方法論記事

作製と内皮下電気抵抗を直接定量化する統合型電極を用いたオンチップ器官システムの検証

DOI：

10.3791/56334

⸱

2017年9月26日

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1BIOS Lab on a Chip group, MIRA Institute for Biomedical Technology and Technical Medicine, MESA+ Institute for Nanotechnology and Max Planck Center for Complex Fluid Dynamics, University of Twente, 2Microsystems, Eindhoven University of Technology, 3Applied Stem Cell Technologies, MIRA Institute for Biomedical Technology and Technical Medicine, University of Twente

この記事について

サマリー

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

この文書では、内皮下電気抵抗 (TEER) の直接定量の統合された電極を用いた臓器のオンチップ デバイスの作製について説明します。検証、このマイクロ流体デバイス内部の血液-脳関門をまねて、そのバリア機能をモニターしていた。電極の統合及び直接 TEER 定量化の提示方法は一般的に適用されます。

要約

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

モデル体外臓器システムオン チップ、マイクロ流体デバイス内部組織の (人間) の文化を含むが急速に新興に便利を提供する約束研究と人間の健康と病を研究するためのツール。オルガンのオンチップ デバイス内培養細胞層のバリア機能を特徴付けるためしばしば内皮または上皮電気抵抗 (TEER) が測定されます。このため、電極は通常電極のチップの挿入マニュアルで達成されるよりもより安定した測定を提供するために微細加工方法でチップに統合されます。ただし、これらの電極はよく研究細胞層の目視検査を妨げるまたは作製のための高価なクリーン ルーム工程を必要とします。これらの制限を克服するためには、ここで説明されているデバイスには置かれ、目視検査を可能に作る文化圏の外固定電極が 4 容易に統合が含まれています。元、TEER 直接分離できます、培地充てんマイクロ流路の抵抗の独立した六つの測定パスの抵抗を定量化することができます、これらの 4 つの電極を使用してください。血液脳関門は、このデバイスでレプリケートされた、その TEER がデバイスへの適用性を表示する監視だった。このチップ、電極が統合、TEER 定量法は、臓器-システムオン チップ、他の器官を模倣するまたは、既存の器官のオンチップ システムに組み込むことで一般的に適用されます。

概要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

臓器にチップは新しい新興かつ有望なクラスの in vitro組織モデル。1これらのモデルでは細胞、培養それらの細胞の生理学的な微小環境を模倣するように設計されているマイクロ流体デバイスの内部。1,2その結果、それらの細胞のより現実的な生理学的または病理学的行動よりもシンプルなデザインと基本的な機能の従来の in vitroモデルから予想されることができます。3,5,6また、臓器にチップは体内のモデルよりもより良い制御環境を提供、人間生理学および病理学を忠実に再現する人間の起源から健康と病気の組織を組み込むことができます。チップ (チップ上の BBBs) 血液-脳障壁の開発の最近要約進歩を示すフィールドが進む迅速に動いています。7

臓器システムオン チップの別の利点は、顕微鏡、オンラインの生化学的解析と統合センサー デバイス内培養組織のリアルタイムおよび継続的な監視を有効にします。1,2たとえば、非侵襲的開発を監視するための強力な方法は、内皮や上皮電気抵抗 (TEER) 測定およびバリア形成の組織。8,9,10 TEER 電気抵抗細胞の境界を越えた、したがって関門の透過性を示す。10の器官のチップに 2 つの頂を表す、流路とそのバリア組織の基底外側コンパートメントを分離膜には一般的に細胞障壁、培養します。このようなチップの入口および 2 つのチャネルの出口に挿入された電極との TEER 測定を便利に実施できます。3,4,11,12,13,14,15ただし、手動で挿入し、電極の再挿入簡単に結果、配置エラー、従って例えばとして測定の抵抗の変化でマイクロ チャネルを介した長いまたは短いパスの抵抗性の差異重要なと比較される細胞壁の抵抗。16再挿入エラーを避けるためには、統合された電極を持つデバイスが提案されています。ただし、これらの統合された電極のほとんど培養17,18,19,20,21を検査する際にビューをブロックやを必要とする特殊な作製するプロセスのクリーン ルーム。17,22

