このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。

方法論記事

固相樹脂系の方法論を経由して、非対称フェロセン派生バイオコンジュゲートシステムのための合成方法論

9.2K 閲覧数

DOI:

10.3791/52399

2015年3月12日

この記事について

サマリー

非対称性のフェロセン種の合成は、溶液技術を使用して困難です。 本稿では、固相合成による簡便でクリーンな反応を用いてフェロセン-ビオチンバイオコンジュゲートを作製する方法に焦点を当てる。 チオレート部分の組み込みは、金表面に固定化の能力を付与することが示されています。

要約

早期発見は、ほとんどの疾患の治療の成功の鍵であり、多くの型の癌の診断および治療のために特に不可欠である。利用される最も一般的な技術は、磁気共鳴イメージング(MRI)、陽電子放射断層撮影(PET)、及びコンピュータ地形(CT)のようなモダリティを撮像し、疾患の物理的構造を把握するために最適であるが、一度だけ実行されるすべての4つまですることができている造影剤と全体的なコストを使用しているため6週間。同様にこのことを念頭に置いて、そのような臨床医のオフィスで、疾患の段階及び/又は治療の有効性を評価し、適時にそうバイオセンサ、などの「ポイントオブケア」の開発技術は、治療プロトコルに革命をもたらすであろう。1生物学的に関連する分子2の検出のためのフェロセンベースのバイオセンサーを探求する手段は、方法は、本明細書に記載フェロセン-ビオチンバイオコンジュゲートを生成するために開発された。このレポートは、金表面に固定化することができるビオチンフェロセン - システインシステムに焦点を当てます。

概要

バイオセンサは、選択的分析のためのプラットフォームとして、生体分子認識技術を採用し、その特異性、速度、および低コストのために利用される小型の装置である。生体分子の検出のための電気化学的バイオセンサは、そのシンプルさ、コスト効率、高感度のために、この分野の最前線にある。これらのセンサの1,3一般的な解剖学は、対象とする生物学的マーカーに特異的な認識分子を搭載した電極である。認識分子によりバイオマーカーの結合は、簡単な測定によって検出され得る電位または電流の局所的な変化をもたらす。認識部分とデートするには、酵素、4-8抗体、9-12細胞全体、13-16受容体、17-20ペプチド21-23とDNA 24の範囲とすることができる、大部分が大きく、生物学的分子に焦点を当ててきた。25-28リサーチこの分野での取り組みは、主にWHE免疫センサーに集中している免疫再(フェロセンなど)、レドックス活性コアを固定化し、目的の抗体を検出するために使用される。これらの研究は、抗原/抗体の使用に起因する合併症に起因する不良による精度と時間消費への臨床応用から除外されている。1,3栽培注意が生物医学の小分子の検出(未満1キロ/モル)に焦点を当てている、食品や国家安全保障に加えて、環境の関心。29バイオセンサーデバイスの最もよく知られている例は、ポケットサイズの電流測定メーターに接続されたスクリーン印刷された酵素電極を有するセルフテストグルコースモニター、である。これらのシステムは、典型的には、グルコース酸化反応で発生した電荷の総量は、ある期間にわたって測定された電量分析法を利用する。市場性のあるデバイスは、携帯用堅牢でなければならない一般の集団のために容易に利用するためにハンドヘルド。

