探索ルート マイクロバイ: 土、根、およびルート Endosphere から細菌群集のデータを抽出

Summary

ここでは、土壌、根圏、ルート endosphere 内細菌叢解析・増幅シーケンス データを取得するためのプロトコルについて述べる。この情報は、組成やプラント関連の微生物群集の多様性を調査するため、植物種の広い範囲での使用に適しています。

Abstract

植物宿主と病原性菌の親密な相互作用は植物の適応度を決定する上で重要な非生物的ストレスや病気に対する耐性を改善を促進することができます。工場マイクロバイは、非常に複雑な低コストにすることができます、私アンプリコン ベース 16S rRNA 遺伝子の塩基配列決定など高スループット方法が多いその微生物の組成と多様性を特徴付けるため。しかし、そのような実験を行う際の適切な方法の選択は、難しい分析とサンプルと研究間の比較を行うことができますバイアスを減らすため重要です。このプロトコルは、コレクション、土壌、根圏、およびルート サンプルからの DNA の抽出のための標準化された方法論を詳しく説明します。さらに、我々 はこれらのサンプルの細菌群集組成の調査は、確立された 16S rRNA 増幅シーケンス パイプラインを強調表示し、他のマーカー遺伝子のため簡単に適応することができます。このパイプラインは、ソルガム、トウモロコシ、小麦、イチゴ、アガベを含む植物種の様々 な検証されている、植物細胞小器官からの汚染に関連する問題を克服するを助けることができます。

Introduction

プラント関連内細菌叢解析は細菌、古細菌、ウイルス、菌類および他の真核微生物から成る動的で複雑な微生物群集から成っています。よく研究植物の病気の原因ではなく、植物共生微生物できますも積極的に影響を与える植物の健康によって生物的・非生物的ストレス耐性の向上、栄養アベイラビリティを推進・強化による植物の成長植物ホルモンの生産。このため、特定の関心は植物根 endospheres、根圏、周辺土壌と関連付ける分類群を特徴付けるに存在します。一方、いくつかの微生物は、生成されたメディアを研究室で分離培養することができます、多くはできない、他の微生物と共生関係に依存している場合がありますので、一部非常にゆっくり育つまたはラボ環境では再現できない条件を必要とします。栽培の必要性を回避できますので、比較的安価な高スループット シーケンスを用いた系統プロファイリング環境とホスト関連付けられている微生物サンプルの微生物群集を試金するため最寄り方法となっています。組成物。

次世代シークエンシング (NGS) のプラットフォーム¹各種によって提供される適切なシーケンス テクノロジーの選択は、重要な要因を含むユーザーのニーズに依存して: 必要なカバレッジ、私アンプリコン長さ予想コミュニティ多様性と同様、誤り率、読み取りの長さ、および、コスト-あたり-実行/megabase のシーケンスします。私アンプリコン ベースのシーケンス実験で考慮する必要があるもう一つの変数がどのような遺伝子が増幅され、どのようなプライマーが使用されます。設計またはプライマーを選択するとき、研究者は結果の産物から達成可能な増幅の普遍性と分類学的解像度のトレードオフを作るを強いられる。このため、研究のこれらのタイプは、しばしばプライマーと、マイクロバイの特定のサブセットを選択的にターゲット マーカーを選んだ。細菌群集組成の評価は一般的に細菌の 16S rRNA 遺伝子^2,3の超可変領域の 1 つ以上のシーケンスで実行します。本研究では、私アンプリコン ベースについて述べるシーケンス プロトコルはそのターゲット、500 bp V3 V4 の領域に十分な可変性を提供しながら細菌種の広範な増幅を可能にする細菌の 16S rRNA 遺伝子の NGS プラットフォーム用に開発。異なる分類群の間を区別します。さらに、このプロトコルは簡単に他のプライマー セットなどの菌類の ITS2 マーカーや真核生物の 18S rRNA サブユニットをターゲットで使用するために適応できます。

