ヒト僧帽弁のタンパク質組成は、未分化であり、その分析は細胞密度が低く、したがって低タンパク質生合成によって複雑であるため、まだ未知である。この研究は、僧帽弁プロテオームの分析のためにタンパク質を効率的に抽出するためのプロトコールを提供する。
このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。
この記事について
サマリー
要約
細胞のプロテオームの解析は、複雑な生物システムに存在するタンパク質の大規模な同定と定量を可能にする技術の開発による疾患の根底にある分子メカニズムを解明するのに役立ちます。プロテオームアプローチから得られた知識は、疾病の根底にある病原性メカニズムをより良く理解し、新規の診断および予後の疾患マーカーの同定を可能にする。しかし、心臓僧帽弁は、プロテオグリカンおよびコラーゲン富化細胞外マトリックスの細胞性が低いため、プロテオーム分析のための非常に困難なサンプルである。これは、全体的なプロテオーム分析のためにタンパク質を抽出することを困難にする。この研究は、定量的プロテオミクスおよびイムノブロッティングのような後続のタンパク質分析と互換性のあるプロトコールを記載する。これにより、データの関連性を考慮することができますgタンパク質の発現を、定量的mRNA発現および非定量的免疫組織化学的分析に関するデータと比較した。実際、これらのアプローチは、一緒に実施されると、mRNAから翻訳後タンパク質改変まで、疾患の根底にある分子メカニズムのより包括的な理解につながるであろう。したがって、この方法は、心臓弁の生理病理学の研究に関心のある研究者に関連する可能性がある。
概要
最近の証拠は、mRNA合成後に生じる多くの調節機構の役割の理解を変化させている。実際、翻訳、転写後およびタンパク質分解プロセスは、タンパク質の存在量および機能を調節することができる。転写産物レベルがタンパク質存在量の主な決定因子であると仮定して、mRNA濃度が対応するタンパク質のプロキシであると言うドグマは部分的に改訂されている。細胞1,2内のタンパク質を調節するために起こる。
さらに、タンパク質は最終的に細胞の機能を決定し、したがって自己分泌、傍分泌および内分泌因子に応答して動的変化を起こすことができるその表現型を指示する。血液媒介メディエーター;温度;薬物治療;病気が発症する。このように、タンパク質レベルに焦点を当てた発現解析は、プロテオームの特徴を明らかにするとともに、疾患病因の一部として起こる重大な変化を解明するのに有用である3 。
したがって、既存の技術的課題にもかかわらず、プロテオミクスが健康状態や病状を明らかにする機会が大いにあります。プロテオミクスが貢献できる研究の特に有望な分野には、以下のものが含まれる：任意のレベル（ すなわち、細胞全体または組織、細胞内コンパートメントおよび生物学的液体）におけるタンパク質発現の変化の同定;疾患の診断および予後に有用な新規なバイオマーカーの同定、検証および検証;薬効と毒性の評価だけでなく、治療目的でも使用できる新しいタンパク質標的の同定4 。
複雑さを捉えるプロテオームは技術的な課題である。現在のプロテオミクスツールは、変化したタンパク質レベルの同定、定量化、および検証のための大規模で高スループットの分析を行う機会を提供する。さらに、最も豊富なタンパク質によって引き起こされる干渉を回避することを目的とする分画および濃縮技術の導入は、最も豊富でないタンパク質を含むことによってタンパク質同定を改善した。最後に、プロテオミクスは、タンパク質機能の重要なモジュレーターとして徐々に出現する翻訳後修飾の分析によって補完されてきた。
しかし、分析中の生物標本における試料調製およびタンパク質回収は、プロテオミクスのワークフローにおける制限的なステップのままであり、潜在的な落とし穴の可能性を高めます5 。実際、最適化されなければならない分子生物学技術の大部分において、最初のステップは、組織ホモジナイズイオンおよび細胞溶解、特に増幅方法が存在しない低濃度のタンパク質の分析中に起こる。さらに、タンパク質の化学的性質は、それら自身の回復に影響を及ぼす可能性がある。例えば、高度に疎水性のタンパク質の分析は、等電点電気泳動の間に容易に沈殿するため、膜貫通タンパク質はほとんど不溶性であるため、非常に難しい（参考文献5で検討されている）。さらに、組織組成の変動性は、普遍的な抽出方法を開発する上で重要な障壁となる。最後に、臨床検体のほとんどすべてが限られているため、最小限の検体量で最大の回収率と再現性でタンパク質を調製することが不可欠です。