フェロセン等のレドックスタグがnecessaですほとんどのバイオマーカーは、本質的に電気化学的に活性でないように、溶液中のバイオマーカーまたは小分子の電気化学的検出を提供するために、RY。30-38フェロセンは、電気化学的バイオセンサーへの統合のための優れた選択肢となり電気化学のゴールドスタンダードであり、有機金属分子である。フェロセンベースの酸化還元活性種はすでにサイズが小さいため、優れた安定性、便利な合成アクセス、容易な化学修飾、相対的な親油性、及び酸化還元チューニングのしやすさにかなりの注目を集めている。3,30-42小分子を有するフェロセンコアをベース金属イオンや小分子の検出器として広く使用され、このような生体分子のようなより大きな化学種を標的32-38,43システムは、電気化学的表面上に埋め込 ​​まれたフェロセン誘導体大きな抗体または免疫グロブリンの結合を利用している。1,3,39 、それぞれの場合には44、潜在的な、現在のintensi鉄III / II酸化還元対のティは、このように、分析物分子の存在を示す新たな分光ハンドルを生成する、分子の結合の際に変化した。この変更は、シクロペンタジエニル環のπシステムと鉄のd軌道との間で発生した大規模なオーバーラップから生じる。パイ-システムが変更された場合、 すなわち、誘導体化するか、または、その後軌道相互作用が意志、順番に、変更を反応させた。これは、鉄芯に影響を与えるとFe III /鉄II対の電位の変化として観察することができる。40,45,46これらのプロパティは、電気化学的イムノアッセイまたはバイオセンサーで定量化剤として使用するためのそのようなシステムは魅力的である。

バイオセンサーの能力のために特定のフェロセンを含むシステムを製造するためには、標的分子に特異的なバイオレセプター、ワンCp環を変更して、電気化学的読み出しまたはELECの分子テザーのような他のCp環を利用することが最適であるtrode( 図1)。これらの非対称のフェロセン誘導体の合成は、副反応および分子間架橋の際に形成された二量体およびポリマー種の形成によって攻撃される。47が、アミド結合を生成するカップリング化学は、このような生物学的成分を含むフェロセンの単純な誘導体を提供するための最も直接的なルートであるペプチドおよびその代謝物など。したがって、第一のペプチド合成メリフィールドによって、1950年代に開発された固相技術は、フェロセンを含有する有機金属化合物に適用することができる。有する直交置換1'-のFmoc-アミノフェロセン-1-カルボン酸分子、受容体部分(ビオチン)、電気化学的な読み出し(フェロセン)と固定リンカー成分(システイン)を含むことができるフェロセンシステムの使用を介して構築され、本明細書に詳述されて。このバイオコンジュゲートの合成は、金表面上に固定化するための証拠としてだけでなく、議論されている。この作品のrepresenビオチン、フェロセン及び金表面上に固定化するためのアミノ酸から構成されるシステムの最初のプレゼンテーションのts。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

プロトコル

ビオチンFcのシステインの1の合成(1)