まず以前の出版物、16に適用し、文書に記載されている臓器のオンチップ デバイスは、測定細胞層とを容易に作製に関する可視性と統合された電極の安定性を兼ね備えています。デザイン、このチップの作製は、図 1に描かれています。一言で言えば、このデバイスはポリジメチルシロキサン (PDMS) の 2 つの部分で構成されています一緒に結合しているチャネル出版社と 0.4 とポリカーボネート膜と液洩れのない μ m 孔間に。4 つの白金線電極を挿入し、硬化を所定の位置に固定の文化圏の外によく接着します。すべての製作手順は、一般的な実験装置、クリーン ルーム環境を必要とせずに実施できます。この上に、六つのインピー ダンス測定を行うことができますマイクロ流路断面に至るまでとの影響を最小限に抑えるための抵抗の独立した測定 TEER の直接分離ができるこれらの 4 つの電極を使用して(再) 挿入エラーなどシステムの非生物学的変化。16

血液脳関門 (BBB) は、このチップでレプリケートされたこのデバイスと直接 TEER 測定の有効性を示す。この生物学的障壁から成っている専門にされた血管内皮細胞と血液と脳の恒常性を提供するために脳の間の輸送を調節します。23,24 BBB を模倣するには、マイクロ流体デバイスの最上位のチャネルは (親切提供される博士 p. o. によって hCMEC/D3 細胞ラインから人間の脳微小血管内皮細胞が並んでいたCouraud、INSERM パリ, フランス).25 , 提案手法が、ただしより一般的に 2 つのコンパートメントを持つ任意の臓器のオンチップ デバイスに適用可能な簡単に使用して直接 TEER 定量を有効にする統合電極。

この原稿の最初統合された電極を用いた臓器のオンチップ デバイスの作製プロセスを説明です。次、シードのプロシージャおよびデバイス内脳血管内皮細胞の培養は、オンチップ TEER 測定だけでなく、説明です。[結果] セクションで、代表的な TEER 測定し、データ処理を明らかにしました。最後に、提示装置と TEER を監視する方法の有効性を示す、BBB-オン-チップ、3 日間、監視のバリア機能が表示されます。

