方法論記事

アン

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DOI：

10.3791/52672

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2015年6月30日

 ,  ,  , 
1Department of Medicine and New Jersey Medical School Cancer Center, Rutgers New Jersey Medical School

この記事について

サマリー

私たちは、エストロゲン感受性乳がん細胞の骨髄における休眠のin vitroモデルを開発しました。このプロトコルの目標は、休眠の分子生物学および細胞生物学の研究と、その後のin vivo試験のための仮説の生成のためのモデルの使用を実証することです。

要約

>jove_content<骨髄における乳がんの休眠の研究は、休眠細胞とその微小環境との相互作用の複雑さ、その希少性、そして圧倒的な過剰造血細胞のために、非常に困難な作業です。この目的のために、骨髄におけるエストロゲン感受性乳がん細胞の休眠状態のin vitro 2Dクローン生成モデルを開発しました。このモデルは、休眠に必要ないくつかの重要な要素で構成されています。例えば、1)長期間休眠状態になる可能性が高いエストロゲン感受性乳がん細胞の使用、2)クローン形成密度での細胞のインキュベーション(各細胞の構造的相互作用が主に基層と相互作用する)、3)骨髄の重要な構造要素であるフィブロネクチン、4)骨髄間質細胞によって豊富に合成され、細胞外マトリックスに大量に沈着する成長因子であるFGF-2などです。FGF-2とインキュベートした細胞は、6日後に休眠クローンを形成します。これは、明確な平坦な外観を持つ12個以下の細胞で構成され、成長中の細胞よりも大幅に大きく、細胞質と核の比率が大きくなります。対照的に、FGF-2なしでインキュベートされた細胞は、主に>30の比較的小さな細胞からなる成長コロニーを形成します。インキュベーション後3日目に抗体、阻害剤、ペプチド、または核酸によるシステムの摂動は、6日目の休眠細胞のさまざまな表現型および分子的側面に大きな影響を与える可能性があり、休眠状態または休眠細胞の生存に対する膜局在または細胞内分子、因子、またはシグナル伝達経路の役割を評価するために使用できます。このアッセイのin vitro特性を認識しながら、休眠細胞の確立と生存に必要な分子メカニズムに関する重要な情報を収集するための非常に有用なツールとして機能することができます。このデータを使用して、in vivoモデルでテストする仮説を生成できます。

概要

疾患とすぐ小さな腫瘍が血管2,3を開発する、検出可能になる前に1乳癌細胞は、骨髄に転移します。転移プロセスは迅速であるが、非効率的です。細胞を、4日目あたり数百万人で、急速に新しい血管を入力しますが、いくつかは、遠隔臓器5への旅行を生き残ります。それにもかかわらず、いくつかの微小転移は、骨に生き残るためには、新たに診断された患者1からの骨髄吸引中の単一細胞または小細胞塊として求めることができます。これらの細胞は、それら6を除去する非常に目的のために投与されるアジュバント化学療法を、抵抗します。この抵抗は、骨髄微小環境7,8との相互作用によって開始される生存シグナル伝達によって、実質的に恵まれています。微小転移は、ローカライズされた乳がんの女性の約3分の1に見られ、単変量解析9により分析すると生存の独立した指標を表現することができます。一部micrometastasesは、成長を開始しているが、再発パターンは、細胞の種類によって異なります。トリプルネガティブ乳がんの患者は、休止状態の上に不十分な制御を示唆し、1〜4年の間に再発する傾向があります。 ER / PR +細胞を含む他の細胞型は、再発10の安定した、連続的な速度で、最大20年間の休眠残ることができます。 ER +とER-乳癌細胞株および腫瘍間休眠遺伝子発現シグネチャの差が異なる休眠電位11を反映しているが、骨髄間質との相互作用は、おそらく休止状態への重要な貢献を表します。

微小転移はまれであり、10以上の6倍によって造血細胞によって劣勢されているため、生体内で休眠の研究は非常に困難です。したがって、関連するモデルはメカニズムを示唆し、in vivoで検証可能な仮説を生成することができるインビトロのデータで提供する生成する必要があります。 mathe含む休眠モデルの数、maticalモデル12,13、in vitroモデル7,8,14,15、in vivoでの異種移植モデル16、in vitroでの組み合わせと異種移植モデル17,18と自発的な腫瘍および転移モデル19は 、癌細胞の休眠20にいくつかの洞察が得られています。これらの各モデルは、独自の制限があり、それ自体の分子シグナル伝達、より生物学的に関連するモデルで試験することが休眠を支配する相互作用に関する仮説を生成するために、主に有用です。

