方法論記事

アントラーとシカの長命の体の成長の遺伝と環境の相対的な効果の評価のためのプロトコル

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DOI：

10.3791/56059

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2017年8月8日

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Wildlife, Fisheries and Aquaculture, Mississippi State University, 2Department of Natural Resource Management, South Dakota State University, 3Mississippi Department of Wildlife, Fisheries and Parks

この記事について

サマリー

人口レベルの遺伝学や栄養物; に関連するシカの集団間の表現型の違い肥えた野生では困難であります。このプロトコルでは、栄養の変化が除去された制御研究の設計方法について説明します。男性オジロジカの表現型変異が遺伝学よりより栄養によって限られたがわかった。

要約

シカの表現型は、2 つのカテゴリのいずれかに配置できる: 効率、贅沢な形態成長、高級、大型武器と体の成長を促進する生存を促進します。同じ種の個体数は、環境条件によって各々 の表現型を表示します。男性オジロジカ (ジューテリウムで子鹿) の枝と体サイズ ミシシッピ州、米国の地形の地域によって異なりますが、栄養的な品質の地域変動と相関が強くがネイティブ株式、返品前の努力からの人口レベルの遺伝学の影響は無視できません。このプロトコルでは、年齢や栄養などの表現型に影響を与えるその他の要因が制御されます制御研究の設計方法について説明します。我々 は、ミシシッピ州、米国ミシシッピ州大学さびたドーキンス記念鹿単位に 3 つの地形領域から 1 歳 6 か月フォーンズ野生で捕獲された妊娠した女性をもたらした。子孫の世代別応答と母性効果を評価することの第二世代を生成する同じ地域から鹿を飼育されました。すべての鹿は、同じ高品質 (20% 粗蛋白質鹿ペレット) ダイエット広告自由を食べた。我々 は一意に各新生児をマークし、体の質量、後ろ足の足と全身の長さを記録しました。各後続の秋はリモート注射を介して個人を鎮静し、同じ津雲プラス大人の鹿の角をサンプリングします。最初から角のサイズ (地域的変動はもはや存在しない) の完全な補償と体重 (地域的変化がいくつかの証拠) 第二世代の明らかの部分的な補償の第二世代のサイズにすべて津雲が増加したことがわかった。表示角サイズの 40% の増加、および野生の収穫された相手に比較すると体の質量の 25% の増加について私たちの最も貧しい品質土壌地域に由来する 2 番目の世代の男性。ワイルド男性オジロジカ ミシシッピ州での表現型変異はより人口レベルの遺伝学より栄養価の違いに関連が示唆されました。

概要

母親の妊娠および授乳期に経験する環境要因は彼女の子孫の表現型は、遺伝子型1,2,3の独立に影響を与えます。質の低い環境に生息する母親が子供を産む効率表現型 (小さな角と体サイズ4) を示すに対し可能性が高い高品質な環境に生息する母親 (大きな枝角と体サイズ4)、高級表現型を示す子孫が生成されます。したがって、高品質の環境で永続化が子孫の生殖機会5,6,7、8に直接影響を与えるし、母の包括適応度に直接な影響を及ぼす可能性のある大規模な表現型特性を持つ男性の子孫を産む母できます。

栄養イチイ (熊の胆、 Ursus arctos9; 全体表現型特性に直接影響がLiasis fuscusI10;都 michahellis11) ミシシッピ州、米国におけるオジロジカの表現型に影響を与える可能性がありますいくつかの要因。角と本体のサイズが12他の人と比較して約 3 分の 1 いくつかの人口のために大きいです。このバリエーションの飼料品質13,14; と相関が強い最も大きい男性は、飼料の最高の品質と地域で発見されます。ただし、ミシシッピ州のオジロジカの歴史的な復興は遺伝的ボトルネックや創始者効果15,16オジロジカの表現型で観測された局所的な値変動のいくつかを説明するかもしれないまた、部分的につながっている可能性があります。