プロトコル

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1。 臓器のオンチップ デバイスの作製

  1. 標準フォトリソグラフィの技術を用いて作製したチャネルの設計と金型の PDMS レプリカを作成、マイクロ流体チップの PDMS 部品を入手。
    1. 重さ約 27 g PDMS ベース エージェントと 2.7 g 硬化剤; 質量比が 10:1 にする必要があります。これは 3 mm 厚 PDMS スラブ直径 130 mm (5 インチ) の金型に適しています。これらのコンポーネントを徹底的にミックスします
      2. 。
    2. 空気の泡を削除する約 45 分の乾燥器で混合物をドガします
      3. 。
    3. 一方、PDMS の液体混合物の金型の周り明確なテープを貼り付けることにより金型を準備または適しているウェーハ ホルダーで金型を配置します
      4. 。
    4. は、金型に脱 PDMS の混合物を注ぐ。かどうか泡残った PDMS 混合物、金型表面の空気ドガそれ再度 30 分約
    5. 4h クールダウンできるように 60 ° C のオーブンで PDMS 混合物を治すです
      6. 。
    6. クロスフロー フードで金型から硬化 PDMS を引く; 金型は多くの PDMS のレプリカを作るためすぐに再利用できます
      7. 。
    7. 独立した上部と下部チップ部品、PDMS のカットラインを使用して切り PDMS レプリカ
      8. 。
    8. は、フォーム入口および出口に直径 1 mm のシャープな生検パンチを使用して最高の部分に 4 つの穴をパンチします。内側からパンチ チップの収集から PDMS の破片を防ぐために外に。ほこりに対してそれらを保護するために明確なテープでチップ部品をカバーします
      9. 。
    9. Transwell 挿入からポリカーボネート膜を約 3 × 3 mm の正方形にカット 2.
  2. 多孔質膜と接続した 2 層デバイスを組み立てるために 2 つの PDMS 部分の間に液洩れのない多孔質膜アセンブルします
    。 注: このプロトコルは Griep ら から適応です。 19 岡 ら。 26
    1. 準備 PDMS ベース エージェント、0.07 g 硬化剤およびトルエンの 540 μ L の 0.7 g を用いたポリジメチルシロキサン/トルエン モルタル重量比 5:3 の結果します。渦モルタル徹底的にします
      2. 。
    2. 60 1500 rpm でガラス基板上にモルタルのスピン コート 200 μ s (1000 rpm/s でランプアップ) モルタルの薄い、均一層を取得する
      3. 。
    3. は、底の部分とインク ローラーでチップの上の部分に coverslip からモルタルの薄層を転送します。オーブン皿に底の部分を配置します
      4. 。
    4. ピンセットのセット スピンコートしてからモルタルに膜の端を浸し、慎重に下の部分の真ん中に配置
    5. 慎重に配置に注意を払いながら下部の上の部分を配置します
      。 注: はチップに圧力をかけないし、モルタルのチャンネルを入力し、膜の目詰まりを防ぐために底の部分を上の部分とスライドしてください
      6. 。
    6. チップを入力からほこりを防ぐためし、3 h の 60 ° C で焼くのため、明確なテープでチップ入り江をカバー
  3. サイド チャンネルに電極を統合します
    。 注: このプロトコルは Griep ら から適応です。 19 および Douville ら。 18
    1. 30 分すすぎ水とエタノールとアセトンでそれらを沈める部分の約 2 cm クリーンに白金線をカット乾燥させてと。
      2. 。
    2. クロスフロー フードでプラスチックの皿にチップを置きます。4 白金線をピンセットのペアを使用してチップの電極のチャネルに挿入し、後続の手順で皿を固定するプラスチックの皿にそれらを曲げます。過去の T 型チャネルのジャンクション文化チャネルに mm 線 0.7 1 挿入します
      3. 。
    3. 電極チャネルの入り口で UV 硬化型接着剤の適用ドロップと毛管力によって電極のまわりのチャネルを埋めるために接着剤を許可します
      4. 。 電極のチャネルの端に達すると UV 硬化接着剤で
    4. を切り替える
      。 注意:これはあなたの目を害する可能性がありますように UV 光源を見ていない
      5. 。
    5. は、2 液エポキシ接着剤でプラスチックの皿 4 つの統合された電極をじっと見つめます。これにより、チップから電極を引っ張る危険なし測定中に電極の取扱いが簡単です
      6. 。
    6. は明確なテープでチップをカバーし、2 h. を冷やすのため、使用するまでホコリを格納できるようにするための 60 ° C で焼きます。彼らがすることができますこの方法で 1 ヶ月ために安全に格納されています
      7. 。

