の欠如を。調査は女性のロブスターの交尾の成功を調べるため、この手法は、自然集団における生殖活動を文書化する分野で使用可能な信頼性の高いプロキシであることを示している。

概要

アメリカンロブスター( ロブスターのamericanus)は、北大西洋(〜3.9億ドルかけて評価され、2011年に56,000 MT、)1の中で最も生産的な漁業の一つです。しかし、野生の個体群におけるこの種の生殖ダイナミクスに関する理解の一般的な不足があります。積極的に再生に参加する人々の数とサイズを含む生殖出力のより正確な推定値を、生成することは、資源評価プロセスを改善することがあります。イセエビ2、ワタリガニ3、キングカニ4、石のカニ5、およびズワイガニたとえばによる精子の制限のため、完全な生殖能力を達成することを防止することができる女性はを含むいくつかの商業的搾取の海洋甲殻類の懸念として同定されている6。全体的な目標は、精子の制限が同様にアメリカのロブスター漁業のある領域に要因になるかどうかを判断することです。

NT ">(目に見えて無傷で、最近になって押し出さ卵)抱卵雌のロブスターと関係のないタグ付けの研究を行いながらロブスターの潜在的な精子の制限の問題の最初の兆候が観察された。〜これらの動物の15%が低下したことを示した漁師からレポートを奪還彼らの卵のクラッチわずか1〜2ヶ月後。作業仮説は、いくつかのロブスターは、結果として、7 '落ちた'、受精とされていなかった。その後の研究の予備的データはロブスターがあるという事実を確認した卵を運んでいたということでした彼らが成功して交配しておらず、これらの未受精卵にのみ〜1ヶ月8用に運ばれていても、卵を押し出しているため、自然集団における未受精卵を運ぶ人の女性の観察を考えると、我々は精子の制限はに貢献するかもしれない程度を決定しようとした性的に成熟したロブスターによる再生の最大下のレベル。この目標を達成するために、技術がspermatoを検出するために開発されました交配中に男性が堆積phore。

本論文では、ビデオは、女性のロブスターの交尾の成功を確認するために開発された非侵襲的な、簡単な方法を説明します。技術は海で、いずれかの研究や商業漁船に乗って迅速かつ確実に利用することができる。このサンプリング方法の詳細だけでなく、いくつかの代表的な知見は、技術の適用を例示するために提示される。

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プロトコル

パートA:フィールドサンプリングテクニック

1。女性の測定

  1. 各女性のロブスターは、甲長(CL)およびキャリパーのペアを使用して、最も近い1.0ミリメートルの第二の腹部のセグメントの幅を測定。
    注:(雌は卵を運ぶ)腹部の幅は性成熟の指標であるので、第2腹節が測定される。また、(ステップ1.2参照)に保存生殖成長段階で、これらのデータと一致するように脱皮段階を確認するために有利であり得る。
  2. 腹部の腹肢(ロブスター内の標準方法論のプロトコル)の1から小さな遠位部をクリップし、後に解剖顕微鏡9で観察するためのクリーンな海水で腹肢を保存する。
    注:このステップはまた、女性が自分の卵10を押し出すために準備をしている指標である腹肢、上のセメント腺の存在を明らかに可能性があります。

2。針INSErtion

  1. (、18 G、表1を参照)注射針を挿入〜45°( 図1)〜尾に向かって角度のついた精液のレセプタクルに1cmの。
    注:それは前に精液レセプタクル( 図1)の下部にある精子の最高濃度に到達する精子のプラグを介してプッシュされるように完全な精子プラグが付いているロブスターでは、針は、挿入の間に多少の抵抗を満たすことがあります。
    注:プラグの存在は、それ自体では、ロブスターが交尾している信頼性の高い指標である。いくつかの動物ではない精包が存在しない可能性があるため、ほとんど抵抗があってもよい、精包は、それがまだプラグに硬化していないか、またはそれが既に卵の一つ以上のクラッチを受精するのに使用されている可能性が小さい。

figure-protocol-1
図1。針の挿入やロブスター精液レセプタクルの眺め。精子サンプルを抽出するロブスターの精液レセプタクルに鈍先端が針を挿入。針の角度と深さは、両方の一貫性のあるサンプルを得るために重要である。右:解剖し、縦方向に分割されている精液のレセプタクルの眺め。精子が容器の下部(最深部)に位置している間、精子のプラグは、コンセントの上部または最も外側の部分を占めている。それは、この深さ以下のサンプリングはレセプタクルを穿刺し、血液で汚染されたサンプルをもたらすかもしれないことに注意することが重要である。 拡大画像を表示するには、ここをクリックしてください