他に近づくような散弾銃メタゲノム、メタトランスクリプトミクス、および単一セルの配列を提供する解決の微生物ゲノムとコミュニティ機能のより直接測定を含む他の利点と、これらの技術が通常より多く高価で、ここで説明した系統プロファイリング⁴よりも計算量の多い。また、宿主植物ゲノムに属する読み取りの大部分をもたらすルート サンプルに散弾銃メタゲノムおよびメタトランスクリプトミクスを実行して、この制限を克服する方法はまだ開発^5,6をされています。

実験プラットフォームでも私アンプリコン ベースのプロファイリングは、実験デザインとデータ解析時に考慮すべき潜在的なバイアスの数を導入できます。検体の採取、DNA 抽出、PCR のプライマーの選択およびライブラリの準備を実行する方法のメソッドが含まれます。さまざまな方法は、生成されると、使用可能なデータの量に大きく影響することができますや、また研究間で結果を比較するための努力を妨げることができます。たとえば、根圏細菌⁷と異なる抽出技術の使用または DNA 抽出キット^8,9の選択を除去する方法につながる下流解析に大きく影響する示されています。異なる結論に関して、微生物が存在し、彼らの相対的な存在量。私アンプリコン ベースのプロファイリングをカスタマイズすることができます、ので研究間で比較することが挑戦することができます。地球マイクロバイ プロジェクトのアプリケーションによって引き起こされる変動を最小限に抑える手段として標準化されたプロトコルの開発からプラント関連マイクロバイなど複雑なシステムを調査している研究が恩恵を示唆しています。研究^10,11の間さまざまな方法。ここでは、我々 は上記のトピックの多くについて説明し、場所をベスト プラクティスとして提供提案が適切な。

プロトコルは、ソルガム確立された DNA 分離キット¹¹を使用して抽出 DNA からの収集土、根、およびルート サンプル処理を示します。さらに、我々 のプロトコルには、細菌群集^12,13,14の構造を決定する一般的利用 NGS プラットフォームを使用して詳細な私アンプリコン シーケンス ワークフローが含まれています。このプロトコルは、根、根、ソルガム、トウモロコシ、およびコムギの¹⁵を含む 18 の単子葉種の関連付けられている土壌の最近出版された調査で植物のホストの広い範囲で使用するために検証されています。このメソッドが他のマーカー遺伝子を使用も検証されたリュウゼツラン マイクロバイ^16,17いちごマイクロバイ^{に関する研究真菌 ITS2 マーカー遺伝子を勉強への適用によって示されるように18}。