我々 は野生で捕獲されたオジロジカ、男性表現型が遺伝学人口レベルによって制限されているかどうかを評価することができたの栄養の品質管理に使用するプロトコルを提供します。このプロトコルも母性効果を遅れているかどうかを評価することができました私たちの集団に存在していた。私たちの制御設計は栄養制限3,17プロキシとして環境変数の使用に限定されている無料の至るまで人口に調査に優先されます。私たちの制御設計は、潜在的な慢性的なストレス社会に関連する相互作用を似たような住宅と畜産の実践にさらされているすべての個人と一定に保たれるよう、その他の変数もできます。さらに、ため栄養生活史の他の側面に直接影響に至る再生サバイバル18,19栄養の制御により哺乳類の生活史の側面に影響を与える他の変数を評価するために調査官。類似したプロトコルは、(例えば、 20,21) 北アメリカを渡る他の有蹄類の生活史の側面に関連する質問を評価するために記載されています。

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プロトコル

倫理規定：すべての捕獲、ハンドリング、および標識技術は、プロトコル04-068、07-036、10-033、および13-034に基づき、ミシシッピ州立大学の機関動物ケアおよび使用委員会によって承認されました。

1. 捕獲地点の設定、野生のオナガシカの固定および輸送

  1. Deer Management Assistance Program22に登録されている公有地および私有地を特定し、米国ミシシッピ州の3つのソース地域全体に29箇所以上の捕獲地点を設置する。
    1. 地域個体群に存在する遺伝的変異の範囲を確実に捉えるため、各ソース地域内で複数の捕獲場所を特定する。
    2. 注：ここでソース地域としたのは、米国ミシシッピ州の総陸地面積の約17%を占め、農業を主要な土地利用とする高品質な土壌地域とされるデルタ地域23,24である。すべての研究動物は、O. v. virginianusの分布範囲内25の同地域から捕獲された。その他の地域には、米国ミシシッピ州の総陸地面積の約14%を占め、中品質な土壌地域とされるThin Loess地域（上部および下部Thin Loessの合算）が含まれる。Thin Loess地域においても農業が主要な土地利用であるが、デルタ地域ほど一般的ではない23,24。すべての研究動物は、O. v. virginianusの分布範囲内21の同地域から捕獲された。最後に、Lower Coastal Plain（LCP）土壌地域はミシシッピ州の約22%を占め、低品質な土壌地域に分類される。LCPの主な土地利用は、松材の生産および家畜の放牧である23,24。また、LCPはO. v. osceolaの地理的分布と重複しており、6つのソース個体群のうち4つがこの分布から21 km以内にあった25。この亜種は、O. v. virginianusよりも小型であると記述されている26。

土壌供給地域の地図。デルタ、下部沿岸平野、薄いレス；地理図。
図 1: 供給集団。米国ミシシッピ州において、妊娠中の母親および幼獣を捕獲した地形地域。この図は参考文献31から改変したものである。こちらをクリックして、この図の拡大版を表示してください。

