設立<em&gt;インビトロ</em&gt;システムの細胞内挙動を研究するために、<em&gt;カンジダ·グラブラタ</em&gt;人間のTHP-1マクロファージにおける

サマリー

現在の記事は、真菌の病原性のメカニズムの知識を進めるために有用なツールとなり、人間のマクロファージとの通性細胞内のヒトの真菌病原体のカンジダ·グラブラタの相互作用を研究するためのin vitroでの細胞培養モデル系を確立するためのプロトコルの概要を説明します。

要約

細胞培養モデル系では、ホスト環境条件の近隣模倣場合、微生物病原体感染の特定の段階の研究のための動物モデル系を、安価で再現性があり、容易に操作可能な代替物として機能することができる。 、ホルボールエステル治療の際に、マクロファージに分化されたTHP-1ヒト単球細胞株は、以前に結核菌を含む多くの細胞内病原体の病原性戦略を研究するために使用されている。ここでは、in vitro細胞培養モデルを制定するためのプロトコルを議論ホスト貪食細胞と日和見人間酵母病原体のカンジダ·グラブラタの相互作用を記述するために、THP-1マクロファージを用いたシステム。このモデル系は、簡単、迅速、ハイスループット変異スクリーニングに適しており、まだ高度な機器を必要としない。典型的なTHP-1マクロファージ感染実験を回収し、細胞内を可能にするために、追加の24〜48時間で約24時間を要するコロニー形成単位ベースの実行可能性の分析のための富栄養培地上で増殖する酵母。他のin vitroモデル系と同様に、このアプローチの可能な限界は、ヒト宿主に存在する非常に複雑な免疫細胞回路に得られた結果を外挿することが困難なことである。しかし、これにもかかわらず、現在のプロトコルは、真菌病原体が、抗菌応答に対抗して生き残る/回避適応し、宿主免疫細胞の貧栄養環境下で増殖するように使用することができる戦略を解明することは非常に便利です。

概要

カンジダ種は、免疫不全患者の生命を脅かす侵襲性真菌感染症の¹の主要な原因である。 カンジダ·グラブラタ 、新興院内病原体は、地理的な位置^1-3に応じて、集中治療室の患者からの第二または第三の最も頻繁に孤立したカンジダ種である。系統発生的に、C.グラブラタ 、半数体出芽酵母、より密接に病原性カンジダ属に比べcerevisiaeの非病原性のモデル酵母サッカロミセスに関連しています。Cを含むカンス ^4。これと一致して、C.グラブラタ交配 、分泌されたタンパク質分解活性及び形態学的可塑性^4-5を含むいくつかの重要な真菌の病原性の特徴を欠いている。

C.もののグラブラタが菌糸を形成しない、それが生き残るためには^{、6〜8は、}それ^が独特の病因メカニズムを開発したことを示唆しているマウスおよびヒトのマクロファージ内で複製することができます。限られた情報は、C.戦略について提供されていますグラブラタは、栄養の乏しい細胞内マクロファージ環境を生き残るためには、酸化および⁵宿主免疫細胞によって取り付けられた非酸化宿主応答に対抗するために採用しています。関連マクロファージモデル系は、Cの相互作用を描写する前提条件である機能的ゲノムおよびプロテオミクスのアプローチを介してホスト貪食細胞とグラブラタ 。末梢血単核細胞（PBMC）及びヒトおよびマウス由来の骨髄由来マクロファージ（BMDMs）は、それぞれ、以前のC.の相互作用を研究するために使用されている宿主免疫細胞^7,9とグラブラタ 。しかし、PBMCおよびBMDMsを得ることが困難、その限られた寿命と異なる哺乳動物ドナー間本質的な変化は、これらの細胞の活用など多彩なモデルシステムを制限します。