  1. 樹脂に結合した1を製造する固相法。
    1. フリットシリンジにビオチンロードされた樹脂(250mgを、0.145ミリモル)を配置し、ジメチルホルムアミド(5ml)に策定し、20分間ラボシェーカー上で注射器を振盪することにより樹脂を膨潤させる。ソリューションを追放し、1より多くの時間を腫れジメチルホルムアミドを繰り返します。
    2. 振とうの10〜15分、続いて注射器に、ジメチルホルムアミド中20%ピペリジン4-6を加えてFmoc保護基を除去する。ピペリジンの別の4〜6ミリリットルで脱保護処理を繰り返します。 3×ホルムアミド、3倍のジメチルホルムアミド順序で樹脂を洗浄:メタノール(1:1)、3回メタノール:ジクロロメタン(1:1)、3回ジクロロメタン、約5 mlずつ。加熱時のブルーの存在によって成功した脱保護を確認するためにビーズの小さなサンプリング(〜10)にニンヒドリンテスト(+)を行います。
    3. 1'-のFmoc-アミノフェロセン-1-カルボン酸を含む溶液を混合する(203.3ミリグラム、0.4350ミリモル)、1-ヒドロキシベンゾトリアゾール水和物(58.8ミリグラム、0.413ミリモル)、ジイソプロピルカルボジイミド(0.0673ミリリットル、0.435ミリモル)、ジイソプロピルエチルアミン(0.0757ミリリットル、0.435ミリモル)、および4:ジクロロメタンの1:1混合物とジメチルホルムアミド。フリットシリンジにこれを描画し、軽く6時間ラボシェーカーで振る。その後、注射器からソリューションを追放し、前述のように洗う。
    4. カップリングを確認するために、上記のように - ()ニンヒドリンテストを実行します。ニンヒドリン試験は、まだ部分を含む鉄の結合から誘導されるビーズのオレンジ色にもかかわらず、結合を確認するのに有用であり得る。
    5. その後、ジメチルホルムアミド中20%ピペリジンを添加することによりFmoc基を除去し、上記のように洗浄した。ニンヒドリン試験(+)は、Fmoc除去を確認するために使用されるべきである。
    6. のFmoc-Cysの(Trt)と-OH(254.8ミリグラム、0.4350ミリモル)、ジイソプロピルカルボジイミド1-ヒドロキシベンゾトリアゾール水和物(58.8 mgの、0.4125ミリモル)、(0.0673ミリリットル、0.4350からなる溶液を準備ミリモル)、ジイソプロピルエチルアミン(0.0757ミリリットル、0.4350ミリモル)、および4:ジクロロメタンとジメチルホルムアミドの1:1混合物。このシステインカップリングカクテルのフリットシリンジを加え、穏やかに6時間振る。以前に記載されたプロトコルを使用して洗ってください。
    7. 20%ピペリジンと洗浄とのFmoc成分を除去し、( -​​ )ニンヒドリン試験を用いてカップリングすることを確認します。ニンヒドリン試験(+)を使用して、アミン遊離ターミナルを確認してください。
  2. 樹脂からの1の切断。
    1. TFAの溶液(9.45ミリリットル)、水(0.25 ml)を、1,2-エタンジチオール(0.25 ml)を確認し、トリイソプロピルシラン(0.1mL)を、シリンジに追加し、4時間穏やかに振とうする。
    2. エッペンドルフチュー​​ブ中で、得られた赤茶色の溶液を収集し、空気流を用いてゆっくりとTFAを蒸発させる。
    3. 穏やかな撹拌を形成するであろう、1を沈殿さエッペンドルフチューブに冷ジエチルエーテル(〜15ml)に加える。遠心分離を介して生成物(1 gで5分)を単離する。 Tジエチルエーテル洗浄液(~60 mlの総)及び遠心分離機の鶏反復サイクルは、赤/褐色の固体として1を得た。

1の2。評価と解析

  1. アイデンティティは1 H(16スキャン)と重水素化メタノール(300μL)およびESI-MS分析における13 C NMR(512スキャン)を使用して、 図2に示す接続性や組成と一致していることを確認してください。
    以下の結果を期待する:
    1 H NMRスペクトル(CD 3 OD)δ/ ppmで:1.407から1.684(メートル、6H)、2.245(トン、2H)、2.665から3.150(メートル、12H)、4.015(トン、1H)、4.104の(d、2H )、4.274(qは、1H)、4.426の(d、2H)、4.479(qは、1H)、4.595(tは、1 H)及び13 C NMRスペクトル(CD 3 OD)δ/ ppmで:24.644(CH 2)、25.472 (CH 2)、28.051(CH 2)、28.300(CH 2)、35.474(CH 2)、38.698(CH 2)、39.241(CH 2)、39.717(CH 2)、55.340 / 55.538(Cpのリング) 60.286(CH)、61.964(CH)、62.521 / 62.821(CPリング)、66.038 / 66.170(CPリング)、69.153 / 69.328(CPリング)、71.468 / 71.593(CPリング)、76.466(CH)、171.770 (C = O)、175.361(C = O)。
    ESI-MS(M / z)は:実測:639.00 [1 +のNa] +、理論値:639.1 [1 +のNa] +とHR-MS(M / Z):実測:617.2049 [1 + H] +、理論値: 617.1622 [1 + H] +。
  2. 孤立した1の組成を確認するために、HPLC、元素分析を行います。
    C8を使用して実施するHPLCクロマトグラムを0.5ml /分の流速で100%MeOHを用いて逆相カラム。注:HPLC保持時間は以下の通りであった:3.198から4.674分。

金表面上の1の3の固定化

  1. 2〜0.25の正方形にポリマー担保金のスライドをカット。
  2. 1(〜1ミリモル)のDI水溶液で50mlのビーカーを埋める。
  3. ビーカーに金のスライドを追加し、時計皿でカバーしています。すべてフローガラススライドを撹拌せずに室温でO / Nインキュベートした。
  4. 溶液からの金のスライドを削除し、空気中のそれが乾燥許す。
  5. 1を固定化した観察する走査型電子顕微鏡(または同等品)を用いた走査型電子顕微鏡像を得る。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

