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Research Article
Lee J. Pribyl1, Kathleen A. Coughlin1, Thanasak Sueblinvong1, Kristin Shields2, Yoshie Iizuka1,3, Levi S. Downs1,3, Rahel G. Ghebre1,3, Martina Bazzaro1,3
1Department of Obstetrics, Gynecology, and Women's Heath,University of Minnesota, 2Department of Obstetrics and Gynecology,Maricopa Medical Center and St Josephs Hospital and Medical Center, 3Masonic Cancer Center,University of Minnesota
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
本研究では、固体の臨床検体からの原発性卵巣癌細胞の単離および特徴付けのための詳細な方法を記載している。卵巣癌臨床検体は、下流の用途に非常に適した生存可能な、線維芽細胞を含まない上皮性卵巣癌(EOC)細胞を得るために酵素消化に供される。
卵巣癌の発生および進行を調査するための信頼性の高いツールが緊急に必要とされている。卵巣癌細胞株の使用は、卵巣癌を理解するための貴重なツールのままで、それらの使用は多くの制限がある。これらは、異質性の欠如および拡張のin vitro継代に関連した遺伝子変異の過多があります。ここでは、手術時に回収した固体臨床検体を形成原発性卵巣癌細胞の迅速な確立を可能にする方法を記載している。この方法は、30分間酵素消化に臨床検体を施すからなる。単離された細胞懸濁液を増殖させ、薬物スクリーニングを含め下流側のアプリケーションのために使用することができる。確立された卵巣癌細胞株上の原発性卵巣癌細胞株の利点は、それらが由来し、異なる部位か否かに由来することができる元の特定の臨床検体の代表的なものであるということで一応RYまたは転移性卵巣癌。
その比較的低い発生率にもかかわらず、卵巣癌は婦人科疾患と女性の1,2のがんによる死亡の第五の主要な原因の最も致命的である。これは主に忠実疾患3の開始および進行を再現信頼性の高いツールとモデルの不足が原因です。卵巣癌についての我々の知識今日のほとんどは、腹水から回収4-7不死化卵巣表面上皮細胞(IOSが)、卵巣癌細胞株および原発性卵巣癌細胞の使用により可能であった。残念ながら、それらの使用は、不死化プロセスまたは体外路及び腹水製剤から得られた集団の異質性に関連する遺伝的および表現型変化の数など、いくつかの制限があります。
そのため、卵巣癌の特定可能な、特定の固体標本由来の初代卵巣癌細胞はuniquを表す卵巣癌の進行を研究するための電子ツール。
これらの悪性細胞の取得に必要な主な困難は、生存率およびこれらのEOC細胞の培養における増殖能力の早期不足の損失に伴う間質細胞や線維芽細胞の異常増殖によるものである。固形腫瘍からの単細胞懸濁液を作成するには、いくつかの方法が、現在、しかし、特定の技術が有利な結果8より多くの量が得られ、機械的手段または酵素的解離によって、存在しています。ここでは、実行可能な、線維芽細胞のないEOC細胞の効果的な回復のディスパーゼIIの結果とその酵素消化を示しています。このようにして得られたEOC培養物は、遺伝子操作を非常に受けやすいと薬物スクリーニング試験においても有用であり、これらのEOC培養物は、多くの下流の用途に適していることを示している。
倫理に関する声明
ヒト被験者の委員会(IRB)の承認:卵巣癌の固体試料は、治験審査委員会委員の後にミネソタ大学の組織調達機能(TPF)から得た。
1。試薬のセットアップ
2。組織採取
3。組織処理
卵巣癌の臨床検体を、新鮮な細胞スラリーを構成する( 図1)手術後に収集し、小片( 図2Aおよび2B)に切断される。これは酵素処理への検体の最適な露出が可能になります。細胞スラリーを酵素消化に曝し、30分間37℃でインキュベートする。インキュベーション時間の間、スラリーは、(特に、各攪拌後)ますます濁り、これは、組織脱凝集のサインです。インキュベーション時間の最後に、スラリーは、任意の組織解離していない( 図3)からEOC細胞を分離する細胞ろ過器上に転写される。回収した細胞懸濁液を、5%CO 2、37°C(Fのigure 4)に配置される。この段階で、細胞培養物の形態は、単一細胞懸濁液として、小塊の両方のEOC細胞の存在を明らかにする。この時点での培養もPRESENを明らかに赤血球と、図5に示すように、小さな破片のCE。 EOCがゆっくり(1〜3日の期間にわたって)プラスチックに付着する重要なのが、赤血球や細胞破片が、彼らは最終的かつ漸進的」文化から消え」になることはありません。最初のプレーティングから3日目までに、EOC培養は、接着性、EOC細胞クラスターと図6に示すように徐々に少なく赤血球や破片の増加を示している。一日6-7により、EOC細胞は、スワール状の形状(矢印)を形成し、 図7に示すように、EOC細胞の典型的な敷石状形態をもたらすより大きな多細胞凝集体を形成するためにプラスチックに拡散し始める。 14日までに、EOC細胞は、典型的にコンフルエント( 図8)になり、現在は下流のテストとアプリケーションのための準備が整いました。
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図1の臨床検体の収集。卵巣癌の固体片は、手術時に採取し、氷冷PBS 30mlで充填し、滅菌したネジ蓋、ポリプロピレン検体容器内に配置される。