この研究は、プロテオーム分析のための非常に困難なサンプルである、正常ヒト心臓僧帽弁からのタンパク質抽出のための最適化されたプロトコールを記載する。正常な僧帽弁は、心臓の左心房と左心室との間に横たわるレックス構造（ 図1 ）。心房から心室への血流を制御し、逆流を防止し、全身への適正な酸素供給を保証し、それによって十分な心拍出量を維持するのに重要な役割を果たす。しかし、それはしばしば細胞性が低く、主に細胞外マトリックス中の成分が少ない「不活性」組織であると考えられている。これは、正常な状態では、常在性の弁間質細胞（VIC）が低いタンパク質生合成速度で静止表現型を示すためである7 。
しかしながら、病理学的状態では、海綿体におけるVICの数が増加し、それらのタンパク質合成が他の機能的および表現型の変化と共に活性化されることが実証されている8 。したがって、驚くべきことではない文献は、増加した数の活性化VICが同定されたタンパク質の比較的高い数を説明し得る病理学的僧帽弁9,10の分析に焦点を当てている。
結論として、本プロトコールは、僧帽弁タンパク質成分の研究を通して、僧帽弁疾患に関与する病原機構の理解を発展させるのに役立つ可能性がある。事実、根底にある病理学的プロセスのより深い理解は、現在の介入適応症が血行力学的考察に主に基づいている弁疾患の臨床管理を改善するのに役立つ可能性がある。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
プロトコル
このプロトコルでは、正常な心エコー検査のパラメーターにかかわらず、技術的または機能的理由のために、臓器移植から除外された多臓器ドナーからの多臓器外植片（4〜12時間の冷虚血時間、平均6±2時間）の間にヒト心臓を収集する。彼らは、大動脈弁および肺動脈弁の銀行業務のために、ミラノの心血管組織バンクMonzino Cardiologic Centre（ミラノ、イタリア）に送られる。僧帽弁後小葉は臨床目的では使用されないので、ドナーの親族からインフォームドコンセントが得られた後、大動脈弁および肺動脈弁の隔離中に収集される。移植および研究のための組織は、親の同意の後にのみ収集される。倫理委員会のガイドラインに従い、人間の臨床使用（ すなわち、微生物学的、機能的および血清学的問題）に適していない場合にのみ、同意書上で心臓組織の使用を認可する（またはしない）モンティーノ心臓病センター。
1.僧帽弁の準備
- 臓器の外植後（冷虚血時間は4〜12時間）、できるだけ早くヒト僧帽弁を採取する。
- クリーンルームでは、冷たい（4℃）溶液（ すなわち、生理食塩水または平衡培地EurocollinsまたはWisconsin）を含む輸送用バッグから心臓を取り除く。それをバケツに入れて、バルブの準備を進めるために、バイオセーフティキャビネット（バイオハザード気流、クラスA、グッドマニュファクチャリングプラクティス（GMP）分類）に入れてください。
- キャビネット内の滅菌使い捨てドレープに心臓を置きます。滅菌使い捨てメスを使用して、心臓をその主軸に対して垂直に、心尖部から約4cm離れた左右の心室のレベルで完全に切断する。
- 左心房の屋根を表示するために、上行大動脈と肺動脈を動かす。
- 滅菌オートクレーブ可能な鉗子とピックを使用して、左耳の周りを僧帽弁を目に見えるようにし、大きな僧帽弁尖（前側）と小さい僧帽弁葉（後側）を識別することを可能にする。
注：前側および後側の交連は、前尖および後部の境界を画定する。 - 滅菌オートクレーブ可能なはさみおよび非外傷性の鉗子を使用して、左心房および僧帽弁全体の周囲の心室壁の厚さを切開する。
- 大動脈弁の連続性を確認する。