結果

1の樹脂結合形態は、 図2に示されている。フェロセン成分の共有結合により、鉄吸収とは異なり連続的な洗浄で永続と複合体を含む固定化された鉄の指標である樹脂ビーズのオレンジ色合いを生じさせる樹脂ビーズのPEG成分。 1の樹脂を含まない形態では、樹脂ビーズの色が同じである。樹脂ビーズから化合物を除去した後、方法から得られた純度および収率(68%)は、典型的な溶液法よりはるかに優れている。生成物の元素分析では、1が TFA塩として単離したことを示した:計算値(発見)C 26 H 36 FeNから6 O 4 S 2 4TFAのために:C、38.07(38.90); H、3.76(4.20); N、7.83(7.70)。典型的な反応から得られた収率(105.1ミリグラム、68%)を元素分析結果に基づいている。重水素化メタノールプロブでNMR分析IDED 1 H NMRスペクトル(CD...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

ディスカッション

非対称のフェロセン誘導体の合成は、溶液中に挑戦されている。例えば、溶液中の1を製造する試みは、所望の生成物(20%未満)の低い収率をもたらした。同様に、1'-アミノフェロセンカルボン酸( サンセリフのFmoc)および樹脂結合ビオチンを利用する反応はBaristic によって報告重合生成物と一致して不溶性生成物をもたらした。そして最小限の製品。47これをさらにフェロセンによって複雑とその誘導体は光感受性であるとアミノ酸同族体は、溶液中で二量体化する傾向があることをされている。これらの問題は、大規模な反応や精密検査を難しくする。しかし、この反応性は、最初のペプチドの合成のためのメリフィールドによって開発された固相法を用いて回避することができる。フェロセン-ペプチドシステムの合成は、いくつかのグループによって注目を集めていると非対称のペプチド-フェロセンシステムのライブラリーにつながっている。46,48-52仕事ビオチン - フェロセンシステインを含む第1の非対称フェロセンバイオコンジュゲートの合成は、本明細書に詳細に記...

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

開示事項

著者らは開示するものは何もない。

謝辞

KGは、RAウェルチ財団補助金P-1760、(KG)は数学と科学教育のTCUアンドリュース研究所、(KG)はTCU研究と創造活動グラントと(JHSへ)TCU SERCグラントによってサポートされていました。

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
ビオチンNovatag樹脂NovaBiochem8550510001
TORVIQ 10 mlルアーロックフリットシリンジフィッシャーNC9299151
ピペリジンAcrosP / 3520 / PB05
ニンヒドリンテストSigma-Aldrich60017-1ea
1'-Fmoc-アミノフェロセン-1-カルボン酸Omm科学特注
N,N′-ジイソプロピルカルボジイミドSigma-AldrichD125407-5G
Fmoc-Cys(Trt)-OHNovabiochem8520080025
トリフルオロ酢酸Sigma-AldrichT5408
1,2-エタンジチオールSigma-Aldrich2930
トリイソプロピルシランSigma-Aldrich233781
エッペンドルフチューブ (20 ml)任意のソース
メタノール使用前にモレキュラーシーブで乾燥した任意のソース & 100mlのメディアボトルに保管して簡単に使用
使用前にモレキュラーシーブで乾かしてください&100 mLの培地ボトルに保管して、使いやすい
あらゆるソースを遠心分離します
ジクロロメタン 任意のソース 使用前にモレキュラーシーブで乾燥 & 100mlのメディアボトルに保管して簡単に使用 ジメチルホルムアミド 任意のソースように、