図2。臨床検体の処理。新鮮な氷冷した1×PBSを10ミリリットルを含むペトリ皿上に移しA)固体試料。さらに、サイズが2ミリメートル程度の断片に切断B)臨床検体。

図4 EOC細胞懸濁液を得られるのメッキは解離していない任意の組織を除去した後、細胞懸濁液を遠心分離し、DMEMの続き10mlに再懸濁aining 10%FBSおよび5%CO 2、37℃でペトリ皿中でインキュベートし

図5直ちに処理後のEOC細胞培養物のモルフォロジー。細胞懸濁液めっき(共に矢印で示される)単一細胞懸濁液として塊にEOCを示した直後に、赤血球および細胞破片は、まだこの段階ではたくさんある。オリジナルの倍率、20倍。

3日目EOC細胞培養物の図6形態メッキ半付着EOC cを示した後3日目。EOC細胞培養物をプレーティングした後(矢印で示される)のエル·クラスターの少ない赤血球汚染。オリジナルの倍率、20倍。

図7。初期めっき後一週間。EOC細胞培養をメッキから一週間後に確立EOC培養は組織培養プラスチック上で広がった細胞の渦巻き状のクラスターを示しています。オリジナルの倍率、20倍。

図8。コンフルエントEOC培養。培養14日後に、典型的な上皮丸石の形態を示すEOC細胞のコンフルエントな単層。
著者らは、開示することは何もありません。
本研究では、固体の臨床検体からの原発性卵巣癌細胞の単離および特徴付けのための詳細な方法を記載している。卵巣癌臨床検体は、下流の用途に非常に適した生存可能な、線維芽細胞を含まない上皮性卵巣癌(EOC)細胞を得るために酵素消化に供される。
私たちは、患者の組織サンプルの収集の支援については、ミネソタ大学の組織調達施設のスタッフに感謝したいと思います。この作品は、MBにし、MBに婦人科腫瘍学部門の資金によってミネソタ卵巣がんのアライアンスにより、MBにランディシェーバー癌研究およびコミュニティ基金によるMBに国防総省の卵巣癌研究プログラム(OCRP)OC093424、サポートされていました。資金提供者は、研究デザイン、データ収集と分析、公開することを決定、または原稿の準備に何の役割がありませんでした。
| 1x PBS、滅菌 | Invitrogen | 14190-144 | |
| スクリュー蓋、ポリプロピレン試料容器、滅菌済み | Thermo Scientific | 02 1090 | |
| DMEM medium、滅菌済み | Invitrogen | 11995-065 | |
| ウシ胎児血清、滅菌済み | Thermo Scientific Hyclone | SH30396.03 | |
| 100x ペニシリン-ストレプトマイシン、液体 | Invitrogen | 15140-122 | |
| Dispase II、滅菌済み | Roche | 04942 078 001 | |
| 小型細先端鉗子およびメス刃、滅菌済み | Fisher Scientific | 鉗子: 08-953E, 刃: 08-927-5D | |
| 小型解剖ハサミ、滅菌済み | Fisher Scientific | 08-945 | |
| 15 ml コニカルキャップ付きチューブ、滅菌済み | BD ファルコン | 352097 | |
| 50 ml コニカルキャップ付きチューブ、滅菌済み | BD ファルコン | 352027 | |
| 10 ml セロジカルピペット、滅菌済み | Corning | 13-678-11E | |
| 6 mlシリンジプランジャー、滅菌 | タイコヘルスケア | 8881516911 | |
| ナイロンフィルター(70 μm ) セルストレーナー、滅菌済み | BD Falcon | 352350 | |
| 5 cm シャーレ、滅菌済み | コーニング430166 | ||
| 10cmシャーレ、滅菌 | コーニング430167 |