注：左心室には、僧帽弁全体と腱索が含まれています。 - 前僧帽弁小葉を後僧帽弁小葉から分離し、後尖を脳室の挿入に沿って切断する（交連）。
- 生理食塩水中の後弁膜を洗浄する。リーフレットを小片（<1 cm 2 ）に切断し、個々にアルミホイルで包んでください。液体窒素でそれらをスナップフリーズする。
注意：液体窒素を使用する場合は、組織の安全手順に従ってください。- 手順の最後に、70％イソプロピルアルコール溶液と6％過酸化水素水でキャビネットのテーブルを衛生化してください。
2.タンパク質抽出
- 鉗子を使用して、液体窒素に保存されたサンプルをピックアップし、直ちにアルミ箔に包みながらドライアイス上に置きます。移送中にサンプルを融解させないでください。
- 粉砕する前に、液体窒素（約500mL）を入れたDewarフラスコに入れることによって、粉砕システム（ 例えば、 CryoGrinder）の磁器/ジルコニウムモルタルおよび乳棒を試料とともに冷やす。
注意：液体窒素を使用するときは、組織の安全手順に従ってください。 - ドライアイスを入れたポリスチレンボックスに乳鉢と乳棒を入れます。サンプルをアルミホイルから取り出し、モルタルに入れます。
- グラインドt彼は乳棒を回転させるためにドライバーを使用して、モルタルに対して大きな乳棒で15-20回サンプリングします。粉砕プロセスの間、予め冷却したスパチュラの先端と試料を混合する。
- 小さな乳棒で繰り返します。
- チューブを反転させ、モルタルの上に置き、それらを一緒に反転させてサンプルをチューブに移動させることによって、前に計量したチューブ（ 例えば、 15mL遠心チューブ）に地上サンプルを移す。予備冷却されたスパチュラを使用して、モルタルからすべての材料を回収する。
- 移送中のサンプル解凍を避けるために、サンプルをドライアイス上に置いてください。
- サンプルの正味重量を計算する。
- 各サンプルの後に乳鉢と乳棒をきれいにし、オートクレーブまたは200°Cで2時間加熱することによってそれらを除染する。
- 粉末サンプルを遠心分離管からホモジナイザーのガラス管に転倒させて移す。
- ろ過された尿素バフを加える10mgの粉末組織につき200μLの尿素緩衝液をガラス管に添加した（8M尿素、2Mチオ尿素、4％w / v CHAPS、20mMトリス、および55mMジチオトレイトール）。
注記：遠心チューブに残っている残留粉末サンプルは、計算された量の尿素バッファーの一部を使用して回収することができます。 - ホウケイ酸ガラス乳鉢およびポリテトラフルオロエチレン（PTFE）乳棒を備えた撹拌機を用いて試料を均質化する。サンプルをゆっくりと捻るような動き（1,500 rpm）で10回押します。
- 上清を回収し、それを清潔な1.7mL遠心管に移す。新たな尿素緩衝液で残りの試料を再度抽出し、最初の抽出の間に使用した容量の半分を加える。
- 手順2.10を繰り返します。
- 上清を回収し、それをステップ2.11の上清と合わせる。合わせた上清をチューブローテーター上に30分間置く。
- 13,000 xgおよび4℃で30分間チューブを遠心分離する。
- 上清を回収するBradfordタンパク質アッセイを用いて、製造業者の指示に従ってタンパク質濃度を測定する。サンプルを使用するまで-80℃で保存します。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
結果
ウレア緩衝液中のタンパク質の抽出および溶解は、等電点電気泳動（2次元電気泳動（2-DE） 11および液相等電点電気泳動（IEF） 12 ）に基づくプロテオーム法およびLaemmli緩衝液13での希釈後のイムノブロッティングプロテアーゼ阻害剤カクテル14を含有する。
ゲルフリー質量分析法（ すなわち、データ非依存性質量分析（LC / MS E ）および2次元LC / MS E （2D-LC / MS E ）に結合された液体クロマトグラフィー）尿素およびチオ尿素を除去するためにさらに処理される必要があり、これはその後のタンパク質消化および液体クロマトグラフィー分離を妨害する可能性がある...
