このプロトコルは、マウスの心臓および心臓弁機能の包括的な表現型のための心エコー検査アプローチの詳細な説明を提供します。
方法論記事
このプロトコルは、マウスの心臓および心臓弁機能の包括的な表現型のための心エコー検査アプローチの詳細な説明を提供します。
この原稿と付随するビデオの目的は、げっ歯類の心臓弁機能のイメージングに使用される方法とアプローチの概要を提供することであり、適切な麻酔方法、使用される心エコー検査ウィンドウ、画像取得のためのイメージング平面とプローブの向き、データ分析の方法、および心機能と弁膜機能の評価のための新しい技術の限界についての詳細な説明とともに説明します。 重要なことに、私たちはまた、前臨床動物モデルにおける弁疾患の病因についての洞察を得るために活用できる可能性のある、心臓および心臓弁イメージングにおけるいくつかの将来の研究分野を強調しています。 私たちは、マウスの心臓および心臓弁の機能を評価するための体系的なアプローチを使用すると、より堅牢で再現性のあるデータが得られるだけでなく、遺伝的に変更されたマウスおよび/または生理学的にストレスを受けたマウスで以前に過小評価されていた表現型の発見を促進することを提案します。
エージングは、心血管石灰化1の漸進的増加と関連しています。血行動態的に重要な大動脈弁狭窄症は、65 2歳以上の人口の3%に影響を及ぼし、さらには中程度の大動脈弁狭窄(3-4メートル/秒のピーク速度)を有する患者は、40%未満の5年無イベント生存率を持っています3。現在、そこに大動脈弁の石灰化の進行を遅らせるために有効な治療法はなく、外科的大動脈弁置換術は、高度な大動脈弁狭窄4のための唯一の可能な治療です。
大動脈弁石灰化の開始および進行に寄与するメカニズムのより深い理解を得ることを目的とした研究は、大動脈弁狭窄5、6を管理するための薬理学的および非外科的方法に向かって移動中の重要な最初のステップです。遺伝学的なLY-変更されたマウスは、種々の疾患に貢献し、今大動脈弁狭窄6、7、8の生物学を理解することを目的とした機構研究の最前線に来ているメカニズムの理解を開発する上で大きな役割を果たしてきました。アテローム性動脈硬化症や心不全、血管および心室機能を評価するための標準プロトコルは大部分がされているような他の心血管疾患とは異なり、マウスにおける心臓弁の機能のin vivoでの表現型に関連付けられている固有の課題は、十分に確立された-があります。最近のレビューは、多数のイメージングおよびげっ歯類9、10、11における弁の機能を評価するために使用侵襲的モダリティの長所と短所についての徹底的な議論を提供してきたが、今日まで、私たちはCOMPREを提供する出版物を認識していませんhensive、マウスでは心臓弁の機能を表現型のためのステップバイステップのプロトコル。
本稿の目的は、マウスにおける心臓弁の機能を表現型にする方法およびプロトコルを記述することです。すべての方法及び手順は、メイヨークリニック制度動物実験委員会によって承認されています。このプロトコルの主な構成要素は、麻酔の深さ、心機能の評価、および心臓弁の機能の評価を含みます。我々は、この報告書は、心臓弁疾患の分野の研究を追求に興味を持って研究者を案内するのに役立つだけでなく、この急速に成長している分野で、データの再現性と妥当性を確保するためのプロトコル標準化に関連する国内および国際的な対話を開始することを願っています。重要なことには、高解像度の超音波システムを使用して成功したイメージングは、基本Principでの理解を加工超音波検査の原理の知識(及び一般的に超音波検査で使用される用語)を必要とレ心臓生理学、およびげっ歯類における心機能の正確かつ時間効率の評価を可能にするために超音波検査での豊富な経験の。
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1.材料および装置(表1、図1)を準備
2.イメージングと麻酔の誘導のためにマウスを準備
注:Bモード/ 2-D、Mモード、ドプラ(スペクトルパルス波ドップラーおよびカラーフロードップラー画像)の3つの画像を取得する際に使用される超音波モダリティがあります。胸骨傍と頂端の窓( 図2)心臓及び心臓弁の画像を取得するために使用される二つの基本的なトランスデューサの位置があります。
4.大動脈弁の評価(AV)機能
注:大動脈弁機能のアセスメントは、バルブの定性評価( 例えば、知覚されるカスプ厚増加による弁石灰化にエコー輝度、およびプレゼンスやカラードプラを用いて、逆流ジェットの不在)とバルブ機能の定量的尺度を含む( 例えば、ピークtransvalvular速度およびカスプ分離距離)。
僧帽弁(MV)関数の5評価