休眠の分子機構、ER +細胞中の再発をもたらす周期停止、再分化および治療 ​​抵抗性とメカニズムをもたらす微小環境との相互作用を定義する全体的な目標では、我々は、関連する要素を選択し提供するin vitroモデルを開発しました間質微小環境7。そのコンポにいる間、比較的まばらなこのモデルは、ネントは、休眠の重要な機能に影響を与える特定の分子メカニズムを導出するための研究を可能にするのに十分に頑強です。これらの実験は、 インビボで直接試験することができる仮説を生成します。モデルは、我々は休眠中の関連であることが実証いくつかの重要な要素に依存しています。これらは、エストロゲン依存性乳癌細胞の使用は、それらの相互作用は、基体と培地の可溶性成分、フィブロネクチン基質と塩基性線維芽細胞増殖因子（FGF-2）の存在下で主にクローン原性密度で細胞の培養を含みます培地中に。

私たちは、TGFβ22を介して媒介FGF-2 21による細胞周期停止の誘導を含む、in vitroでシステムを管理するメカニズムを、特徴に依存し、上皮表現型にPI3キナーゼ7,8およびERK 8と形態形成分化を介したシグナル伝達生存RhoAの不活性化、インテグリン45;生存7,15のための間質フィブロネクチンの5β1アップレギュレーションおよびライゲーション（ 図1）。 MCF-7細胞におけるFGF-2のin vitroでの細胞周期効果は濃度では10ng / mlの21,23下記少なくとも一つのログを開始します。理論的根拠は、乳管の形態形成、哺乳類系24-27の数の巡回拡大と景気後退を支配するFGF-2の発現の時間的制御に基づいていました。我々は、FGF-2は、3D培養28における乳管形態形成を含む、分化を誘導することを実証し、そのFGF-2の発現は、一般的に、ヒト腫瘍29の悪性形質転換と共に失われています。 FGR1の発現は29を調査し、MCF-7細胞は、すべての4 FGF受容体30を発現し続ける乳癌で無傷のままでした。休眠との関連では、FGF-2は、によってエクスポートされ、頻繁にそれは造血幹細胞33の保存に機能する骨髄間質31,32上に堆積します。我々DEMFGF-2はまた、それが豊富な形態形成分化を誘導する骨髄7において、フィブロネクチン基質上で培養されたER +乳癌細胞において休眠状態を誘発することonstrated。モデルでは、乳癌細胞は、増殖阻害され、RhoGap GRAF、上皮表現型および悪性進行による再急行インテグリンα5β1lostに再分化を介してのRho Aを不活性化します。彼らは、インテグリンα5β1を介してフィブロネクチンと結合し、それが細胞毒性療法7,8,15（ 図1）に、それらが耐性をレンダリング生存シグナル伝達を活性化します。ロークラスGTPアーゼの阻害は、休止状態の表現型34を誘導することが以前に実証されています。

ここでは、モデルを確立し、ER +乳癌細胞の休眠を支配する特定の分子·細胞メカニズムを研究する研究者を可能にする具体的な手順を概説します。モデルの使用方法を説明するためにここに提示された実験において、我々は、Akt阻害剤およびPI3K阻害剤とパンのRhoとRhoファミリー（ 図1B）阻害剤とRhoキナーゼ（ROCK）阻害剤の全てのメンバーとPI3K経路（ 図1B）を対象としました。