2。オンチップ脳由来血管内皮細胞の培養

  1. コート細胞接着を促進するチップ。 リン酸
    1. 両方のチャネルは、生理食塩水 (PBS) 試薬を導入する前にそれらをウェットにバッファリングされます。チェック顕微鏡下である場合はチャネルの空気の泡。もしそうなら、余分な PBS のフラッシュでそれらを削除します
      2. 。
    2. は、PBS で 20 μ G/ml 人間フィブロネクチンの 30 μ L で両方のチャンネルをご記入ください。37 ° C で 3 時間インキュベートします。空気の泡をチェックし、必要な場合、フラッシュ PBS のチャンネルとフィブロネクチン溶液で詰め替えします
      3. 。
    3. 内皮細胞成長培地でチップをフラッシュし 37 ° C で 5% CO 2 2 h. のための定温器にそれらをインキュベート
    4. は、チャネル内の流体と直接接触が電極のすべてことを確認する手順 3 で説明されているように空白チップ TEER を測定します。典型的な TEER 値は、空のチップ 0 1 Ω cm 2.
  2. 最上位のチャネルに細胞を播きます。
    1. 人間の脳微小血管内皮細胞 (hCMEC/D3) のコンフルエント単層培養培地培養用フラスコ (75 cm 2 の文化圏) からを削除します
      2. 。
    2. は、PBS のセルを洗浄します。0.05% トリプシン-EDTA の 2 mL を追加し、37 ° C、5% CO 2 で細胞を培養用フラスコからデタッチまで 2-5 分間インキュベートします
      3. 。
    3. 20% 牛胎児血清 (FBS) 添加培養液中のトリプシンを非アクティブ化します。セルをカウントし、中断のセルの合計数を計算します
      4. 。
    4. 一方、5 分 390 x g で hCMEC/D3 細胞を遠心し、上清を除去
      5. 。
    5. は、内皮増殖中 (EGM 2) 5 x 10 6 セル/mL の濃度に到達するための適切な量の細胞ペレットを再懸濁します。これは、結果, 播種密度が 2 x 10 5 セル/cm 2 チップで
      6. 。
    6. ゆっくり最上位チャネルに 30 μ L よく混合細胞懸濁液をピペットし、まだ圧力を発揮しながら流暢な動きで入口からピペットを削除します
      7. 。
    7. は、顕微鏡下で播種密度を確認します。最上位チャネル中の細胞の均一な分布を達成する必要があります
      8. 。
    8. 少なくとも 1 h. のための 37 ° C および 5% の CO 2 でチップが内皮細胞培養培地と非添付セルを洗い流す加温します
      9. 。
  3. チップの内皮文化を維持します。
    1. 2 回/日、入り江の貯蔵所として培地充てんピペット チップを挿入し、重力駆動流によるチップ内媒体を交換します
      。 メモ: 内壁を入力し、細胞層を破壊するから空気の泡を避けるためには、入口に先端を挿入する前にピペット チップとチップの上に流体と流体流体の接触することを確認してください。これで小さなドロップを追加することによって促進することができますで/ピペット挿入前にアウトレット
      2. 。
    2. もチャンネルが乾燥するを防ぐために売店でピペット先端タンクを追加します
      3. 。
    3. 37 ° C、5% CO 2 でチップをインキュベートします
      4. 。

3。オンチップ TEER 測定

  1. の設定日e TEER 測定装置、ファン ・ デル ・ ヘルム ら で指定されたロックイン増幅器とプローブ ケーブルの回路から成る。 16 また、potentiostats またはインピー ダンス ・ アナライザー、また測定に適してこれらインピー ダンスに基づく TEER
    2. 。
  2. インキュベーターからチップを取り出して電極チップ外ブリッジを防ぐために電極の周りのプラスチックの皿から任意の流体で削除、少なくとも 10 分間部屋の温度に達することができます
    3. 。
  3. は、インピー ダンス スペクトルが予想される大きさと形状、TEER 測定を検証する徒歩 5-10 分チェックでチップ当たり 6 のインピー ダンス スペクトルに終って 2 つの電極の組み合わせごとに 1 MHz から 200 Hz インピー ダンス スペクトルを取る結果のセクションで説明します
    4. 。
  4. 測定を終えた後 37 ° C、5% CO 2 インキュベーターにチップを置く
    5. 。
  5. は、正規化された TEER 値に到着する得られたインピー ダンス スペクトルを処理します。
    1. 取得測定抵抗 figure-protocol-1 電極間 figure-protocol-2 とfigure-protocol-3、 図 2 b と D、対応するインピー ダンス スペクトルで 10 kHz で抵抗高原から示される
      2. 。
    2. 計算する一度に 1 つのチップに対応する六つの測定抵抗を用いる TEER ポイント 図 2 16 の式を使用して:
      figure-protocol-4
      この式の figure-protocol-5、抵抗を測定した、文化圏は、< img alt ="式 5"src="/files/ftp_upload/56334/56334eq5.jpg"/> 細胞のバリアと、膜の抵抗は、figure-protocol-6、figure-protocol-7、figure-protocol-8、figure-protocol-9、抵抗は、細胞のバリアを介して測定値と figure-protocol-10 と figure-protocol-11 で測定される抵抗値、ストレート チャンネル。 16 式は 図 2 に示す等価回路に由来します
      3. 。
  6. 時間で、TEER の開発を取得するすべての時点で TEER から空白 TEER を減算します
。