3。精子プラグを貫通

  1. 最初の挿入後に、(体軸に垂直な)ほぼ垂直に、針の角度を急勾配にし、非常にゆっくりと作業を開始下向きレセプタクルに。
  2. 先端が尾の方に少し指摘されるような角度で傾いた針を保管してください。それが最終的にマトリックスに浸透するまで、この場合、針の先端は、プラグの上部を圧縮している。
  3. 抵抗をもう一度感じられるまで徐々に下方向に針をプッシュし続ける - これは、容器の底部にあり、どこでサンプルが採取されている。

4。精子の取り外し

  1. レセプタクルの底からのサンプル(しばしば固体プラグ材料、液状精子と他の流体)を外し、ラベルされた2.0ミリリットルのプラスチックチューブにサンプルを堆積させる。
  2. 冷たい海水〜0.1〜0.5ミリリットルとレセプタクルをフラッシュします。
  3. 同じチューブ内の流体と場所の約0.3ミリリットルを削除します。
  4. 氷上ストア精子サンプル彼らは実験室で検査することができるようになるまで。
    パートB:ラボでの精子サンプルの検討
    注:個々のLの精液コンセントから取り外しサンプル obstersは精子細胞が存在するか存在しないかどうかを決定するために検討すべきである。
  5. 各プラスチック製のチューブ、カバーガラスでガラススライド上の場所、および複合顕微鏡で100倍の視野から〜流体の50μLを削除します。
  6. としてサンプルスコア:希少数多く、または存在しない精子(本研究では、実際の精子数図2を定量化しなかった)。

figure-protocol-2
図2。ロブスター精子サンプル画像。40X倍率の複合顕微鏡で見たときに、女性の精液コンセントから取ったロブスター精子サンプルの画像。左の画像は、他の(右)スパースサンプル(スケールバー= 10μm)を示しているが、多数の精子が含まれていたサンプルを示しています。。JPG「標的= "_blank">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。

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結果

ここに報告されたデータは沿岸と沖合の場所の両方から発信され、女性ロブスターのサブセットでした。沿岸グループはCape Annの、マサチューセッツ州に近い沿岸海域で捕獲され、検査のための実験室にクーラーに輸送された44ロブスターで構成されていた。 186 offshoreロブスターの合計は、ジョージ銀行でキャプチャされ、ニューハンプシャー州における商業holding施設でサンプリングした。

精子サンプルは、すべての動物から得て、すぐ上に記載した方法に従って、精子の有無を調べた。このサブセット内のすべての人の女性の90.3%の合計は、その独創的なコンセントで精子を持っていた。驚くべきことに、精子を欠いていたものは、サイズ範囲の小さい方の端( 図3)である必要はありませんでした。

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ディスカッション

この動画と紙輪郭と雌ロブスターが正常交配しているかどうかを決定するための方法を実証する。このアプローチは、ユーザーの様々な海でのロブスターの大規模なサンプリングのために使用できることが十分に単純である。この方法は、交配の際にオスからメスのロブスターに渡される精液の容器に精包の存在を検出することに基づいています。これら精包は、部分的に、それらが容器内に堆積された直後の精子プラグに硬化するため、精子のプラグの存在はまた、交配の成功の指標である。この研究、ならびにその後の大規模な研究では、精子プラグのほとんどが精子それら11に関連付けられていたことを決定した。プラグの存在が交尾活動の信頼できる指標でありながら、しかし、その不在ではありません。

このサンプリング方法は、産卵のた​​め女性のロブスターの能力にマイナスの影響を被る場合、我々は完全に確信することはできませんが首尾よく彼らの卵のクラッチを受精さdは、損傷が精包またはレセプタクルのいずれかに最小限であることを示唆している、この精子の採取プロトコルへの側面があります。まだそこに卵の受精クラッチを押し出すいくつかの...