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プロトコル

1.クローン原性アッセイ

  1. 以下の手順を使用して、エストロゲン依存性乳癌細胞株MCF-7およびT47D細胞の単一細胞懸濁液を調製
    1. MCF-7またはT-47D細胞との50％を超えるコンフルエントでない10cmの組織培養皿から培地（DMEM / 10％熱不活性化ウシ胎児血清/グルタミンおよびペニシリン/ストレプトマイシン）を吸引除去します。 PBSですすいでください。 1-4分間37℃で、DMEM高グルコースに溶解し、トリプシン0.25％/ 2.21 mMのEDTAでインキュベートします。
    2. 単一細胞分布を確実にするために位相差顕微鏡下で1分間隔で細胞をチェック。ほぼ不変の、単一細胞の状態を達成するために、細胞 - 細胞接触を破壊するには、下に数回ピペッティングにより2mLのピペットで細胞を再懸濁します。
    3. あなたは、インキュベーションのわずか2分後の細胞の塊を観察場合、最大4分間37℃でトリプシンで細胞をインキュベートし続けています。彼らは電子に付着し残っている場合は、クローン原性研究のためにこれらの細胞を使用しないでくださいエラーがコロニー数の収率で導入されるため、トリプシン処理の4分後に他のACH。
      注：細胞が凝集している場合は、形成されたコロニーの数をインキュベート数よりも少ない数の細胞の産物を反映します。細胞が過剰にトリプシン処理された場合、それらのクローン原性ポテンシャルが減少することができます。
    4. のために必要なボリューム全体を含むものマスターチューブ中連続希釈により、（細胞型または継代数に応じて、+ 500細胞/ ml）を24ウェルプレート、以下/ mlの培養培地1,500細胞の単一細胞懸濁液を調製します実験におけるすべての変数。
      注：目標は800セル/ cm 2（約500〜1100個/ cm 2の範囲）の最終細胞密度です。目標は、比較的容易に計数を可能にする約100 + 50個のコロニーを得るためにある混雑を防止し、コロニーを実験perturbaによって増減したときに有意な統計的差異をもたらすのに十分なコロニーを可能にしますン。
  2. 以下の手順を使用してクローン形成密度で細胞をインキュベート
    1. 1,500細胞/ mlのマスター単一細胞懸濁液管から/ウェル1,500細胞のクローン原性密度で24ウェルのフィブロネクチンコーティングプレート上の四重のウェル中の細胞をインキュベートします。 3ミリリットルを描画し、2つのウェルのそれぞれ1 mlの培地を分配することによって、5ミリリットルピペットで細胞を含む培地を粉砕します。
      注：フィブロネクチンでコーティングされたプレートは、商用ベンダーから予備被覆を購入する必要があります。制御品質の外側コーティングプレートは、凹凸面での自動化されたプロセスの結果は、このアッセイのために適さありません。
    2. 細胞懸濁液の3ミリリットルを策定し、各1mlで2井戸を埋める、ピペッティングにより、5mlのピペットでダウンサスを混ぜます。 1ピペットから任意の時点でわずか2井戸を埋めます。上下にピペッティングして、再度、マスターチューブに細胞懸濁液にピペットで再懸濁細胞を、残りのボリュームを戻し、別の2 WELを埋めるために、別の3ミリリットルを描きます各1mlとLS。
      注：細胞が連続的に沈殿しますので、マスター·チューブの連続的な混合が必要です。唯一の2つのウェルを満たすのに十分な量を描画すると、細胞は同様に、ピペットに沈降するので各ウェルに類似した細胞数を追加する必要があります。
    3. 可能細胞は、それらのクローン原性の可能性（未発表の観察）を変調する室温とCO 2濃度の懸濁液中に座っているため、細胞を大量に配布するために、急速に働きます。