結果

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

電気インピー ダンス分光セル (実線) のないチップと細胞壁 (破線) を通しての回路図の結果は、図 2 aに表示されます。4 つの主な領域を識別できる、それぞれが特定の電気コンポーネントによって支配されます。二重層キャパシタ電極文化中界面を支配する約 1 kHz 以下、インピー ダンスの振幅および位相-90 ° に近づいて負の傾きによって特徴付けられます。二重層容量が支配する頻度は、培養液にさらされる電極面積によって異なります。チャネルの長さ、断面積および内部によって、マイクロ チャンネル内培養液の抵抗に対応する 0 ° に近い位相シフトを伴う (セル) なし 1 kHz または (セル) を 100 kHz 上抵抗の高原、気孔率と厚さに応じて膜。細胞壁を測定、相図の局所最大値だけでなく、1 と 10 の kHz の間の余分な抵抗高原が見えます。この地域は、インピー ダンスの結果の明確な増加として、TEER の定量に対する重要性の細胞測定パスに存在しており、したがって「関心領域」と呼びます。10 と 100 kHz の間の余分な斜面は、絶縁性の脂質二分子膜から発生し、細胞層の総面積に依存する細胞障壁キャパシタンスに対応します。27インピー ダンスの大きさと同様に、これらの地域の境界検討されているシステムに依存し、他のもの、チャンネルの寸法、培養液の電気伝導度、電極位置とセル型の間で、変更します。理論とバリア形成における電気インピー ダンス分光学の実践の詳細読み組織・ ベンソンらによるレビュー記事をお勧めします。28

それぞれブランク チップと図 2 e および 2 f、hCMEC/D3 脳血管内皮細胞層を持つチップの両方に対して TEER 測定の代表的なデータを示します。一言で言えば、インピー ダンス分光法は 4 つの電極を持つ六つの測定を使用して実行された: 細胞培養培地充てんチャネル (実線) を介して 2 つの測定と膜と同様、チャネル 4 の測定と - - 存在する場合、細胞壁 (破線)。これら六つの測定パスは、図 2 b断面図 (図 2)、上面図 (図 2 D) に由来するの等価抵抗回路で識別できます。ブランク チップ測定 (図 2 e) は、図 2 aに示すように細胞なしインピー ダンス スペクトルの典型的な形を表示します。図 2 aのセルと典型的なインピー ダンス スペクトルのように細胞壁 (図 2 fの破線) を測定。インピー ダンスの大きさと位相の両方が増加をシフト注 1 MHz へ。これは高周波測定セットアップの典型的な応答で、実験の原産ではないです。

まずこれらのインピー ダンス スペクトルを用いた TEER を決定するには、は測定チップ抵抗決定されます細胞層、チャンネル、膜の総抵抗であります。このため、関心領域で適切な読み出し周波数選ばれた、セルとセルのない 0 ° の位相に近い位相プロットで極大である: 10 kHz。10 kHz で六つの測定された抵抗と 4 つの電極で測定した、TEER が直接式を使って計算図 2 fに。

提示装置が臓器にチップ TEER に好適であることを示す、BBB をチップ内レプリケートおよびその TEER が文化の 3 日の間に監視されました。図 3 a 22 ± 1.3 Ω cm2、高原の結果 4 BBBs のチップ、平均 (SEM) の平均 TEER ± 標準誤差が表示されますでの文献で報告されたこの細胞ラインの TEER に匹敵するであります。29また、実験が終了し、核の蛍光染色後、それ見ることができる脳血管内皮にデバイス (図 3 b) 内連続単分子膜が形成されています。タイト結合蛋白精巣毛細血管-1 (ZO-1) 免疫蛍光染色, 脳血管内皮細胞、BBB に固有表現を維持し、タイトな複合体を形成します。

figure-results-1
図 1: デザインと統合された電極を用いた臓器のオンチップ デバイスの組立。
(A) (TC) の一番上のチャネル、膜 (M) 下部下部チャネル (BC) と PDMS 部分と PDMS 上部から成るマイクロ流体チップの分解図。4 つの白金線電極 (E1 4) 挿入され、側のチャネルに固定します。最上位のチャネルの膜の上に、hCMEC/D3 脳血管内皮細胞培養 BBB を複製します。(B)組み立てチップ プラスチックの皿に固定をします。エルゼビアから転載との適応アクセス許可。16 この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