Protocol

1. 収集とルート Endosphere、根、土壌試料の分離

1. 滅菌オートクレーブ純水 (サンプルあたりの水の少なくとも 90 mL) フィールドを入力する前に。着生植物の除去バッファー (サンプルあたり少なくとも 25 mL) を準備するには、1 L の滅菌水に KH₂PO₄の 6.75 g、K₂HPO₄、8.75 g およびトリトン X-100 の 1 mL を追加します。0.2 μ m の細孔径を持つ真空フィルターを使用してバッファーを滅菌します。
   1. ステップ 1.2 から 1.5] エタノールで滅菌クリーン手袋を着用回、汚染を防ぐために各サンプル間手袋を交換します。70% エタノールですべての機器を滅菌し、サンプル間のすべての機器をきれいに拭きます。サンプリングの前にあなたの実験のための最適なサンプリングの深さを決定して、根と土壌のすべてのコレクションと一致します。
2. 一括土壌サンプルを収集するには、コアを集めることによって無料で植物の根が土壌を取得する、エタノール殺菌土壌コアのコレクターを使用して、植物の根元から約 23 〜 30 センチ。
3. ビニール袋に土を転送、穏やかな揺れで土を均質化し、1 つ 2 mL チューブに合わせて土壌サンプル (約 600 mg) の因数を転送します。フラッシュ (ステップ 2) の DNA の抽出を続行する準備ができるまでのリキッド N₂管の凍結またはすぐにドライアイスを 2 mL 管を配置します。
   1. 一部の環境で、周囲の土壌は植物材料を含めることができます。この場合、ビニール袋にそれを配置する前に土壌から植物の残骸を分離する滅菌の 2 mm のふるいを使用します。
4. 根と根を収集するには、限り多くできるだけルートの取得に注意しながら、植物を掘るエタノール殺菌のシャベルを使用します。深さは植物に依存しています。小麦など小さな植物を削除するには、いくつかのセンチを掘り、ソルガムなどのより大きい植物が 30 cm 以上必要となります。根面に付着した土の約 2 mm になるまで優しく根から余分な土壌を振り払います。
   注: 小さな植物、壊れやすい根、乾燥、高粘土コンテンツ土壌を使用するとき注意してください。理想的には、揺れの後残りの根を土の薄層、だけ必要があります存在。土壌の大きな凝集体のまま、ゴム製木槌がシュートの基部を軽く押すことで土を除去するため使用できます。このプロセスの後の残りの土の量を超えたり、2 mm を下回る場合は、おおよその厚さを注意しなければなりません。
5. 大きい植物の根の代表的な部分をカットし 50 mL コニカル バイアルに最低 500 mg 根組織の滅菌はさみ/大ばさみを使用します。小さい草は、バイアルに全体のルート システムを配置します。根をカバーし、すぐにドライアイスのサンプルを配置する十分な着生植物除去バッファーを追加またはフラッシュ凍結液 N₂のサンプル。
   注意: 洗浄ステップを困難にするが、50 mL コニカル バイアルを詰め込み過ぎないようにして注意してください。着生植物のバッファーが下に流れ、バイアル中の根を囲む、上部をカバーすることができるように、十分な空領域があるはずです。いくつかの草がより多くのルート バイオマス 50 mL コニカル バイアルに収まるよりもあるため、根の部分を収集します。しかし、生菌根端数に流失につながる根を切断、ので根を破壊を最小化する必要があります注意する必要があります。-80 ° C で格納できるサンプルが研究室に戻った後すぐに処理されない場合
6. 根から根圏を分離する氷の上ルート サンプルを解凍し、超音波照射 30 160 W のパルスと 10 分のための 4 ° c ルート サンプル秒、区切って 30 s. 転送根冷蔵 (4 ° C) に、きれいに滅菌鉗子を使用して 50 mL のチューブ。バッファーと土壌では根圏の分数 (図 1) オリジナル チューブを捨てないでください。
7. バッファーを含むチューブを遠心し、根圏 4,000 x g.、上清をデカント、4 ° C で 10 分間のフラッシュのため液 N₂根画分を含む管を凍結、DNA を続行する準備ができるまで-80 ° C で根の一部を保存抽出 (ステップ 2)。
8. 根を洗って、ルートの分数に冷蔵 (4 ° C) 滅菌水約 20 mL を追加します。積極的に (によって手やミキサー、15-30 s) を揺することによってルートを洗って水を排水します。
9. 根の表面に土が残っていないまでに少なくとも二回、この手順を繰り返します。DNA の抽出 (手順 2) をすぐに実行しない場合、滅菌アルミホイルで根を包んで、フラッシュ凍結液 N₂ストアまで-80 ° c のサンプルは、DNA の抽出を続行する準備ができての根。