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
ディスカッション
このプロトコールの1つの重要なステップは、試料を凍結させ、粉砕システムを冷却するために液体窒素を使用することである。液体窒素の使用は生物分解を防ぎ、パウダー化を効率的に行うことができますが、安全な取り扱いのためには特別な訓練が必要です。
このプロトコールでは、標準的なモルタルおよび乳棒から小さなサンプルを回収することが困難であるため、サンプル粉砕用の粉砕システムが特徴です。この場合、小さな試料はモルタル表面上に微細な粉末として広がり、収集が困難になる。別の利点は、グラインダが電動化され、再現可能な方法でより多くのサンプルを処理することができ、疲労を増やさないことである。粉砕機の使用に関する1つの制限は、乳棒がモルタルに対して効果的に押されるためには小さくなければならない試料のサイズ（100mg以下）であることである。さらに、粉砕機の構成要素は、洗浄のための使用の間に室温に温めなければならない g。結果として、手順は時間がかかり、多くのサンプルが毎日処理される場合、多くのセットが必要となる。
さらなる重要なステップは...
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
開示事項
著者は何も開示することはない。
謝辞
イタリアの保健省はこの研究を支持した（RC 2013-BIO 15）。彼女の優れた技術的支援のためにBarbara Micheliに感謝します。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
材料
| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 生理食塩水 | 0.9 % NaCl | ||
| Eurocollins A | SALF | 30874046 | バランスの取れた臓器の輸送媒体。400 mLのEurocollins Aと100 mLのEurocollins Bを組み合わせて、バランスの取れた培地を得ます Eurocollins |
| Eurocollins B | SALF | 30874022 | Balanced organ's transport medium.400mLのユーロコリンズAと100mLのユーロコリンズBを組み合わせて、バランスの取れた培地を得る ユーロコリンズ |
| ウィスコンシン | ブリッジライフ | RM/N 4081 | バランスの取れた臓器の輸送媒体 |
| バイオハザード垂直流空気 | バーディノーラ | クラスA GMP分類 | |
| デュワーフラスコ | サーモサイエンティフィック | ナルジーン 4150-1000 | |
| クライオグラインダーシステム | OPS診断 | CG 08-01 | 乳鉢、乳棒、ドライバーを含むグラインダーシステム |
| ステンレス製鉗子 | |||
| ステンレス製ヘラ | |||
| 使い捨て滅菌メス | Medisafe | MS-10 | |
| ステンレス製ハサミ | オートクレーブ可能 | ||
| ステンレス製ピック | オートクレーブ可能 | ||
| 使い捨て滅菌ドレープ | Mon&Tex | 3.307.08 | |
| イソプロピルアルコール | |||
| 過酸化 | 6% 過酸化水素 | ||
| マイクロピペット、1 mL、チップ | |||
| 15 mL 遠心分離管 | VWR 国際 | 9278 | |
| 1.7 mL 遠心分離管 | VWR国際 | PIER90410 | |
| 尿素緩衝液 | 8 M尿素、2 Mチオ尿素、4 % w / v CHAPS、20 mM Trizma、55 mM ジチオトレイトール | ||
| 尿素 | Σaldrich | U6504-1KG | 尿素緩衝液に使用する |
| チオ尿素 | Σaldrich | T8656 | 尿素緩衝液 |
| CHAPS | Σaldrich | C3023-5GR | 尿素緩衝液に使用する |
| ジチオトレイトール | シグマ アルドリッチ | D0632-5G | 尿素緩衝液 |
| シリンジ 50 mL | PIC | 尿素緩衝液 | |
| 0.22 µ のろ過に使用。mフィルター | ミリポア | SLGP033RB | 尿素緩衝液 |
| PFTE乳棒、2mL | Kartell | 6302 | Potter-Elvehjemホモジナイザーの一部 |
| ホウケイ酸ガラスモルタル | Kartell | 6102 | Potter-Elvehjemホモジナイザーの一部 |
| 攪拌 | VELP scientifica | Stirrer DLH | Potter-Elvehjem |