参考文献

  1. Wang, J. Electrochemical biosensors: towards point-of-care cancer diagnostics. Biosens Bioelectron. 21 (10), 1887-1892 (2006).
  2. Scarborough, J. H., Brusoski, K., Brewer, S., Green, K. N. Solid phase synthesis of ferrocene-biotin bioconjugates and reactivity with avidin. A paradigm for development of electrochemical biosensors. , Texas Christian University. Fort Worth, Texas. (2014).
  3. Zhang, S., Zheng, F., Wu, Z., Shen, G., Yu, R. Highly sensitive electrochemical detection of immunospecies based on combination of Fc label and PPD film/gold nanoparticle amplification. Biosens Bioelectron. 24 (1), 129-135 (2008).
  4. Gobi, K. V., Mizutani, F. Layer-by-layer construction of an active multilayer enzyme electrode applicable for direct amperometric determination of cholesterol. Sensors and Actuators. 80 (3), 272-277 (2001).
  5. Gobi, K. V., Mizutani, F. Amperometric detection of superoxide dismutase at cytochrome c-immobilized electrodes: Xanthine oxidase and ascorbate oxidase incorporated biopolymer membrane for in-vivo analysis. Analytical Sciences. 17 (1), 11-15 (2001).
  6. Gobi, K. V., Sato, Y., Mizutani, F. Mediatorless superoxide dismutase sensors using cytochrome c-modified electrodes: Xanthine oxidase incorporated polyion complex membrane for enhanced activity and in vivo analysis. Electroanalysis. 13 (5), 397-403 (2001).
  7. Shankaran, D. R., Uehara, N., Kato, T. A metal dispersed sol-gel biocomposite amperometric glucose biosensor. Biosensor.., & Bioelectronics. 18 (5-6), 721-728 (2003).
  8. Yamamoto, K., Xu, F., Shi, G. Y., Kato, T. On-line biosensor for detection of glucose, choline and glutamate simultaneously integrated with microseparation system. Journal of Pharmacological Sciences. 91, 211p-211 (2003).
  9. Luppa, P. B., Kaiser, T., Cuilleron, C. Y. Ligand-binding studies of sex hormone-binding globulin with 17alpha-dihydrotestosterone derivatives as ligands using a surface plasmon resonance biosensor. Clinical Chemistry. 47 (6), A9-A9 (2001).
  10. Luppa, P. B., Sokoll, L. J., Chan, D. W. Immunosensors - principles and applications to clinical chemistry. Clinica Chimica Acta. 314 (1-2), 1-26 (2001).
  11. Mallat, E., Barcelo, D., Barzen, C., Gauglitz, G., Abuknesha, R. Immunosensors for pesticide determination in natural waters. Trac-Trends in Analytical Chemistry. 20 (3), 124-132 (2001).
  12. Pemberton, R. M., Hart, J. P., Mottram, T. T. An electrochemical immunosensor for milk progesterone using a continuous flow system. Biosensor.., & Bioelectronics. 16 (9-12), 715-723 (2001).
  13. Pancrazio, J. J., Whelan, J. P., Borkholder, D. A., Ma, W., Stenger, D. A. Development and application of cell-based biosensors. Annals of Biomedical Engineering. 27 (6), 697-711 (1999).
  14. May, K. M. L., Wang, Y., Bachas, L. G., Anderson, K. W. Development of a whole-cell-based biosensor for detecting histamine as a model toxin. Analytical Chemistry. 76 (14), 4156-4161 (2004).
  15. Taylor, C. J., Bain, L. A., Richardson, D. J., Spiro, S., Russell, D. A. Construction of a whole-cell gene reporter for the fluorescent bioassay of nitrate. Analytical Biochemistry. 328 (1), 60-66 (2004).
  16. Philp, J. C., et al. Whole cell immobilised biosensors for toxicity assessment of a wastewater treatment plant treating phenolics-containing waste. Analytica Chimica Acta. 487 (1), 61-74 (2003).
  17. Subrahmanyam, S., Piletsky, S. A., Turner, A. P. F. Application of natural receptors in sensors and assays. Analytical Chemistry. 74 (16), 3942-3951 (2002).
