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方法論記事

成体マウスから洞房結節筋細胞の単離、培養、および機能解析のための方法

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DOI:

10.3791/54555

2016年10月23日

* These authors contributed equally

この記事について

サマリー

方法は、パッチクランプ電気生理学やイメージング研究のための成体マウスから洞房結節筋細胞(のSAM)の単離のために実証されています。単離された細胞を直接使用することができ、またはそのような遺伝的にコードされたレポーターとして、関心対象のタンパク質の発現を可能にするために、培養物中に維持することができます。

要約

洞房結節筋細胞(SAMは)自発的な活動電位(APを)を生成することにより、ビートそれぞれの心を開始し、心臓の自然のペースメーカーとして機能します。これらのペースメーカーAPは多数の膜電流と細胞内カルシウムサイクリングの協調活動を反映しています。しかし、SAMの中で自発的なペースメーカー活性を駆動する正確なメカニズムは、とらえどころのないまま。急性孤立したSAMは、心臓ペースメーカーの分子的基礎を分析するための実験のための不可欠な準備です。しかし、不明瞭な解剖学、複雑な顕微解剖、および気難しい酵素消化条件は急性孤立したSAMの普及を妨げてきました。また、方法は、タンパク質発現の研究​​のためにSAMの長期培養を可能にするために、最近まで利用できませんでした。ここでは、成体マウスからのSAMの単離のためのステップバイステップのプロトコルおよびビデオデモンストレーションを提供しています。この方法はまた、in vitroおよびin expressiのための成体マウスのSAMを維持するために実証されていますアデノウイルス感染を介した外因性タンパク質の上。これらの方法を介して調製急性単離し、培養したSAMは、電気生理学とイメージング研究の多様に適しています。

概要

ペースメーカー、心臓の洞房結節における筋細胞(洞房筋は、「SAMは」)、各ハートビートを開始するために、心筋を介して伝播自発的な、リズミカルな活動電位(APを)を生成します。多くの種から急性単離されたSAMを用いた実験は、ペースメーカー活性の発生に寄与メカニズムの解明のために不可欠でした。 SAMは、形態、機能、およびタンパク質発現の観点から、心房と心室の心筋での対応と実質的に異なる専門性の高い心筋細胞です。 SAMの中の自発的なAPの顕著な特徴は次のAP 1,2をトリガーするしきい値に膜電位を駆動する拡張期に自発的な脱分極です。この「ペースメーカー電位」は、「おかしな電流」(I f)は 、T-およびL型カルシウム電流、およびナトリウム-カルシウム交換体CURRを含む多くの異なった膜電流の協調活性に依存します筋小胞体3,4からのCa 2+放出によって駆動されるENT(I NCX)、。

急性単離したマウスのSAMはペースメーキングの研究に不可欠な実験の準備ですが、マウスSANの不明瞭な解剖学と小さいサイズが微妙な顕微解剖と組み合わせた酵素的および機械を必要とするため、マウスからのSAMの単離は、採用する挑戦的な方法することができます細胞の解離は慎重な最適化が必要。

ここでは正常にパッチクランプ記録5-8<....

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プロトコル

全ての動物手順はコロラドアンシュッツメディカルキャンパスの大学の施設内動物管理使用委員会によって承認されたプロトコルに従って行われました。下記の標準プロトコルは、年齢の2-3ヶ月の雄のC57BL / 6Jマウスを使用して最適化されています。

1.実験の事前にソリューション株式と消耗品を準備します

注:必要な機器および消耗品のための材料表を参照してください。

  1. 完全なタイロード、ローのCa 2+ / Mgの2+タイロード、変更されたクラフト-Brühe(KB)ソリューション、およびウシ血清アルブミン(BSA)解決策: 表1に示すように1 L以下の各溶液を準備します。すべてのソリューションのために超純ろ過、脱イオン水を使用してください。最大6ヶ月間、20℃で各50ミリリットルのアリコートへの溶液とストアを分割します。実験の直前に、個々のアリコートを解凍し、そして4時までの1週間保存6; C。
  2. 超純ろ過し、脱イオン水( 表1)中のNaClとのCaCl 2を溶解することにより10mMのNaClおよび1.8 mMのCaCl 2を適応ソリューションの50ミリリットルを準備します。最長6ヶ月間室温で保管してくださ....