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開示事項

著者らは、利害の衝突を宣言していません。

謝辞

彼らの協力ははるかに高く評価されている - 著者は、そのボート我々はからサンプルを許可されたすべてのニューイングランドの商業lobstermanの複数形に感謝したいと思います。加えて、我々はリトルベイロブスターカンパニー(ニューイントン、ニューハンプシャー州)、私たちは彼らの施設でサンプリングを行うことが許さチャンプリンのシーフード(ポイントジュディス、RI)を感謝します。次のUNHの学生がこの研究を通して非常に貴重な支援を提供:ヘイリーホワイト、フランソワーズ·モリソン、サラHavener、オードラシャプー法、5月グロースを。このプロジェクトは、WHW(プロジェクト#のR/CFR-11)と共同研究会へのUNHマリンプログラム付与するには、NHのSeaGrantからの補助金によって支えられている。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
ノギスMitutoyo Digimatic500-196-20http://www.globalindustrial.com
3 ml Luer-LokシリンジBeckton-Dickinson309585www.bd.com
Monoject アルミニウム ハブ 鈍い針、18 G x 1ウェブスター獣医8881202348www.mywebstervet.com
2.0 ml プラスチック貯蔵チューブEppendorfwu-06333-72http://www.coleparmer.com
付き発泡スチロールクーラー
複合光学顕微鏡オリンパスBHシステムhttp://www.olympusamerica.com
カバースリップ75 mm x 25 mm、厚さ1 mm
使い捨てチップ
氷付きガラス側面 付きピペッター

参考文献

  1. FAO and Agriculture Organization of the United Nations). Fisheries and Aquaculture Department. , Available from: http://www.fao.org (2012).
  2. MacDiarmid, A., Butler, M. J. Sperm economy and limitation in spiny lobsters. Behav. Ecol. Sociobiol. 46, 14-24 (1999).
  3. Kendall, M. S., Wolcott, D. L., Wolcott, T. G., Hines, A. H. Influence of male size and mating history on sperm content of ejaculates of the blue crab Callinectes sapidus. 230, 235-240 (2002).
  4. Sato, T., Ashidate, M., Goshima, S. Effects of male mating frequency and male size on ejaculate size and reproductive success of female spiny king crab, Parolithodes brevipes. Mar. Ecol. Prog. Ser. 296, 251-262 (2005).
  5. Sato, T., Goshima, S. Impacts of male-only fishing and sperm limitation in manipulated populations of an unfished crab, Hapalogaster. 313, 193-204 (2006).
  6. Rondeau, A., Sainte-Marie, B. Variable mate-guarding time and sperm allocation by male snow crabs (Chionoecetes opilio) in response to sexual competition, and their impact on the mating success of females. Biol. Bull. 201, 204-217 (2001).
  7. Waddy, S. L., Aiken, D. E. Mating and insemination in the Ameri can lobster,Homarus americanus. Crustacean sexual behavior. Bauer, R. T., Martin, J. W. , Columbia University Press. NY. 126-144 (1990).
  8. Johnson, K. J., Goldstein, J. S., Watson, W. H. Two methods for determining the fertility status in early-stage American lobster, Homarus americanus, eggs. J. Crust. Biol. 31, 693-700 (2011).
  9. Aiken, D. E. Proecdysis, setal development, and molt prediction in the American lobster (Homarus). 30, 1337-1344 (1973).
  10. Aiken, D. E., Waddy, S. L. Cement gland development, ovary maturation, and reproductive cycles in the American lobster Homarus americanus. J. Crust. Biol. 2, 315-327 (1982).
  11. Pugh, T. L., Goldstein, J. S., Lavalli, K. L., Clancy, M., Watson, W. H. At-sea determination of female American lobsters (Homarus americanus) mating activity: Patterns vs. expectations. Fish. Res. 147, 327-337 (2013).
  12. Bauer, R. T. Phylogenetic trends in sperm transfer and storage complexity in decapod crustaceans. J. Crust. Biol. 6, 313-325 (1986).
  13. Talbot, P., Helluy, S. Reproduction and embryonic development. Biology of the Lobster: Homarus americanus. Factor, J. R. , Academic Press. NY. 177-216 (1995).
  14. Cooper, R. A., Uzmann, J. R. Ecology of juvenile and adult Homarus. The biology and management of lobsters. Cobb, J. S. 2, Academic Press. NY. 97-142 (1980).
  15. Estrella, B. T., McKiernan, D. J. Catch-per-unit-effort and biological parameters from the Massachusetts coastal lobster (Homarus americanus) resource: description and trends. NOAA Tech. Rep. NMFS. 81, (1989).
  16. Waddy, S. L., Aiken, D. E. Multiple fertilization and consecutive spawning in large American lobster, Homarus americanus. Can. J. Fish. Aquat. Sci. 43, 2291-2294 (1986).
  17. Atlantic States Marine Fisheries Commission (ASMFC). American lobster stock assessment report for peer review. ASMFC Stock Assessment. , Washington, D.C. (2009).

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再版と許可

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