  1. 以下の基準を満たす潜在的な捕獲地点を選択する。すなわち、シカの移動に適した生息地の特性、アクセス可能な道路への近接性、および調査エリア全体への分散配置である。
    注：捕獲地点は、捕獲担当者が身を隠せる場所でなければならない。
    1. 約 10 kg の殻付きトウモロコシを餌として撒いてシカを誘引し、餌の消費量および動体検知カメラで撮影されたシカに基づいて利用状況を評価する。5〜7 日以内にシカが餌場に現れない場合は、代替地点に移動させる。
  2. 捕獲時には、身を隠した「スタンド（待機所）」に座る。
    1. 餌の山の風下約 20 m にスタンドを設置する。その際、餌に近づくシカに捕獲担当者の臭いが感知されにくくなるよう、卓越風の方向を考慮すること。
      注：高所スタンドが強く推奨され、安全ハーネスの着用が必須である。スタンドには市販の様々なタイプがあり、個人の好みに応じて使い分けられる。例えば、固定式スタンドは、ストラップで樹木に固定された座席とアクセス用の梯子を備えている。ポータブル昇降式スタンドは捕獲担当者が持ち運ぶことができ、捕獲地点に到着してから特定の樹木を選択できるため、機動性が高い。ただし、ポータブル昇降式スタンドは、選択した高さまで枝のない真っ直ぐな樹木での使用に限られる。
  3. 3 cc の無線テレメトリーダーツを装着したダーツガンを使用し、tiletamine HCl (4.4 mg/kg) と xylazine HCl (2.2 mg/kg) の混合液を投与する。
    1. シカの典型的な薄明活動サイクル27に合わせて捕獲計画を立てる。各捕獲試行は日没の 2〜3 時間前から開始する。
    2. 日中に捕獲できなかった場合は、暗視ゴーグルと射撃位置調整用のレッドドットレーザーを使用し、日没後 2〜3 時間まで捕獲活動を継続する。
    3. シカが側面を向け、静止しているタイミングで射撃する。
      注：心臓や肺から離れており、十分な筋肉組織がある後肢の後端を標的とする。
    4. ダーツを打ち込んだ標的動物（雌雄いずれの 6 ヶ月齢の子シカ、または妊娠中の成体雌）が完全に不動化するまで約 15 分待ち、その後、方向探知無線テレメトリー機器で個体を捜索する。
    5. 眼反射（まばたき）を確認し、個体が鎮静状態にあることを確認する。その後、眼軟膏を塗布し、ストレスを軽減するためにシカに目隠しをする。
      注：不動化に伴い、体温調節機能が喪失する。
    6. 回復後に直腸温度計を用いて体温を測定する。体温が 37.7 °C 未満の場合は、電気毛布などでシカを温める。体温が 40.0 °C を超える場合は、アイスパックでシカを冷却する。
    7. シカを軍用スタイルの担架の上に腹臥位で寝かせ、捕獲場所から密閉型トレーラーまで搬送する。
    8. シカをトレーラーに入れた後、0.125 mg/kg の yohimbine HCl28 を投与し、xylazine HCl の効果を拮抗させる。
    9. 捕獲したすべてのシカを指定の飼育施設（例：Mississippi State University Rusty Dawkins Memorial Deer Unit; MSU Deer Unit）に搬送し、由来地域ごとに分けて管理する。

2. 研究動物の飼育施設および一般的な飼養管理

注：MSU Deer Unitは、0.4から0.8 haの5つのペンに細分化されています。

  1. 各ペンのあらゆる面に遮光ネットを張り、ペン同士の視覚的および物理的な障壁とする。遮光ネットは負傷を軽減し、夏季に日陰を提供するのに役立つ。
  2. データ収集時のダーティング（麻酔銃による投薬）を容易にするため、各ペンの端に1〜2基の高床式ボックスブラインドを設置する。
  3. シカの間での餌の競争を減らすため、各ペンの離れた端に溝型の給餌器を2台設置する。また、各ペンに水槽を設置する。
  4. 高品質な飼料（粗タンパク質20%のシカ用ペレット）をad libitumで提供する。
    注：ここでは、ペン内で利用可能な追加の飼料として、自生した草本類および広葉草とともに、クローバー属（Trifolium spp）とフェスク属（Festuca spp）が含まれていた。
  5. ペン内に利用可能な飼料がある場合は、それぞれのラベルに記載されている混合比率に従い、除草剤の混合液を用いて広葉雑草およびイネ科雑草を管理する。
    注：生後5.5か月以上のオスを収容するには、学外施設の利用が必要になる可能性が高い。これらの施設は、3つの敷地にそれぞれ0.7 haのペンが2つあり、MSU Deer Unitと同様の飼育管理が行われていた。

ミシシッピ州の郡を強調した米国州地図；地理的分布図。
図 2: 飼育施設の場所。サテライト施設およびミシシッピ州立大学（MSU）Deer Unitが位置していた調査地域。網掛け部分は米国ミシシッピ州のOktibbeha (A)、Noxubee (B)、Attala (C)、Scott (D)、およびCopiah (E) 郡を示す。この図は参考文献34から改変したものである。こちらをクリックして、この図の拡大版を表示してください。