    4. コロニーアッセイのためのウェルにそれらをピペッティングの行為の間に細胞の空間分布を最適化します。ゆっくりウェルの中央に最終細胞濃度を含有する懸濁液をピペットで行ってください。細胞が底に沈殿する前に運動を促進するために、プレートを与えないでください。円形の混合が効果的によく6日目に高い細胞密度と無数のコンフルエントコロニーを作るの周囲に細胞を遠心分離しますので、プレートを旋回しないでください。
      注：これは、懸濁液中の細胞でボリュームを導入した後、全く混合よりも少ないことが望ましいので、必要な場合以外は混ぜないでください。それは、細胞を混合する必要がある場合、それは平らな表面上に静止しながら垂直方向に前後にプレートを移動させることによってこれを行います。
    5. 6日間のメディアを変更せずに、37℃、5％CO 2で細胞をインキュベートします。 6日後のウェル中の細胞の小さな数を大幅に栄養またはサイトカイン組成も元の培地のpHには影響しません。
    6. 以下のようにアッセイの時間経過を設計します。1ミリリットル新鮮な培地、または新鮮な培地を含有してメディアを既存の置き換え1日目フィブロネクチンコーティングされた基層上で細胞をインキュベートし、FGF-2、以下のように6日目に0日ステイン細胞に10 ng / mlで1.4で）。 ）1.3で、以下のように、3日目に任意の実験的摂動を行っています。
  3. 分子シグナリングまたは接着分子の実験的摂動を設定
    1. 3日目に、100を追加します56;ウェルに1mLの培地に摂動剤の意図された最終濃度の10倍を含有する溶液のリットル。混在させないでください。さらに3日間37℃、5％CO 2で細胞をインキュベートし続けます。
      注：摂動剤は休止状態を支える役割を果たし得る阻害剤および接着分子、受容体または他の表面タンパク質、細胞内シグナル伝達経路の阻害剤、分子、因子、補因子または構造タンパク質のブロッキング剤の多様を含むことができます。
    2. 以下のように、6日目のコロニーを染色します。
  4. ステインコロニー
    1. 2％のエタノール/ 10mMのホウ酸ナトリウム（pHは9.0）溶液中で新たに作製した0.1％クリスタルバイオレットで培養中の6日後に染色細胞。吸引メディア、20分間各ウェルに1つmLのクリスタルバイオレット溶液を加えます。
    2. ウェル開口部が連続してタップを実行あふれるアイスバケツに鋭角に下にして、それらを浸漬することにより、プレートを洗浄シンク内の水。 、一度水中水平角にプレートを傾けよくダウン開いて、[1穏やかな流れる動きで除去する際に鋭角に倒します。
    3. ウェルの底に水がもはや青色でなくなるまで浸漬を2〜3回繰り返します。激しい洗浄はカウントとデータの誤りを大幅追加して、原因の実験的介入にあまり付着している細胞またはコロニーを除去することができます。
    4. それらに対応するラベルされたカバーに隣接する作業台の上にタオルの上に逆さにそれらを配置することで、一晩乾燥したプレート。
  5. コロニーをカウント
    1. インキュベーション、染色、乾燥の6日後に各ウェルの成長と休眠コロニーの数を数えます。倒立位相差顕微鏡で40倍の倍率で最適にコロニーを数えます。増殖する細胞に比べて非常に大きいサイズの形態学的外観で、成長している12以下の細胞のコロニーとして> 30細胞のコロニーをカウントし、大EXPA図1 7,15に示す割合を、核に大きな細胞質と細胞質nded。
      注：彼らは簡単休眠アッセイにおいて非常に頻繁ではないとして13-29細胞のクラスターが正常にカウントされません。摂動が成長しているか、休止状態の細胞のいずれかの成長の可能性をシフトなら、彼らをカウントすることができます。これらの結果は、生物学的に有意に相関することが必要になります。