  18. Ryberg, E., et al. Identification and characterisation of a novel splice variant of the human CB1 receptor. Febs Letters. 579 (1), 259-264 (2005).
  19. Cooper, M. A. Advances in membrane receptor screening and analysis. Journal of Molecular Recognition. 17 (4), 286-315 (2004).
  20. Kumbhat, S., et al. A novel receptor-based surface-plasmon-resonance affinity biosensor for highly sensitive and selective detection of dopamine. Chemistry Letters. 35 (6), 678-679 (1246).
  21. Yemini, M., Reches, M., Gazit, E., Rishpon, J. Peptide nanotube-modified electrodes for enzyme-biosensor applications. Analytical Chemistry. 77 (16), 5155-5159 (2005).
  22. Endo, T., Kerman, K., Nagatani, N., Takamura, Y., Tamiya, E. Label-free detection of peptide nucleic acid-DNA hybridization using localized surface plasmon resonance based optical biosensor. Analytical Chemistry. 77 (21), 6976-6984 (2005).
  23. Drummond, T. G., Hill, M. G., Barton, J. K. Electrochemical DNA sensors. Nature Biotechnology. 21 (10), 1192-1199 (2003).
  24. Piunno, P. A. E., Krull, U. J. Trends in the development of nucleic acid biosensors for medical diagnostics. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 381 (5), 1004-1011 (2005).
  25. Dechtrirat, D., et al. Electrochemical displacement sensor based on ferrocene boronic acid tracer and immobilized glycan for saccharide binding proteins and E. coli. Biosensor.., & Bioelectronics. 58, 1-8 (2014).
  26. Lacina, K., et al. Combining ferrocene, thiophene and a boronic acid: a hybrid ligand for reagentless electrochemical sensing of cis-diols. Tetrahedron Letters. 55 (21), 3235-3238 (2014).
  27. Takahashi, S., Anzai, J. Recent Progress in Ferrocene-Modified Thin Films and Nanoparticles for Biosensors. Materials. 6 (12), 5742-5762 (2013).
  28. Liu, L., et al. Amplified voltammetric detection of dopamine using ferrocene-capped gold nanoparticle/streptavidin conjugates. Biosensor.., & Bioelectronics. 41, 730-735 (2013).
  29. Shankaran, D. R., Gobi, K. V. A., Miura, N. Recent advancements in surface plasmon resonance immunosensors for detection of small molecules of biomedical, food and environmental interest. Sensors and Actuators B-Chemical. 121 (1), 158-177 (2007).
  30. Szarka, Z., Kuik, Á, Skoda-Földes, R., Kollár, L. Aminocarbonylation of 1,1′-diiodoferrocene, two-step synthesis of heterodisubstituted ferrocene derivatives via homogeneous catalytic carbonylation/coupling reactions. Journal of Organometallic Chemistry. 689 (17), 2770-2775 (2004).
  31. Niu, H. T., et al. Imidazolium-based macrocycles as multisignaling chemosensors for anions. Dalton Trans. (28), 3694-3700 (2008).
  32. Qing, G. -Y., Sun, T. -L., Wang, F., He, Y. -B., Yang, X. Chromogenic Chemosensors forN-Acetylaspartate Based on Chiral Ferrocene-Bearing Thiourea Derivatives. European Journal of Organic Chemistry. (6), 841-849 (2009).
  33. Romero, T., Caballero, A., Espinosa, A., Tarraga, A., Molina, P. A multiresponsive two-arm ferrocene-based chemosensor molecule for selective detection of mercury. Dalton Trans. (12), 2121-2129 (2009).
  34. Zapata, F., Caballero, A., Espinosa, A., Tarraga, A., Molina, P. A selective redox and chromogenic probe for Hg(II) in aqueous environment based on a ferrocene-azaquinoxaline dyad. Inorg Chem. 48 (24), 11566-11575 (2009).
  35. Alfonso, M., Tarraga, A., Molina, P. Ferrocene-based multichannel molecular chemosensors with high selectivity and sensitivity for Pb(II) and Hg(II) metal cations. Dalton Trans. 39 (37), 8637-8645 (2010).