ここでは、intracellulを研究するためのin vitro系の確立のための方法を説明しますCの ARの挙動ヒト単球細胞株THP-1由来マクロファージにおける細胞グラブラタ 。このプロトコルの全体的な目標は、簡単にホスト真菌病原体の相互作用の様々な側面を研究するために操作することができる、簡単で、安価、迅速、かつ再現性の細胞培養モデル系を制定することでした。

THP-1細胞は、以前は、細菌、ウイルス、および真菌^10-12を含む広範囲の病原体に対する宿主免疫応答を解読するために使用されている。単球THP-1細胞を維持するのに容易であり、ヒトの単球由来のマクロファージを模倣し、適切なマクロファージマーカー^13を発現するマクロファージ、ホルボールエステル治療の際に、区別することができる。 THP-1マクロファージモデル系の主な利点は、使いやすさと洗練された機器の必要がないことである。

ここで紹介するプロトコルは、HOSで、他の人間の真菌病原体の相互作用を研究する容易に適応される免疫細胞をトン。現在の手順はまた、ハイスループット変異スクリーニングを使用して、関心対象の病原体の病原性因子を同定するために用いることができる。この概念実証は、ヒトマクロファージ⁸にC.グラブラタの生存のために必要とされる56遺伝子のセットを同定するために、THP-1培養モデルシステムの使用の成功により例示した。

プロトコル

これは、Cを実行することをお勧めしますバイオセーフティ封じ込めレベル2（BSL-2）との実験室でグラブラタ感染実験。

1. THP-1マクロファージ単層の調製。
2. Cの準備グラブラタ細胞懸濁液。
3. CとTHP-1マクロファージの感染グラブラタ細胞。
4. コロニー形成単位アッセイによって貪食率および細胞内複製を測定する。
5. 共焦点レーザー走査顕微鏡を用いて細胞内複製のモニタリング。

1。 THP-1マクロファージ単層の調製

1. THP-1は急性単球性白血病を患っている¹⁴ 1歳の男児の末梢血由来のヒト単球細胞株である。 THP-1懸濁細胞株は、日常的に、10％FBS（ウシ胎児血清）を補充したRPMI-1640培養培地中、加湿5％CO ₂中37℃で維持する。ホルボール12 - myristaによる治療テ13 - アセテート（PMA、ホルボールエステル）がマクロファージにTHP-1単球細胞の最終分化をもたらす。重要なことに、PMA処理は細胞生存率に影響を与えず、分化した細胞は分裂しない。
2. シードRPMI-1640完全培地中で100mmの培養皿中約1.5×10 ⁶個のTHP-1単球（10％血清、2mMグルタミンおよび1×抗生物質を補充したRPMI-1640培地、10ミリリットル/ディッシュ）細胞を、37℃で増殖およびlet 2日間、5％CO ₂でCが°。
3. THP-1細胞を8×10 ⁵細胞/ mlの密度に達した後、細胞培養層流フードに培養皿に移し、穏やかに沈降した細胞を再懸濁するためにそれを旋回させる。
4. 細胞懸濁液をピペットで、4分間1,000 rpmで（130×g）で15ミリリットル滅菌チューブと遠心分離機に入れる。上澄み液を捨て、5ミリリットルの新鮮な、予め温め、RPMI-1640完全培地中のTHP-1細胞ペレットを一時停止。
5. 血球計数器を用いて細胞を列挙し、セル画を希釈予め加温したRPMI-1640完全培地で10 ⁶細胞/ mlの最終濃度までリットルの懸濁液
6. （ホル12 - ミリステート13 - アセテート溶液は、ジメチルスルホキシドで製造）10ミリリットルのTHP-1細胞懸濁液（最終濃度16 nM）を160 mMのPMAストックを1μLを加え、よく混ぜる。 24ウェル組織培養プレートの各ウェルに細胞懸濁液1mlを分配し、12時間、5％CO _2、37℃で維持したインキュベーター中でプレートをインキュベートする。
7. 古いメディアを削除するには、1ミリリットルのRPMI-1640完全培地を予め暖め追加し、細胞を5％CO ₂中37℃で12時間かけて回復することができます。
8. 懸濁液中のその楕円形のTHP-1単球細胞は平らに、紡錘型、付着マクロファージに分化したことを確認するために倒立顕微鏡下で細胞を観察します。これらの分化した細胞は、現在で調査を行って準備ができているグラブラタ感染実験。