| ブラッドフォードタンパク質アッセイによる均質化に使用されます | バイオ・ラッドの研究所 | 5000006 | |
| チューブローテーター | Pbi International | F205 | |
| 液体窒素 | |||
| アルミホイル | |||
| アイス | |||
| ポリスチレンボックス | |||
| ドライアイス | |||
| 遠心分離機 | 1.7 mL遠心チューブの遠心分離用(13,000 x g | ||
| Freezer -80°);C | |||
| 精密バランス | |||
| オートクレーブ | 滅菌用 | ||
| 液体窒素 | |||
| 手袋 | |||
| プロ仕様の強制換気と自然空気対流オーブン | 滅菌用 | ||
| プロテアーゼ阻害剤カクテル | Sigma aldrich | P8340-5ML | 100X solution |
| ProteoExtract Protein Precipitation Kit | Calbiochem | 539180 | |
| RapiGest | Waters | 186001861 | |
| Cytoscape | www.cytoscape.org version 2.7 | Gene Ontology analysis | |
| BiNGO | http://apps.cytoscape.org/apps/bingo | version 3.0.3 | プラグイン遺伝子オントロジー解析用 |
| AlphaB Crystallin/CRYAB Antibody Novus | Biologicals | NBP1-97494 | CryABに対するマウスモノクローナル抗体 |
| Septin-11抗体 | Novus Biologicals | NBP1-83824 | セプチン-11に対するウサギポリクローナル抗体 |
| FHL1 | Novus Biologicals | NBP-188745 | FHL-1 |
| Dermatopontin抗体に対する | Novus Biologicals | NB110-68135 | Rabbit polyclonal antibody against dermatopontin |
| ヤギ 抗マウス IgG HRP | Sigma aldrich | A4416-0.5ML | 免疫ブロッティング用二次抗体 |
| ヤギ 抗ウサギ IgG HRP | バイオ・ラッド ラボラト | 170-5046 | 免疫ブロッティング用二次抗体 |
参考文献
- Vogel, C., Marcotte, E. M. Insights into the regulation of protein abundance from proteomic and transcriptomic analyses. Nat Rev Genet. 13 (4), 227-232 (2012).
- de Sousa Abreu, R., Penalva, L. O., Marcotte, E. M., Vogel, C. Global signatures of protein and mRNA expression levels. Mol Biosyst. 5 (12), 1512-1526 (2009).
- Hanash, S. Disease proteomics. Nature. 422 (6928), 226-232 (2003).
- Ahram, M., Petricoin, E. F. Proteomics Discovery of Disease Biomarkers. Biomark Insights. 3, 325-333 (2008).
- Chandramouli, K., Qian, P. Y. Proteomics: challenges, techniques and possibilities to overcome biological sample complexity. Hum Genomics Proteomics. 2009, (2009).
- Singleton, C. Recent advances in bioanalytical sample preparation for LC-MS analysis. Bioanalysis. 4 (9), 1123-1140 (2012).
- Williams, T. H., Jew, J. Y. Is the mitral valve passive flap theory overstated? An active valve is hypothesized. Med Hypotheses. 62 (4), 605-611 (2004).