3. 寄生虫および疾病管理

  1. 糞便浮遊法を用いて研究動物の線虫（Strongyloides spp）をモニタリングし、寄生虫量を1gあたりの卵数（EPG）として測定する。
    1. 高レベルで検出された場合は、5月の1か月間、飼料22.7 kgあたり約0.77 kgの割合でペレット状の駆虫薬（有効成分：フェンベンダゾール）を投与し、寄生虫制御を行う。
    2. 初回治療後も寄生虫レベルが高いままである場合は、イベルメクチン注入り剤（5 mg/mL）29を0.45 kgあたり2 mLの割合で混合し、動物の体重45.4 kgあたり0.45 kgの処理済み飼料を投与する。
      注：エピズーティック出血病は、夏季および秋季に吸血ヌカカ（Culicoides spp）によって媒介される、時に致死的なウイルス性疾患である。本疾患が発生している場合は、研究動物における媒介者の蔓延を抑えるため、7月1日から10月1日まで、週に2〜3回、殺虫剤（5%超低容量殺虫剤）を用いて研究施設を処理する。日没の約90分前に、フォガーを用いて各ペン内および施設の周囲にこの殺虫剤を散布する。寄生虫および疾患を制御するための推奨方法は、飼育施設ごとに異なる。飼育下での野生動物研究を行う際は、動物の健康と安全を確保するため、必ず獣医師に相談しなければならない。

4. データ収集

シカの解剖学的研究、巻尺による脚の長さの測定、フィールドリサーチ、野生動物生物学。
図 3: 新生仔シカのデータ収集. 米国ミシシッピ州オクティベハ郡にあるミシシッピ州立大学Rusty Dawkins Memorial Deer Unitにおいて、新生仔シカの後肢の長さを測定している様子。この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