  36. Zapata, F., Caballero, A., Molina, P., Tarraga, A. A ferrocene-quinoxaline derivative as a highly selective probe for colorimetric and redox sensing of toxic mercury(II) cations. Sensors (Basel). 10 (12), 11311-11321 (2010).
  37. Thakur, A., Sardar, S., Ghosh, S. A highly selective redox, chromogenic, and fluorescent chemosensor for Hg2+ in aqueous solution based on ferrocene-glycine bioconjugates). Inorg Chem. 50 (15), 7066-7073 (2011).
  38. Sathyaraj, G., Muthamilselvan, D., Kiruthika, M., Weyhermüller, T., Nair, B. U. Ferrocene conjugated imidazolephenols as multichannel ditopic chemosensor for biologically active cations and anions. Journal of Organometallic Chemistry. 716, 150-158 (2012).
  39. Kwon, S. J., Kim, E., Yang, H., Kwak, J. An electrochemical immunosensor using ferrocenyl-tethered dendrimer. Analyst. 131 (3), 402-406 (2006).
  40. Pinto, A., Hoffmanns, U., Ott, M., Fricker, G., Metzler-Nolte, N. Modification with Organometallic Compounds Improves Crossing of the Blood-Brain Barrier of [Leu(5)]-Enkephalin Derivatives in an In Vitro Model System. Chembiochem. 10 (11), 1852-1860 (2009).
  41. Barisic, L., et al. The first ferrocene analogues of muramyldipeptide. Carbohydr Res. 346 (5), 678-684 (2011).
  42. Brusoski, K., Green, K. N. Novel click derivatives of ferrocene and their applications toward construction of electrochemical biosensors. Abstracts of Papers, 243rd ACS National Meetin.., & Exposition. 2012 Mar 25-29, San Diego, CA, United States, , BIOL-28. (2012).
  43. Bucher, C., Devillers, C. H., Moutet, J. -C., Royal, G., Saint-Aman, E. Anion recognition and redox sensing by a metalloporphyrin–ferrocene–alkylammonium conjugate. New Journal of Chemistry. 28, 1584-1589 (2004).
  44. Tanaka, S., Yoshida, K., Kuramitz, H., Sugawara, K., Nakamura, H. Electrochemical detection of biotin using an interaction between avidin and biotin labeled with ferrocene at a perfluorosulfonated ionomer modified electrode. Analytical Sciences. 15 (9), 863-866 (1999).
  45. Real-Fernandez, F., et al. Ferrocenyl glycopeptides as electrochemical probes to detect autoantibodies in multiple sclerosis patients' sera. Biopolymers. 90 (4), 488-495 (2008).
  46. Husken, N., Gasser, G., Koster, S. D., Metzler-Nolte, N. Four-potential' ferrocene labeling of PNA oligomers via click chemistry. Bioconjug Chem. 20 (8), 1578-1586 (2009).
  47. Barisic, L. Croatica Chemica Acta. 75, 199-210 (2002).
  48. Kirin, S. I., Noor, F., Metzler-Nolte, N. Manual Solid-Phase Peptide Synthesis of Metallocene–Peptide Bioconjugates. Journal of Chemical Education. 84 (1), 108-111 (2007).
  49. Barisic, L., et al. Helically chiral ferrocene peptides containing 1 '-aminoferrocene-1-carboxylic acid subunits as turn inducers. Chemistry-a European Journal. 12 (19), 4965-4980 (2006).
  50. Mahmoud, K., Long, Y. -T., Schatte, G., Kraatz, H. -B. Electronic communication through the ureylene bridge: spectroscopy, structure and electrochemistry of dimethyl 1′,1′-ureylenedi(1-ferrocenecarboxylate). Journal of Organometallic Chemistry. 689 (13), 2250-2255 (2004).
  51. Mahmoud, K. A., Kraatz, H. B. Synthesis and electrochemical investigation of oligomeric ferrocene amides: Towards ferrocene polyamides. Journal of Inorganic and Organometallic Polymers and Materials. 16 (3), 201-210 (2006).
  52. Mahmoud, K. A., Kraatz, H. B. A bioorganometallic approach for the electrochemical detection of proteins: A study on the interaction of ferrocene-peptide conjugates with papain in solution and on au surfaces. Chemistry-a European Journal. 13 (20), 5885-5895 (2007).

アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。

再版と許可

タグ

NMR