免疫蛍光研究のための2クローン原性インキュベーション

  1. 細胞数/ 24ウェル実験に類似した表面積に対応するために、6ウェルプレート中/ウェル約7,500-8,000細胞に細胞数を調整します。
  2. 細胞の添加の前にイメージング研究のための6ウェルプレートの各ウェルベースにラウンド、滅菌、フィブロネクチンでコーティングされたカバースリップを置きます。 1.2で上記のクローン原性実験のために説明したように、各ウェルに3ミリリットルの容量でピペットで細胞を概説濃度で一度に2つのウェル）。
  3. 細胞をインキュベート上記のように1.2.4と1.2.5で6日間。 1.3にコロニーアッセイ手順で説明したように）、300μlの量の10倍の濃度で、3日目に摂動要因を追加します。
  4. 例えば、インテグリンα4、α5、α6、β1、β3、例えば、焦点接着複雑な分子FAK、パキシリンおよびビンキュリンのように接着分子を細胞に対する抗体で6日目の染色細胞は、このようなαチューブリンなどの運動性に関与するタンパク質、例えば、リン酸化Akt、ホスホERK、ホスホ-p38、ホスホJNK、例えば、または休眠におけるその役割のための調査の対象は、直接的または間接的のための標準的な技術を用いて、任意の他のタンパク質などのシグナル伝達経路のメンバー免疫蛍光染色。
    1. -20℃で1：アセトン/メタノール1鉗子6日修正でスライドを削除します 20分、空気乾燥のためにCを°。代替の固定剤、必要に応じてパラホルムアルデヒドのような、使用されてもよいです。 2分間fの0.1％トリトンX-100、0.1％クエン酸ナトリウムと透過化細胞又は細胞内抗原の検出。 PBSで細胞を洗浄します。
    2. 間接immunofluorecence染色、5％BSAを用いて室温で1時間または二次抗体が生成された種からの10％の免疫前血清でブロックスライドについて。
    3. 経路メンバーまたはPBSにメーカーが推奨する特定の希釈液に希釈した休眠におけるその役割のための調査の対象である任意の他のタンパク質のシグナル伝達、接着分子、焦点複雑な分子をセルに一次抗体と4℃で一晩インキュベートし、0.1％TRITON X -100。
    4. PBSで3回洗浄します。 2時間室温で蛍光体結合抗体でカバースリップをインキュベートします。一例として、アレクサフルオロ488ロバ抗マウスIgG抗体は、マウスモノクローナル一次抗体を検出することができます。マウントにはDAPIで退色防止剤を用いてガラススライド上に細胞側を下カバースリップ。マニキュアで周囲をシール。
    5. 直接免疫蛍光のために、BSAを行います）2.4.2に上記のようにブロックし、4℃で一晩蛍光体共役一次抗体とインキュベートします。 PBSで3回洗浄します。退色防止剤およびDAPIでスライドをインキュベートし、マニキュア液で密封します。
    6. 4でのアルミ箔とストアとカバースライドトレイ イメージングおよび写真撮影のためのC°いつまで数週間後に。 1,000倍の倍率でカメラを搭載した任意の蛍光顕微鏡イメージングシステムを使用して表示および写真の細胞。
    7. 繊維状アクチン染色のために、1％ウシ血清アルブミン（BSA）でブロックスライド30分間、20分間、室温でBODIPY FL-ファラシジン（緑色）又はローダミンファロイジン（赤）でインキュベートします。退色防止剤を添加し、上記のように密封します。

分子研究のための3クローン原性インキュベーション

  1. ウェスタンブロット
    1. fibronecに20,000細胞/ 60ミリメートルプレートおよび50,000細胞/ 100ミリメートルプレートのクローン原性密度でER +乳癌細胞MCF-7またはT47Dをインキュベート錫被覆された5％CO 2中37℃でプレート。
    2. 溶解物からのタンパク質のためのmgの量を必要とする分子研究のために75,000細胞/ 100ミリメートルプレートのわずかに高い密度で細胞をインキュベートします。ウェスタンブロットを用いた分子の研究のために、またはノーザンブロットのためのRNA単離のために十分なタンパク質を収集するために実験点につき10プレートまで使用。
    3. ゲルローディングベースの細胞数は、非常に異なるサイズの成長と休眠細胞におけるタンパク質の発現を比較するために必要な付属物です。トリプシン処理により細胞を回収し、代わりに単一のエッジのブレードを用いて細胞を掻きのウェスタンブロットのための溶解液を調製するために、0.2％トリパンブルーで、血球計数器で一定量をカウントします。
    4. 2分間10,000×gで遠心分離し細胞を、吸引により培地を除去し、200μlの溶解緩衝液を追加し、溶解緩衝液中で細胞を超音波処理し、タンパク質濃度を決定します。
    5. 細胞数によるタンパク質収量を分割することにより、細胞あたりのタンパク質の量を計算しますそれは、その発生量。タンパク質のa）の当量と同等の細胞数を表すb）のタンパク質の量の両方を表す別々のポリアクリルアミドゲルの各ウェルに溶解液をロードします。少なくとも25μgタンパク質を各ウェルにロードする必要があります。
      注：これは、サイズおよびタンパク質含有量（ 図1）において著しく異なる成長および休眠細胞間の比較を可能にします。
  2. フローサイトメトリー
    1. 3.1のように、トリプシン処理により100ミリメートルプレートからの細胞を収集し、標準的な蛍光活性化セルソーティング（FACS）によって分析すると、2.4で概説されるように、細胞内または細胞外のいずれかの抗原に対する一次または二次免疫蛍光染色を使用してプロトコル。
      注：抗体標識によって決定されるようにトリプシン処理により組織培養プレートから細胞を剥離すると、膜タンパク質の濃度に影響を与えません。