2。 Cの準備グラブラタ ＆＃160;細胞懸濁液

C.グラブラタ野生型株のBG2は、THP-1マクロファージを感染させるために使用される。C.グラブラタ細胞は、液体YPD（酵母エキス（1％）、ペプトン（2％）、デキストロース（2％））培地中で日常的に培養される。固形YPD培地は、オートクレーブ処理前に培地、2％寒天を添加することにより調製される。

1. Cの文化を準備するにはグラブラタ 、滅菌された使い捨ての耳で寒天プレートからシングルコロニーを上にピックアップし、10ミリリットルにYPD液体培地に接種し、30℃で（200回転）しながら14〜16時間インキュベート
2. テーブルトップマイクロ遠心で5分間4,000 rpmで（1,800×g）で遠心この培養物（1ml）を、滅菌PBS（リン酸緩衝食塩水、pH 7.4）で3回細胞を洗浄し、1mlのPBS中に細胞ペレットを再懸濁する。
3. C.のOD _600を測定しますグラブラタ細胞懸濁液を2×10 ⁶細胞/ mlの密度を得るために、滅菌PBSの適切な容量で希釈した（OD ₆₀₀= 0.1）。あるいは、所望の細胞密度を、血球計数器を用いて酵母細胞を計数することによって達成することができる。

3。 CとTHP-1マクロファージの感染グラブラタ細胞

1. 50μLCを追加0.1のMOI（感染多重度）を取得し、5％CO _2、37℃でプレートをインキュベートするTHP-1マクロファージ（24ウェル培養プレートのウェルに播種10 ⁶細胞）にグラブラタ細胞懸濁液。
2. 実行可能な酵母数を決定するために、50μlの温度を希釈グラブラタ細胞懸濁液を滅菌PBS中で100倍にYPD固体培地上に100μlをプレート。 30℃で培養すると、手動で1〜2日後に現れる酵母コロニーの数を数える。これらの数は、今後、0時間のC.として呼ばれるグラブラタのCFU（コロニー形成単位）。
3. CとTHP-1細胞の2時間の共培養の後24ウェル組織培養プレートを反転させることにより細胞グラブラタ 、廃棄培地iを貯水池Naおよびnonphagocytosed細胞外Cを削除するに予熱無菌PBSで3回優しく洗うグラブラタ細胞。 PBSで穏やかな洗浄は、THP-1マクロファージ単層に損傷を引き起こすことなく、全ての細胞外酵母の完全な除去を達成するために必要不可欠である。

4。コロニー形成単位アッセイを経由して貪食率と細胞内複製の測定

1. 溶解温度 1ml中グラブラタ感染THP-1マクロファージ2分間の滅菌H ₂ O、ならびにマクロファージから破片を除去し、微量遠心管中で細胞溶解物を収集するために穏やかにこすり。完全なマクロファージ溶解の微視的な検証は、すべての内部化酵母の回復のために極めて重要である。
2. 滅菌PBS中の溶解液の100倍希釈液を調製、YPD固体培地上に100μlをプレートに30℃で培養する
3. 1-2日後、手動C.数を数えるそのAP グラブラタコロニーYPD培地にしまっ、希釈倍率（2時間のCFU）で乗算し、Cのパーセントを指す貪食率を計算する以下の式を用いて2時間の同時インキュベーションの後にTHP-1マクロファージによって摂取されるグラブラタ細胞。
   ％の貪食= [（2時間でのCFU）/（0時間でのCFU）]×100
4. C.の細胞内複製の速度を測定するためにTHP-1マクロファージにおけるグラブラタ細胞が、ポイントは、感染、すなわちポスト異なる時間に、細胞内の酵母を収集します。 4、6、8、10、12、および24時間、3.3から4.3の手順を繰り返すこと。
5. Cの倍生存/複製を計算する2時間（貪食酵母）におけるそれらと任意の所与の時点での合計のCFUを分割することによりTHP-1マクロファージにおける細胞グラブラタ 。