注:僧帽弁機能の評価は、バルブの定性的な評価を( 例えば、当たりceivedカスプ厚起因弁石灰化、カラードップラーを用いて、逆流ジェットの存在または非存在)とバルブ機能の定量的な対策にエコー源性を増加させました。
右側心臓弁の機能の6評価
注:三尖弁及び肺動脈弁は、右側心臓弁を備えます。肺動脈弁は胸骨傍の長短軸の両方のビューにおいて可視化することができるが三尖弁を容易に、頂端の長軸像で可視化することができます。
心機能の7評価
注:心機能の評価は、左心室の収縮性の定性的な評価を( 例えば、駆出率、局所壁運動異常、および壁の知覚される厚さの目測)と左心室の定量的尺度機能( 例えば、駆出率、左心室重量、左心室の拡張機能、および心筋性能の指標)。
8.最終手順
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日常的に動物の心臓の超音波画像から得られる画像の例は、この原稿に含まれています。動物の胸にトランスデューサ配置の図が読者に変換器が記載されているように画像を取得するように配置されるの明確な理解を与えるために設けられています。超音波実験室セットアップの写真はまた、適切な装置、特に、使用される超音波トランスデューサと麻酔の方法の重要性を強調するために含まれています。 2D / Bモード、Mモード、カラードップラー、正常および異常な弁のディスプレイ、右心室および左心室と大動脈根が適切に標識されています。ひずみ速度イメージングが日常的に行われていないが、例も含まれています。
僧帽弁逆流は、S中に弁を横切って高い、通常、非層状血流速度(モザイク着色)することを特徴としますystole( 図5)。 ECGトレース中のQRS群の後に発生するMV全体の左心房、左心室から、このようなモザイクカラードップラーフローパターンの存在は、MRの...
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麻酔導入
適切な麻酔の導入および保守は、マウスの心臓弁の変化の正確な評価や心機能のために重要です。イソフルランによって誘発される麻酔の迅速な誘導と深い麻酔後にこの麻酔薬の比較的長いウォッシュアウト時間を考えると、我々は誘導のために、スタンドアロンの麻酔室を使用しないでください。上記で詳細に述べたように代わりに、動物を麻酔の比較的低濃度の麻酔の迅速かつ制御された誘導を可能にする麻酔コーンに直接導かれます。
マウスのほとんどの株は十分に1.5%未満のイソフルランで鎮静状態に残ります。心機能に対するイソフルランの累積的影響は密接しかし、監視する必要があり、および麻酔薬の濃度の小さな減少は、時間の経過とともに必要になることがあります。相互に、麻酔薬の濃度の小さな増分もねかもしれeded。 (麻酔の不十分な深さを示唆する)任意の移動のためにとHRの増加または減少のために動物を慎重に監視します。これは、麻酔の深さを迅速かつプロアクティブな管理を可能にします。
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著者らは開示するものは何もない。
この作業はNIHの助成金HL111121(JDM)およびTR000954))によって支援されました。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 高解像度超音波診断装置 | VisualSonics、Fujifilm | Vevo 2100 | |
| イソフルランディフューザー(1 L/min 100% O2 | VisualSonics、富士フイルム | N/A | |
| 小型マウス (550D) または大型マウス (400) 用トランスデューサーMicroScan | 、VisualSonics、富士フイルム | MS 550D、MS 400 | |
| 動物プラットフォーム | VisualSonics、富士フイルム | 11503 | |
| 高度な生理学的モニタリングユニット | VisualSonics、富士フイルム | N/A | |
| イソフルラン | テレル | NDC 66794-019-10 | |
| イソフルラン ディフューザーと 100% O2 | カスタム エンジニアリングされた社内 | -- | |
| 毛のかみそり | Andis スーパー AGR+ 獣医パック クリッパー | AD65340 | |
| 超音波ゲル | Parker Laboratories | REF 01-08 | |
| 電極ゲル | Parker Laboratories | REF 15-25 | |
| 粘着テープ | Fisher Laboratories | 1590120B | |
| ペーパータオル |
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