  1. 出産シーズン中、飼育施設内で毎日小鹿を捜索する。
    1. 感染を防止するため、タグのオス側端に抗生物質を塗布した耳タグ打刻機を用い、中型のプラスチック製耳タグで新生仔鹿に個体識別標識を付ける。耳タグは仔鹿の耳の中央付近に取り付ける。
    2. デジタル吊り下げ秤を用いて体重（0.01 kg単位）を測定し、後肢の長さおよび全長（mm単位）を測定する。
    3. 毛髪サンプルを採取し、親子鑑定のために外部施設へ送付する（材料表を参照）。
      注：親子鑑定は、独自の非統計的なカスタム構造化クエリ言語（SQL）データベースに基づくDNAを用いて行われた。ペアワイズアレル比較において、外部の親子鑑定施設は、テストしたすべての遺伝子座で両親から共有アレルが認められ、1頭の父親と1頭の母親以外をすべて除外できた場合に親子関係を割り当てた（B. G. Cassidyによる私信）。この親子鑑定法は、飼育下のオジロジカを用いて行われた先行研究でも採用されている30,31。
    4. Clostridium perfringens C型およびD型トキソイドおよびClostridium perfringens C型およびD型抗毒素を2 cc皮下投与し、プロピレングリコールに溶解したイベルメクチン（Mississippi State University Veterinarian School, Mississippi, USA）を0.3 cc/kg各仔鹿に経口投与する。
  2. データ収集のため、10月および11月に成体オス（1.5歳以上）を化学的に不動化する。
    1. 野生動物の捕獲（ステップ1.4）で使用したものと同じテレタミンHClとキシラジンHClの組み合わせを用いて、囲いの中の成体を不動化する。
    2. 鎮静中、ダーツを射撃する技術者を、高床式のブラインドが設置されている囲いの端まで誘導する。2つのブラインドにそれぞれ1人の技術者を配置する。
    3. 技術者をブラインドまで誘導した者は、囲いの反対側の端まで戻る。
      注：シカはこれらの技術者から遠ざかり、技術者が各個体に倫理的な射撃を行える位置にあるブラインドの前に移動する。
    4. シカが側を向け、静止している時に射撃する（セクション1.4）。
    5. 動物に近づく前に、ダーツを打たれた動物が完全に不動化するまで約15分間待機する。
    6. 眼反射（瞬き）を確認し、個体が鎮静状態にあることを確認する。ストレスを軽減するため、眼軟膏を塗布し、シカに目隠しをする。
    7. 射撃者が個体的にシカを鎮静させた後、シカのバイタルサインをモニターする。
      1. 直腸体温計を用いて回復後の体温を測定する。動物の体温が37.7 °C未満の場合は、電気毛布で加温する。動物の体温が40.0 °C以上の場合は、アイスパックで冷却する。
    8. シカを軍用スタイル担架に乗せ、多目的作業車（UTV）であらかじめ定めたデータ収集エリアまで搬送する。
    9. 搬送後、出生時に記録したものと同じ形態測定値を記録する（ステップ4.1）。
      1. デジタル吊り下げ秤を用いて体重（0.01 kg単位）を測定し、後肢の長さおよび全長（mm単位）を測定する。
        注：鎮静中に使用した薬剤の組み合わせに対する反応は個体によって異なるため、データ収集が完了する前に鎮静から覚醒した個体には、テレタミンHClとキシラジンHClの混合液を（個体の体重に応じて）約0.1-0.3 cc投与する。
    10. データ収集エリアに搬送した後、すべてのシカにサイズに応じた量の抗生物質、イベルメクチン、クロストリジウムワクチン、およびレプトスピラワクチンを投与する（セクション1および3を参照）。
  3. 動物が鎮静している間に、角測定テープを用いて成体オスの角の測定を3項目行う。
    1. 角を除去する前に、内幅（メインビーム間の最大距離）、基部周囲径（バーとG1枝の間の最小径）、およびメインビーム長（角の基部からメインビームの先端までの距離）を測定する。
    2. レシプロソーを用いて、バーから約3 cm上の位置で角を切断・除去する。3 cm未満の長さで角を除去してはならない。

電動工具を用いた野生動物の獣医学的手順による角の除去、保全手法。
図 4: 成体オスのデータ収集。飼育下の成体オスのオジロジカからレシプロソーを用いて角を除去する。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

  1. 鎮静状態の個体からすべてのデータを収集した後、シカを適切なペンに戻し、0.125 mg/kgのヨヒンビン塩酸塩を投与します。28 または 4.0 mg/kg の tolazoline HCl32 キシラジン塩酸塩の効果を反転させます。個体が鎮静から回復し、完全に覚醒するまで、胸を伏せた姿勢（sternal position）を維持しているか監視してください。
    注意：合併症が発生し、動物を安楽死させる必要がある場合は、ボルトスタンナーによる脳脱臼および頸静脈の切断による安楽死が、動物を処理するための倫理的な手段となります。
  2. 角を所定の場所に運び、角のサイズの測定を完了させる。
    1. メインビームから突き出ている個々のtine（G1、G2、G3、 など。）および、ワイヤーを用いて追加の異常点を作成する。
      注：反対側の主枝に一致する点がない点、または一般的なアントラー（鹿角）セットの定義と一致しない点については、Boone and Crockett Clubによって定義されます。33.
    2. 針（タイン）がメインビームと交差する部分にワイヤーを巻き付け、その点を参照点としてマークします。
    3. この基準点からティンの先端までを測定し、すべてのティンについて同様に繰り返します。
    4. G1とG2の prong 間の最小点（H2周径）、G2とG3の prong 間の最小点（H3周径）、およびG4がある場合はG3とG4の prong 間の最小点（H4周径）を特定し、残りの周径測定値を収集します。
    5. G4歯が存在しない場合は、G3歯の中点からメインビームの端までの距離を測定し、中間点におけるH4円周を測定してください。
    6. 枝角の枝数が3本未満の場合は、周回数を4回未満として測定する。
      注：例えば、2つの代表点を持つメインビームの場合、周径の測定値は3つのみとなります。個々の判断で、別のガイドライン（Safari Club International）を用いてアントラーのサイズを算出しても構いませんが、有効な比較を行うためには、各個体に対して一貫した手法を用いる必要があります。
    7. すべての測定が完了した後、Boone and Crockettの総非定型スコア（gross nontypical score）と同様の方法でアントラスコアを算出する。33.
    8. 分析用デジタル天秤を用いて、鹿角を0.1 g単位で精密に計量し、鹿角の長さが3 cm未満の1年目の個体については、最小臨界鹿角質量を1 gとする。
  3. 生後約5.5ヶ月の囲い飼育された幼魚を、成魚と同様の方法（セクション4.2）で化学的に不動化し、大型のプラスチック製イヤータグで標識する（ステップ4.1.1）。
    1. 飼育下の成獣を不動化させる際は、野生のシカの不動化に使用したものと同じ薬物混合比率（セクション1）を使用してください。
    2. 出生時に収集した測定項目（ステップ4.1.2）と同様の測定を行い、成人（セクション4.2）と同様の予防薬を投与する。
      注意：すべてのデータ収集が完了した後、各若齢雄個体をトレーラーでランダムに割り当てられたサテライト施設まで輸送してください。