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結果

実験は、アッセイを再現するために行われました。実験の時間経過は、 図2Aに示されています。細胞を1日目にクローン原性密度でインキュベートし、FGF-2、新鮮な培地中では0日目に添加し、それらを染色し、コロニーを計数したときの細胞は6日目まで培養されます。システムに何らかの摂動が所望の10倍の最終濃度で100μlの容量で3日目に投与される。 図2Bは、成長と休眠コロニーの典型的な外観を示しています。増殖するコロニーは、大規模な細胞質/核比を有する増殖している細胞よりも何倍も大きい12以下の細胞を含む。 図2Cは、四重に実施し、典型的な実験結果を示している> 30細胞と休眠コロニーが含まれています。 、FGF-2の存在下で、クローンの大部分は休眠している間FGF-2を添加しない細胞の優勢な分布が成長するクローンで表されます。

> 図3は、摂動剤は、3日目の図に追加された実験の一例である「ontentはパンのRho阻害剤C3トランスフェラーゼとによりGTPアーゼのRhoファミリ...

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ディスカッション

我々のモデルは、骨髄中の休眠のいくつかの重要な要素で構成されています。それは、フィブロネクチン、骨髄の主要構成要素、FGF-2、成長因子が豊富に骨髄間質によって合成から成り、エストロゲンの長期間10に対する骨髄における休眠残る可能性が高いタイプである敏感な細胞を、構成されてい重く骨髄31,32とそれらの相互作用は、基層と主にクローン原性密度で細胞のインキュベーションの細胞外マトリックスに堆積。骨髄微小環境は、はるかに複雑であるが、特定の機構的な質問をするために必要に応じて、この単純なシステムは、多くの追加複雑さに構築することができます。

モデルは、細胞生物学的技術、分子技術およびインビボ技術を含め、多くの方法で増殖する細胞と休止状態とを比較するために使用することができます。細胞の表現型は、再クローニング、運動することによりアッセイすることができますおよび浸潤は、非接着性腫瘍が小球の形成36または特定の遮断抗体またはペプチド7を使用して微小環境との相互作用のため...

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開示事項

がん研究02から1140-CCR-E0および癌研究のためのルースエストロンゴールドバーグ記念（RW）に国防総省助成のDAMD17-01-C-0343とDAMD17-03-1-0524、ニュージャージー州委員会でサポートされています

謝辞

著者らは、開示することは何もありません。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
MCF-7細胞ATCCHTB-22
T47D細胞 ATCCHTB-123
BD BioCoat フィブロネクチン 24 ウェルクリアフラットボトム TC処理マルチウェルプレートコーニング354411
BD BioCoat フィブロネクチン 60 mm 培養皿コーニング354403
BD BioCoat フィブロネクチン 100 mm 培養皿コーニング354451
BD BioCoat 22x22mm #1 ヒトフィブロネクチンを均一に塗布したガラスカバースリップCorning354088
6ウェル組織培養プレートCellTreat229106
ダルベッコ修正イーグル 中高グルコース 10X パウダーコーニングライフサイエンス50-013-PB
熱不活性化、ウシ胎児血清血清 ソース インターナショナルFB02-500HI
0.25% トリプシン/2.21 mM EDTAコーニング25-053-CI
ペニシリン-ストレプトマイシン溶液、100XCorning30-002-CI
L-Glutamine、100x、液体Corning25-005-CI
組換えヒトFGF 基本的な研究開発D Systems234-FSE-025
Akt阻害剤(1L6-ヒドロキシメチル-カイロイノシトール-2-(R)-2-O-メチル-3-O-オクタデシル-sn-グリセロカーボネート)CalBiochem124005
LY294002 CalBiochem19-142Chenical PI3K阻害剤
C3トランスフェラーゼ 細胞骨格CTO3RhoA、RhoB、およびRhoCを阻害しますが、Cdc42やRac1
Y-27632二塩酸塩サンタクルスバイオテクノロジー129830-28-2
BODIPY FL-ファラシジン(緑) Molecular ProbesB607Fluorochrome for Fibrillar actin staining
BODIPY FL-Rhodamine phalloidin (red) Molecular ProbesR415Fluorochrome for Fibrillar actin staining
Alexa Fluor 488 Donkey anti-Mouse IgG Anti-Mouse IgG Antibody, ReadyProbes Reagent Molecular ProbesR37114
ProLong Gold Antifade Mountant with DAPI 分子プローブP-36931
はなどの関連GTPaseは阻害しません 

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