5。共焦点ラスを使用して、細胞内複製を監視するER走査顕微鏡

1. 第1節に記載の手順に従って、2つの4ウェルチャンバースライドの各ウェル内のPMA処理した5×10 ⁵ THP-1細胞を播種し、12時間、5％CO _2、37℃でインキュベートする。
2. あらかじめ温めておいたRPMI-1640完全培地で古い培地を交換し、細胞は12時間、PMA処理から回復することができます。
3. 調製GFP（緑色蛍光タンパク質）タグ付きC.グラブラタ細胞懸濁液2章で説明され、1のMOIのTHP-1マクロファージに感染するように。 C.もしGFPを発現するグラブラタ株が利用できない、FITC（フルオレセインイソチオシアネート）で標識された酵母細胞は、感染を転記すなわち初期の事象を監視するために使用することができる。 2時間で貪食率およびファゴリソソーム成熟。
4. 5％CO _2、37℃で2時間スライドをインキュベート培地を廃棄し、滅菌で3回洗浄するために注意深く反転し、PBSで予め温め。
5. RPMI-1640完全MEDIを予め温め500μLを追加UM 1スライドの各チャンバーにし、22時間、5％CO _2、37℃で静置する。
6. 2時間Cを修正するにはグラブラタ感染THP-1マクロファージは、他のスライドの各チャンバーに（PBS中で調製）3.7％ホルムアルデヒドを500μlを加え、暗所で20分間室温で静置する。
7. 洗浄は、PBSで3回スライドさせ、500μlのトリトン-X（0.7％）を添加し、暗所で5分間室温でインキュベートする。
8. PBSで洗浄スライド3X、暗闇の中で3〜5分間乾かし培養スライドや空気から容器を外します。
9. 注意深くスライド回避気泡形成にDAPI（4 '、6 - ジアミジノ-2 - フェニルインドール）を含むベクタシールド封入剤を用いてカバースリップをマウント。優しくキムワイプで過剰な液体を除去し、マニキュアでカバースリップの端をシールします。使用するまで4℃の暗所に保管してスライド。
10. 繰り返しますTHP-1細胞24時間後に感染を処理するために5.4および5.6から5.9を繰り返します。
11. レーザ走査confoを用いて画像セルCAL顕微鏡（60X油浸対物レンズ、DAPI及びGFP染色のための405 nmおよび488 nmで励起、それぞれ）。

結果

CとPMA処理したTHP-1マクロファージの感染分析グラブラタ野生型（wt）細胞は、wt細胞を、2時間の同時インキュベーション後に55〜65％の割合でマクロファージによって貪食されたことを明らかにした。さらに、C.グラブラタ細胞は、THP-1マクロファージによる殺傷に抵抗することができましたし、中程度の5を受けた- THP-1マクロファージ⁸と共培養の24時間後のCFUでの7倍に増加した。 THP-1マクロファージあたりの細胞内酵母細胞の数をかけ七から一二に1つまたは2つの増加を特徴とTHP-1マクロファージにおけるGFP発現プラスミドで形質転換された野生型細胞の細胞内複製もまた、共焦点蛍光顕微鏡で確認した24時間の（ 図1）。