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結果

ここで説明するプロトコルは、以前に別のパッチクランプ研究5-8種々のに適している成体マウスから自発的に活性のSAMを単離するために使用されてきました。また、プロトコルは、最大1週間培養物中に維持することができる単離されたSAMを可能にします。培養細胞への遺伝子導入は、アデノウイルス感染9を介して達成することができます。このセクションに示された結果は、我々の以前の研究から派生し、急性単離し、培養したSAMの特性の例として示されています。

図2に示されるよう 、自然発生的に活性なSAMは、最大6日間培養物中に維持することができます。培養した細胞は、有意な平均的な長さ、幅の変化、断面積、または培養の膜容量で、急性孤立したSAMのものと非常に類似している全体的な形態を保持します細胞は急性単離された細胞( - E .......

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ディスカッション

本論文では、成体マウスから完全に分化洞房結節筋細胞の単離および培養のための詳細なプロトコルを提示します。分離プロトコルは確実に即時の電気生理学的解析やその後の培養のいずれかに適した自然発生的にアクティブなマウスのSAMを生成します。同様のプロトコル(例えば、11,12,10,13-17参考文献を参照)、他の多くのグループによって報告されています。しかし、in vitroで成体マウスのSAMを維持するための我々のプロトコルは、特徴的な形態、自発的活動、および細胞の電気生理学的特性を保持し、タンパク質9のアデノウイルス送達を可能にします。

プロトコルの変更やトラブルシューティングのために、いくつかの重要なステップは、注意すべきです。最初の重要な要因は、劇的にSAMの数と質が与えられたpreparで単離し変更することができる消化酵素(ステップ1.4)の活性の有意なロット間変動であり、エーション。この変動は、典型的には、細胞数と健康を最大化するために、濃度および暴露時間は、いくつかの準備の過程でブラケットすべき多くの固有の最適化.......

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謝辞

原稿を批判的に読んでくださったクリスチャン・リッカート博士に感謝します。この研究は、National Heart Lung and Blood Institute(R01-HL088427)からCPへの助成金によって支援AG000279されました。内容は著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を表すものではありません。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
Sylgruard/エラストマーキットダウ コーニング184 SIL エラストキット 0.5KG
ホウケイ酸 9インチパスツールピペットフィッシャーサイエンティフィック13-678-20C
小型、丸底培養チューブフィッシャーサイエンティフィ352059
大型、丸底培養チューブコーニング14-959-11B
エラスターゼワージントン生化学LS002279
リベラーゼTMロシュ5401119001組織解離液
ヘパリンSAGENT ファーマシューティカルズ NDC 25021-400-10
マウスラミニンコーニングCB-354232
12 mm丸型ガラスカバースリップフィッシャー 12-545-80
24ウェル培養プレートフィッシャー08-772-1
Ad-mCherryベクター バイオラボ1767
Ad-eGFPベクター バイオラボ1060
プラスチック、使い捨てトランスファーピペットフィッシャーサイエンティフィック
マイクロハサミフィッシャーサイエンティフィ17-467-496
デュモン #4鉗子Robozの器械RS-4904
ティッシュ鉗子Robozの器械RS-8164
の解剖の虹彩はさみWPI、Inc.
解剖ピンファインサイエンスツール26002-20
NaClシグマ71376
KClシグマ60128
KH2PO4Sigma60353
HEPESSigma54457
グルコースシグG0350500
MgCl<サブ>2シグマM8266
CaCl<サブ>2シグマC1016
タウリングマT0625
BSAシグマA2153
K-グルタミン酸シグマG1501
K-アスパラギン酸シグマA6558
MgSO4SigmaM7506
クレアチンSigmaC0780
EGTASigmaE3889
Mg-ATP ΣA9187
アムホテリシンBFisher Scientific1397-89-3
イソプロテレノールカルバイオケム
Media199ΣM4530
2,3-ブタンジオン一基 (BDM)ΣB0753
ウシ胎児血清 (FBS)シグマSH30071
ウシ血清アルブミン (BSA)ΣA5611
インスリン  シグマI3146
トランスフェリンシグマI3146
セレンシグマI3146
ペニシリンGE ヘルスケアSV30010
ストレプトマイシンハイクロンSV30010
ックック 501264マ シ 420355

参考文献

  1. Irisawa, H., Noma, A. Pacemaker currents in mammalian nodal cells. J Mol Cell Cardiol. 16 (9), 777-781 (1984).
  2. DiFrancesco, D. Pacemaker mechanisms in cardiac tissue. Annu Rev Physiol. 55, 455-472 (1993).
  3. Mangoni, M., Nargeot, J.

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再版と許可

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