5. 第1世代および第2世代の子孫の生産

  1. 野生で捕獲された生後6ヶ月の子鹿、および野生捕獲個体の母親から飼育施設で誕生した offspring を、第1世代個体として分類する。
  2. 繁殖期には、オス2匹に対しメス7〜16匹を合わせ、平均的な繁殖雌雄比をオス1：メス8に設定して飼育してください。
    注：サテライト施設から種付け用のオスを選択する際は、外見に基づいて決定してください。最も健康なオス（角が最も大きく、体格が良い個体）は、繁殖期のオス特有の攻撃性による負傷をせず、繁殖期間全体を通じてメスに交配を行う可能性が最も高いためです。
    1. シカの交配は、同一の由来地域出身の個体間のみで行うようにする（例：、DeltaオスはDeltaメスと交配させ、Thin LoessオスはThin Loessメスと交配させ、LCPオスはLCPオスと交配させる）。
  3. 第一世代の親から授かったシカを、第二世代の offspring と定義して分類する。これらの個体を誕生時から飼育下で育成し、親個体と同じ高品質の飼料を給与する。
    注：雌は数年間にわたって子孫を残す場合があるが、通常、年ごとに異なる種オスによって受精する。第2世代の子孫についても、第1世代および野生個体と同様のデータを収集すること。

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結果

個々 の年齢、栄養的な品質、および遺伝学男性オジロジカの表現型に影響を与えます。私たち研究デザインができました栄養鹿の品質を制御するために使用していたし、年クラス内で有効な比較の各鹿の年齢を識別することができました。栄養と私たちの研究デザインと年齢を制御してができますより人口レベルの遺伝学は 2 つの学習集団から男性の表現型が制限されたかどうかを理解することができます。改善された栄養 3.5 歳男性オジロジカ世代変数 (テーブル 1の重要な効果に代表される各ソース領域からのすべての地形計測に肯定的な効果を持っていた図 5および6)。アントラー質量とサイズに改良された栄養は、(図 6)、角サイズの人口レベルの遺伝によって制限されていないことを示唆しているの二世代後 3 つの震源域の間で変わらないでした。本体質量大幅に増加最初から第二世代に野生のすべての集団の栄養制限があることを示唆しかし、第 2 世代の男性 (