figure-results-2
図 2: 代表的なインピー ダンス データと TEER の決意。
(A)回路インピー ダンス スペクトルを示すインピー ダンスの大きさ (Ω) と周波数 (Hz)、電気インピー ダンス分光チップ (実線) のセルとセル (破線) の典型的な対位相シフト (°)。4 つの主な地域が集まって、それぞれがによって支配される: 細胞膜容量セル バリアー抵抗、培養液抵抗電極二重層容量。「関心領域」は、細胞層の貢献が定量化 (赤矢印) をすることできますを示します。(B)最上位チャネル抵抗 R1 R3、下部チャネル抵抗 R2と R4と膜および EC バリア抵抗 Rmを示す、チップの等価抵抗回路。(C)模式断面最上位チャネルの培養血管内皮細胞 (EC) を示します。(D) BBB の概略平面図チップ、0.25 mm2のインピー ダンスを測定する文化圏と電極の構成を示します。(E)空白チップの代表的なインピー ダンス スペクトルは細胞培養液でいっぱい。(F)代表的なインピー ダンス スペクトルを hCMEC/D3 のチップの脳血管内皮細胞培養は、3 日間。4 電極のすべての六つの組み合わせの間の測定の抵抗から TEER を計算する(G)式。エルゼビアから転載との適応アクセス許可。16 大きい ver を表示するのにはここをクリックして下さいこの図のイオン。

figure-results-3
図 3: 代表 TEER BBB のオンチップ化
(A)平均 TEER ± 標準誤差 4 BBBs システムオン チップ、3 日間の培養期間中に 22 ± 1.3 Ω cm2 (平均 ± SEM) にプラトーに達することの意味 (SEM)。比較、ブランク チップのデータが含まれます、セルと変化とチップの TEER 値と比較して同じ期間に限界の変化と 0 Ω cm2からの偏差を示します。(B)ステンド グラスの核の蛍光顕微鏡には、内皮、PDMS とはめ込みで示される位置に膜の両方の連続的な単分子膜が明らかにしました。(C)蛍光抗体法では、精巣毛細血管-1 セル間 BBB 固有のタイトな接合が測定 TEER に上昇を与えることを示すタイト結合蛋白の存在を明らかにしました。エルゼビアから転載との適応アクセス許可。16 この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

ディスカッション

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本稿では、オルガンのオンチップ デバイスの技術とデバイスで培養した細胞壁の内皮下電気抵抗 (TEER) の直接定量が発表されました。クリーン ルーム内機器と 4 つの電極を用いた定量 TEER なし電極の統合の提案手法は、マイクロ流路の 2 つのコンパートメントを持つ任意の臓器のオンチップ デバイスに適用されます。チップ レイアウトとジオメトリは、4 つの電極が 2 つの区画に区切られている限り、想定実験の要件に合うように適応することができます。4 電極は、される六つの測定の間の場所に執着に既存のチップの入り江に便利な挿入もできます。液洩れのない接着工法は、PDMS/トルエンの比を変更することによって異なる膜とチャネル形状の最適化できます。高いトルエン含有モルタル26の薄いスピン コーティング層に結果し、PDMS の部分に浅く、狭いチャネルのより適切な場合があります。厚いモルタルで低いトルエン コンテンツ結果26層し、PDMS の部分の間の厚い膜を囲むより適切な場合があります。

図 2 aの回路インピー ダンス スペクトルおよび図 2 e および 2 fの実験的スペクトルに見られる、インピー ダンス測定電極中の界面における二重層容量に影響されます。マイクロ チャネルの内部電極のサイズが小さいため、TEER の定量化を複雑なインピー ダンス スペクトルにおける細胞壁の抵抗高原上二重層容量を支配できます。これを克服するために電極を挿入ことができます文化チャンネル固定の前にさらに。これは公開されている電極の表面積を増加同様二重層容量に拡大培養液とします。細胞壁の抵抗の高原はより簡単に認識し定量化することができますように、低い周波数に静電容量式の斜面のシフトでこの結果します。2 つの電極間の測定パスの抵抗がより小さくなる、これ、次の提示法 TEER 定量化を影響しません。

