動物モデルは、病原体のネイティブホストでは通常実用的ではないと考えられることを達成するために、研究室全体で一般的に使用されています。 動物からのミルク収集により、科学者は垂直伝播、受動免疫、乳腺生物学、授乳など、生殖の多くの側面を研究する機会を得ることができます。これらの研究に十分な量の牛乳を得ることは、特に小動物モデルからは困難な作業です。ここでは、マウスとリーブスのムンジャックジカのミルク収集のための安価で簡単な方法を、特別な機器や広範なトレーニングを必要としない方法を示します。 この特定の方法には、2人の研究者が必要です:1人は牛乳を搾出して動物を安定させるため、もう1人はMuntjacまたはマウスモデルから適切な容器に牛乳を収集することです。 マウスモデルでは、P-200ピペットマンと対応するピペットチップの使用も必要です。 この方法は低コストで比較的簡単に実行できますが、最適な牛乳収集には動物に麻酔をかける必要があることを研究者に通知する必要があります。
動物モデルは、 インビトロ分析によって得られることができない疾患病理への洞察を提供しています。最も有効な結果を提供するためには、疾患および対象の種と密接に関連して動物モデルを使用することが重要である。たとえば、リーブス」キョン( キョン )、小アジアの鹿1,2、およびシカのプリオンタンパク質(CerTgPrP)3を発現するトランスジェニックマウスは、シカ科の種のための有用な動物モデルである。両種は、年間を通して繁殖が可能、多発情性のある、したがって、妊娠関連組織および体液のための一貫性のあるソースは、シカ科生物学の特定のメカニズムを研究する。牛乳の研究では、ヒトより動物モデルで達成より簡単に(かつ安価に)されているアプリケーションの広大な配列を持っている。研究者たちは、1)感染症伝達の潜在的な原因として、牛乳や初乳を調査できた、develoの中で子孫に母親から転送された2)免疫グロブリン受動免疫4および3)ラクトフェリンのpment、研究者は、現在、商業的に5を生産しようとしている、受動免疫に関与するヒトの母乳中に見出されるタンパク質。
小さな動物から牛乳のかなりの量を収集することは困難な作業であることを証明することができます。ロジャースは、その後、マウスを使用したラット6からミルクを収集するための手法を提案した。 DePeters及びハービ次いで真空源に取り付けられた搾乳ユニット(の構築を必要とする牛乳の収集、パスツールピペットに取り付けられたゴム製のピペット球によって産生さ手動生成された真空を用いたもの、及び第二の2つの方法を提案し、このようなマウスのミルク7を収穫する蛇口)など。ここでは、マウスだけで容易に利用可能な実験装置と基本的な技術的なスキルを必要としリーブス」キョン鹿、両方からミルクを収集するためのシンプルで低コストの方法を提案する。我々の方法は、様々なミルクの十分なボリュームをもたらすアプリケーション。
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1。マウス搾乳プロトコル
このプロトコルで説明する方法は、動物実験委員会によって承認された。
子孫からのダムの1。分離
オキシトシン、麻酔および眼潤滑剤の2。管理
3。ミルクコレクション
牛乳(R2)を収集するために手動で(R1と称する)ミルクを表現しながら、麻酔したマウスを保持する一つの研究者、一研究者:乳コレクションは最も容易に2人の研究者によって行われる。マウスは危害を避けるために、平坦な表面上に固定されている場合、この方法はまた、一人で行うことができる。
ダム4。麻酔逆転
2。キョン搾乳プロトコル
このプロトコルで説明する方法は、動物実験委員会によって承認された。
子孫からのドウの1。分離
オキシトシン、麻酔および眼潤滑剤の2。管理
3。ミルクコレクション
牛乳コレクションは、最も簡単に2人の研究者によって行われる。に麻酔をかけたキョンを保持する1研究者手動(R1と呼ばれる)ミルクを表現しながら、ラップ、そして快適で安全な位置にキョンの頭を保つために、牛乳(R2)を収集するために第二の研究者。
ドウ中の4。麻酔逆転
すべてのミルクが表明される前にTが ">ミダゾラムによって誘発されるDOEは搾乳プロセス中に目を覚ますために開始することが一般的です。ほとんどの場合、DOEは脱出しようとします。マイナー拘束ミルクを高めるための努力で使用されている収量はあるが、研究者とDOEの両方の安全性と快適性も同様に重要である。アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
マウス