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ディスカッション

我々 のプロトコルに関連付けられているいくつかのステップがあります。ただし、このプロトコルの成功を保障するために取られなければならない 4 つの重要なステップがあります。まず、野生の鹿のキャプチャ中に単一のソース領域 (ステップ 1.1.1) 各地キャプチャする必要があります。複数のキャプチャ場所によってソース領域に関連付けられているすべての遺伝の可変性は鹿の間で表されることになります。第二に、鹿保たれなければならない区切られた震源域で繁殖期 (手順 1.4.9 と 5.2.1)。動物はソースで区切られますを確保する繁殖の際に地域制限、同じ震源域から他の鹿でのみ繁殖する鹿です。各鹿を一意に識別することができるされても重要なステップ正確な年代測定 (ステップ 4.1.1) のことができ 。最後に、栄養はすべて集団 (ステップ 2.4) の定数握られなければなりません。

拘束オジロジカの勉強を評価および/または野生で変わることは困難ではないいくつかの変数を制御することができました。たとえば、老化鹿歯の交換と着用方法35に従ってまたは身体機...

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開示事項

著者が明らかに何もありません。

謝辞

野生生物復元法 (W-48-61) 連邦政府の援助からの資源を活用した金融支援、ミシシッピ州野生生物部、水産と公園 (MDWFP) に感謝します。我々 はデータ コレクションの MDWFP 生物学者・ w ・ マッキンリー、A. ブレイロック、A. ゲイリー ・ l ・ ウィルフ広範な関与を感謝します。我々 はまた、施設コーディネーターとして s. タッカーと複数の大学院生、技術者データを収集、彼らの助けのために感謝します。この原稿は、ミシシッピ州立大学森林野生動物研究センターの貢献 WFA427 です。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
シェルドコーン
高架スタンド
安全ハーネス
グラウンドブラインド
モデル196プロジェクターダート、ペンシルベニア州、米国
3cc無線テレメトリーダーツ(ニューダート、ペンシルベニア州、米国)
さまざまなサイズダーツ (Pneu-Dart, Pennsylvania, USA)
テレタミンHCl (テラゾール、フォートドッジアニマルヘルス、アイオワ州、米国)
キシラジンHCl (West Texas Rx Pharmacy, Amarillo, Texas, USA)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
Military Style Gurney
Rectal Thermometer
Shade Cloth
20% Crude Protein Deer Pellets (Purina AntlerMax Professional High Energy Breeder 59UB、Purina、Missouri、USA)
トラフスタイルフィーダーコマーシャル
クローバー (Durana Clover, Pennington Seed Co., Georgia, USA)
コマーシャル・フェスク (Max-Q Fescue、Pennington Seed Co.、ジョージア州、米国)
ブランケット
アイスパック
広葉雑草防除(2、4-DB草原、Butyrac 200)
草防除 (ポースト・ハーバサイド、BASF社)
ペレットワーマーセーフガード株式会社、 有効成分フェンベンダゾール
寄生虫ポアオントリートメント (アイボメック、メリアル株式会社)
殺虫剤リップタイド、マクラフリンゴームリーキング株式会社) 
中型および大型のプラスチック製耳タグ (米国テキサス州オールフレックス)
親子関係を割り当てたリモートサイトDNA Solutions Animal Solutions Manager (米国オクラホマ州DNA Solutions)
デジタルハンギングスケール (モールトリー、EBSCO Industries, Inc.) 
巻尺
Clostridium perfringensタイプCおよびDトキソイドエッセンシャル3 (コロラド血清株式会社)
Clostridium perfringensタイプCおよびD抗毒素馬起源(コロラド血清株式会社)
プロピレングリコール
抗生物質(Nuflor, Schuering-Plough Animal Health Corp., New Jersey, USA)
イベルメクチン (Norbrook Labratories, LTD., Down, Northern Ireland, UK)
クロスチドリアルワクチン(Vision 7 with SPUR, Ivesco LLC, Iowa, USA)
レプトスピラ症ワクチン (Leptoferm-5, Pfizer, Inc., New York, USA)
輸送
トレーラー レシプロソー (DEWALT, Maryland, USA)
Scientific Digital Scale (Global Industrail、Global Equipment Company Inc)
アントラー測定テープ
フォガー
プラスチックイヤータグ (Allflex, Texas, USA)
Plastic Ear Tagger(Allflex, Texas, USA)
ニュー中のイベルメクチン用

参考文献

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