細胞壁を測定しながら余分な抵抗の高原を認識できないということです。これは、膜は細胞のバリアの周囲測定パスにつながる、モルタルで囲まれた不十分な場合など、2 つのチャネル間の流体接続の結果をすることができます。さらに、あります培養液の液滴によって電極が接続されている場合は、チップ外電気ブリッジです。これは一般的に低いインピー ダンス測定と組み合わせるし、培地のこの橋を削除することによって解決することができます。最後に、抵抗高原はありません、インピー ダンス測定は桁違いに予想よりも高い場合は、電気配線や電源接続の緩みが可能性があります。

BBB の分化と増加バリアの気密性を促進するために報告され、達成しにくい、生理学的なレベルでストレスをせん断する内皮細胞を公開することによって、将来、現在チップに BBB の生理学的な関連性を増やすことができます。従来の in vitroモデル。29また、提示デバイスの下部のチャンネルは、脳由来細胞、血管内皮細胞と共培養するのに適切なコンパートメントを提供します。これはバリア機能の増加が期待されるも、病理学的条件下での関連するセル型の間の複雑な相互作用の研究ができます。29

結論としては、この資料に記載される器官のオンチップ デバイス標準実験装置を使用して作製することができ、調査セルの外観検査を阻害しない 4 つの統合された電極を用いた直接 TEER 測定を提供するために示されています。レイヤー。このチップで BBB を模倣して文化期、TEER の監視臓器システムオン チップ フィールドでこのデバイスの適用性を示した。(バリア) の他の臓器のホストは、このチップを他の関連の細胞型を含めることによってまねることができます。さらに、デバイスやシステム間で比較できるように、再現性の高い、有意義な TEER 値に到着する他 2 つのコンパートメントに基づく臓器のオンチップ デバイスで TEER の測定方法を簡単に適用できます。

開示事項

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

著者が明らかに何もありません。

謝辞

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

我々 は感謝して有意義な議論と支援のデータ表現とカビや脊髄ブロンクホールスト作製のヨハン · ボーマーを認めます。

この研究によって資金が供給された: 特任医工業マイクロ デバイスの l. i. Segerink、ミラ トエンテ大学医用生体工学技術研究臓器にチップ ミラ研究所西暦ファンデルメール トエンテ大学医用生体工学技術研究特任ERC 助成金 A. ・ ヴァン ・ デン ・ ベルク (グラント号 669768) に高度な VESCEL。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
Materials
ポリジメチルシロキサン(PDMS)ベース剤および硬化剤:シルガード184シリコーンエラストマーキットダウコーニング1673921
スコッチマジックテープ3M
生検パンチ、直径1.0mmラミルテックス33-31AA-P / 25
ポリカーボネート膜、0.4&マイクロ;m孔径コーニング3401トランズウェル文化インサートからカット
トルエンシグマ-アルドリッチ244511
プラチナ ワイヤー、200 & マイクロ;m径Alfa Aesar10287
UV硬化型接着剤:Norland Optical Adhesive 81Norland ProductsNOA 81
エポキシ接着剤:Loctite M-31 CL HysolHenkel30673
hCMEC/D3細胞ヒト脳微小血管内皮細胞株、P.-O博士のご厚意により提供されました。Couraud, INSERM, Paris, France
リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)SigmaP4417
ヒト血漿フィブロネクチン, 20 & micro;g/mlGibco33016015
Endothelial growth medium-2 (EGM-2)LonzaCC-3162Endothelial basal medium-2 (EBM-2) supplemented with EGM-2 SingleQuots
Trypsin-EDTA, 0.05%Gibco15400-054
Fetal wevine serum (FBS)Gibco26140-079
NameCompanyカタログ番号コメント
Equipment
OvenBinder9010-0190
スピンコーター:スピン150ロスSPIN150-NPP
UV光源、365 nm 5秒間、350 mW/cm2自社製造
遠心分離機:Allegra X-12R 遠心分離機Beckman Coulter
インキュベーター バインダーCB E2 150
BoxenseLocSenseロックインアンプ、プローブケーブル回路付き、オンチップTEER測定に特化
インテグポ

参考文献

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