我々の実験から、我々は、いくつかの変数に依存して、ある実験用マウスからの乳の約100-400液を収集することが可能であると判断した。これらの変数)は、コレクションのために取っておく時間の長さ、2)オキシトシンの投与量は、投与を、1を含む3)ダムは現在、看護や時間ポスト分娩の4)の量でどのように多くの子犬。我々の研究は、ダムは、少なくとも2時間その子孫から分離されるときに、最も高い収率が得られ、時間に少なくとも45分間は、搾乳のために、マウスごとに確保されていることを示している。最大の乳量は8〜12日は、オキシトシンの2 IU / kgのを使用して分娩後に回収された。我々の結果は、産子数を積極乳量9( 図3参照)と相関していた他の研究に基づいて、大部分である。
ホエジカ
ミルクHARの量であるがキョンからの既得日から今日に至るまで、我々が使...
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マウス
1を含むマウスの乳を収集するとき考慮すべきいくつかの要因が、)は、コレクションのために取っておく時間の量、投与オキシトシンの2)の投与量、3)ダムは現在、看護や4)の量でどのように多くの子犬があります収集時に分娩から経過した時間。ガイドラインとしてこれまでの研究を用いて、乳量のための条件を最適化するために設定してください。
これまでの研究では、直接、産子数8と乳量と相関している。残念ながら、産子数を制御することができません変数です。しかし、搾乳ポスト分娩の時間を制御することができる。 実験マウスの最大のミルクの分泌に応じて8〜10日後分娩9である。我々の経験では、この文と合同である。
なお、オキシトシンは乳生産後にかけがえのない役割を果たしていることが示された分娩10。 0.1 IU / kgを9から4 IU / kgの<...
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著者らは開示するものは何もない。
これらの実験はNIHの助成金 #RAI093634A によって資金提供されました。 私たちは、ジェニー・パワーズ博士(DVM、PhD)のムンジャック搾乳への支援に多大な感謝の意を表します。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 材料—マウス | |||
| ケタミン (KetaVed 100 mg/ml) (用量: 80-100 mg/kg) | MWI/Vedco | 011075 | |
| キシラジン (TranquiVed 100 mg/ml) (用量: 5-10 mg/kg) | MWI/Vedco | NADA 139236 | |
| 眼潤滑剤 | MWI/Apexa | 701013 | |
| オキシトシン (2 IU/kg) | Vet One | 501013 | |
| Materials—Muntjac | |||
| Midazolam (1-2 mg/kg) | Amerisource Bergen Drug Corp | 924326 | オプション:研究者は、ミダゾラムを単独で使用するか、麻酔薬としてBAMの組み合わせを使用することができます |
| 酒石酸ブトルファノール(Torbugesic)(0.45 mg / kg) | Fort Dodge Animal Health | NADA 135-780 | |
| 酒石酸アザペロン(0.25 mg / kg) | ZooPharm | ||
| メデトマジンHCl(0.07 mg / kg) | ZooPharm | ||
| アンティパメゾール塩酸塩(アンチセダン)(用量:0.25 mg / kg) | オリオンコーポレーション | NADA 141-033 | |
| トシン(10 IU / kg) | Vet One | 501013 | |
| Equipment—マウス | |||
| P-200 ピペットマン | ギルソン | F123601 | |
| 200 μl ピペットチップ | Light Labs | B-2004-SH | |
| 1 ml シリンジ | MWI | 005427 | |
| 27 G ニードル | MWI | 002031 | |
| Equipment—Muntjac | |||
| 15 ml コニカル チューブ | VWR | 21008-918 | |
| 22 G 針 | MWI | 873 | |
| 3 ml ルアー ロック シリンジ | MWI | 001377 |
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