- Rabkin, E., et al. Activated interstitial myofibroblasts express catabolic enzymes and mediate matrix remodeling in myxomatous heart valves. Circulation. 104 (21), 2525-2532 (2001).
- Martins Cde, O., et al. Distinct mitral valve proteomic profiles in rheumatic heart disease and myxomatous degeneration. Clin Med Insights Cardiol. 8, 79-86 (2014).
- Tan, H. T., et al. Unravelling the proteome of degenerative human mitral valves. Proteomics. 15 (17), 2934-2944 (2015).
- Banfi, C., et al. Proteome of platelets in patients with coronary artery disease. Exp Hematol. 38 (5), 341-350 (2010).
- Banfi, C., et al. Proteomic analysis of human low-density lipoprotein reveals the presence of prenylcysteine lyase, a hydrogen peroxide-generating enzyme. Proteomics. 9 (5), 1344-1352 (2009).
- Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L., Randall, R. J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem. 193 (1), 265-275 (1951).
- Banfi, C., et al. Very low density lipoprotein-mediated signal transduction and plasminogen activator inhibitor type 1 in cultured HepG2 cells. Circ Res. 85 (2), 208-217 (1999).
- Brioschi, M., et al. Normal human mitral valve proteome: A preliminary investigation by gel-based and gel-free proteomic approaches. Electrophoresis. 37 (20), 2633-2643 (2016).
- Brioschi, M., Lento, S., Tremoli, E., Banfi, C. Proteomic analysis of endothelial cell secretome: a means of studying the pleiotropic effects of Hmg-CoA reductase inhibitors. J Proteomics. 78, 346-361 (2013).
- Sun, S., Zhou, J. Y., Yang, W., Zhang, H. Inhibition of protein carbamylation in urea solution using ammonium-containing buffers. Anal Biochem. 446, 76-81 (2014).
- Rabilloud, T., Adessi, C., Giraudel, A., Lunardi, J. Improvement of the solubilization of proteins in two-dimensional electrophoresis with immobilized pH gradients. Electrophoresis. 18 (3-4), 307-316 (1997).
- Santoni, V., Molloy, M., Rabilloud, T. Membrane proteins and proteomics: un amour impossible? Electrophoresis. 21 (6), 1054-1070 (2000).
- Shechter, D., Dormann, H. L., Allis, C. D., Hake, S. B. Extraction, purification and analysis of histones. Nat Protoc. 2 (6), 1445-1457 (2007).
- Fujiki, Y., Hubbard, A. L., Fowler, S., Lazarow, P. B. Isolation of intracellular membranes by means of sodium carbonate treatment: application to endoplasmic reticulum. J Cell Biol. 93 (1), 97-102 (1982).
- Gorg, A., Weiss, W., Dunn, M. J. Current two-dimensional electrophoresis technology for proteomics. Proteomics. 4 (12), 3665-3685 (2004).
- Mann, M., Kelleher, N. L. Precision proteomics: the case for high resolution and high mass accuracy. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (47), 18132-18138 (2008).
- Thakur, S. S., et al. Deep and highly sensitive proteome coverage by LC-MS/MS without prefractionation. Mol Cell Proteomics. 10 (8), M110.003699(2011).
- Loardi, C., et al. Biology of mitral valve prolapse: the harvest is big, but the workers are few. Int J Cardiol. 151 (2), 129-135 (2011).
- Schoen, F. J. Evolving concepts of cardiac valve dynamics: the continuum of development, functional structure, pathobiology, and tissue engineering. Circulation. 118 (18), 1864-1880 (2008).
- Lelovas, P. P., Kostomitsopoulos, N. G., Xanthos, T. T. A comparative anatomic and physiologic overview of the porcine heart. J Am Assoc Lab Anim Sci. 53 (5), 432-438 (2014).
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
再版と許可
タグ