ディスカッション

自然免疫系は、日和見真菌感染症の制御に重要な役割を果たしている。マクロファージは、摂取および真菌病原体の破壊によって防衛を抗真菌に貢献。このように、生存および/またはマクロファージの抗菌機能に対抗するために必要な要因の解明は、真菌の病原性戦略の我々の理解を進める。この文脈において、我々は、ヒトの日和見真菌病原C.の相互作用を特徴づけるために、ヒト単球細胞株THP-1由来マクロファージを用いたin vitro細胞培養モデル系を確立したホスト貪食細胞とグラブラタ 。このTHP-1マクロファージモデル系が正常C.を同定するために使用されてきたが全身性カンジダ症⁸のマウスモデルにおいて弱毒化した病原性を表示された縮小生存とグラブラタ変異体は、このシステムの妥当な制限は、その孤立したコンテキストで、このようにして、得られた結果ではないかもしれない常に複雑な哺乳動物宿主の免疫系にも適用できる。また、このシステムは、生細胞イメージング方法とは異なり、どちらTHP1マクロファージによって取り込ままたは食作用の間に殺されていな...

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
THP-1	American Type Culture Collection	TIB 202	ヒト急性単球性白血病細胞株
RPMI-1640	Hyclone	SH30096.01	THP-1細胞の維持用
Phorbol 12-ミリスチン酸 13-アセテート	Sigma-Aldrich	P 8139	注意:危険な
YPD	BD-Difco	242710	増殖用 Candida glabrata
細胞 ホルムアルデヒド	Sigma-Aldrich	F8775	C. glabrata-感染 THP-1 マクロファージの固定用
リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)			緩衝液 (137 mM NaCl、10 mM リン酸、2.7 mM KCl、  pH 7.4) 洗浄用生理
食塩水-クエン酸ナトリウム (SSC)			洗浄用バッファー(3 M NaCl、0.3 Mクエン酸ナトリウム、20倍濃度)
プレハイブリダイゼーションバッファー			(50%ホルムアミド、5x Denhardt'ハイブリダイゼーション用5x SSC、1% SDS)
VECTASHIELD封入剤	Vector Labs	H-1200	共焦点顕微鏡用スライドの埋込み用
<-sup>32P-labeled α-dCTP	JONAKI-BARC	LCP-102	シグネチャタグの放射性標識用
100 mm組織培養皿	Corning	430167	To culture THP-1 cells
24-well tissue culture plate	Corning	3527	THP-1マクロファージにおけるC. glabrata感染研究の実施
4チャンバー組織培養処理ガラススライド	BD Falcon	REF354104	To image C. glabrata-infected THP-1 macrophages
Hemocytometer	Rohem India		の列挙用
テーブルトップ微量遠心機	Beckman Coulter	Microfuge 18	マイクロチューブ内の細胞のスピンダウン用
テーブルトップ遠心分離機	レミ	R-8C	15mlチューブ内の細胞のスピンダウン用
分光光度計	アマシャム・バイオサイエンス	ウルトラスペック10	酵母細胞の吸光度を監視するため
プレートインキュベーター	ラボテック	冷蔵	C. glabrata細胞を育てる
シェイカーインキュベーター	ニューブランズウィック	州Innova 43	C. glabrata細胞を増殖させるには
ウォータージャケット CO2  インキュベータ	Thermo Electron Corporation	Forma series 2	THP-1細胞を培養するには
共焦点顕微鏡	Carl Ziess	Ziess LSM 510 meta	C. glabrata-infected THP-1 macrophages
Compound顕微鏡	Olympus	CKX 41	観察するには C. glabrata および THP-1 マクロファージ
PCR マシン	BioRad	DNA エンジン	入力および出力ゲノム DNA
ハイブリダイゼーション オーブン	Labnet	Problot 12S	ハイブリダイゼーション用
PhosphorImager	富士フイルム	FLA-9000	ハイブリダイズドメンブレンのスキャン用
Thermomixer	Eppendorf	Thermomixer Comfort	放射性標識シグネチャタグの変性用
ゲルドキュメンテーションユニット	Alphainnontech	Alphaimager	アガロースゲル中の臭化エチジウム染色DNAを可視化