2. DNA の抽出

注: 手順 2 および 3、全体クリーンなエタノールで滅菌手袋をすべての回で、エタノールで殺菌表面上ですべての作業を実行します。

1. 土壌および根圏のサンプルから DNA を抽出します。
   1. 使用手順 1.3 1.7 から個別のコレクションの管に土と根の 250 mg をすばやく転送する滅菌ヘラが商業 DNA 分離キットで提供される土壌からの抽出のために設計し、キットのサプライヤーを使用して DNA の隔離を続行プロトコル。
   2. DNA 分離キットによって提供される溶出バッファーで DNA を溶出した後手順 3 を続行する準備ができるまで、-20 ° C で DNA を格納します。
2. ルート サンプルから DNA を抽出します。
   1. 滅菌の乳鉢と乳棒リキッド N₂を使用して冷やします。根組織の 700 に 600 mg を測定し、モルタルに組織を配置します。慎重に、十分な液体 N の₂根をカバーするために追加します。
   2. 小さな断片に根を挽きます。リキッド N₂を追加して、研磨のプロセスを続行 (2 回以上がサンプル間で一貫して)、根が細かい粉になるまで。根組織でこの手順中に解凍しないことを確認します。
      注意: 使用する場合適切な個人用保護具 (白衣、防護用の眼鏡と低温手袋) リキッド N₂での作業します。
      注: 低品質の DNA の抽出のことができます余分な根をひいて粉にし、-80 ° C で粉を格納する有益です
   3. すぐに、ルートの前に粉は雪解け、滅菌スパチュラを使用して氷の前体重 1.5 mL チューブに根の粉末を転送を開始します。チューブと粉末の重量を記録します。通常、粉末の 300-400 mg が転送されます。
   4. 使用商業 DNA 分離キットで提供されるコレクションの管に根の粉末の 150 mg をすばやく転送する滅菌ヘラは土壌からの抽出のために設計し、キット サプライヤーのプロトコルを使用して DNA の隔離を続行します。
      注: いくつかのルートのサンプルができます PCR 場合は特に、異なる DNA の抽出のプロトコルの間に DNA の増幅を防ぐ DNA の餌の残りの有機物の高濃度 (e.g。、CTAB 抽出) が使用されます。必要な場合は、環境 DNA クリーン アップ キットで提供される指示に従い、DNA をきれい。
3. 高感度卓上型蛍光光度計を使用してすべての DNA サンプルの濃度を測定します。
   1. DsDNA 高感度アッセイ キットで提供される管に各溶出の DNA サンプルの 1 20 μ L を追加します。200 μ L まで蛍光光度計作業ソリューション (1: 200 染料: バッファー) を追加します。
   2. 標準 2 (100 ng/μ L)、DNA 標準 1 (0 ng/μ L DNA) または 10 μ L の 10 μ L を含む 2 つの追加のチューブを用意し、蛍光光度計作業ソリューションの 190 μ L を各標準に追加します。
   3. 基準と各サンプルの濃度を測定します。それは自動的に行われない場合は、2 つの規格の線形回帰によって吸光度出力から DNA 濃度を計算します。

3. 私アンプリコン ライブラリの準備と提出

1. 増幅反応のための材料を設定します。
   1. 4 ° c の DNA のサンプルを解凍し、手順 3 で氷のそれらを保ちます。PCR プレート (表 2) の場所のためのバイアスを最小限に抑えるために DNA のサンプルの順序をランダム化します。
   2. 96 ウェル PCR プレートにグレード分子水の各サンプルから DNA を増幅 (空白) (表 2) のネガティブ コントロールとして 20 μ L。 追加 20 μ L の 4 つのコーナーの井戸に水を分子グレードの総量 5 ng/μ L に希釈します。
   3. マルチ チャンネル ピペット (図 2) を追加できるような PCR ストリップ管または 96 ウェル プレートでバーコード プライマー (10 μ M) を配置します。
   4. 十分な 3 通の各 DNA サンプルを増幅する PCR マスター ミックスを準備します。BSA (20 mg/mL) の 1.5 μ L、既製の 2 × マスター ミックス ( Taq DNA ポリメラーゼ、dNTPs、MgCl₂PCR バッファーの構成) 37.5 μ L、葉緑体 PNA の 0.57 μ L を準備 (100 μ M)、ミトコンドリアの PNA の 0.57 μ L (100 μ M)、および分子グレード水 25.86 μ L。
   5. マルチ チャンネル ピペット貯水池の滅菌 25 mL にマスター ミックスを注ぐし、マルチ チャンネル ピペットを使用して新しい 96 ウェル PCR プレートの各ウェルにマスター ミックスの 66 μ L を配布します。
      メモ: マスター ミックス試薬量の計算している場合、は、プレートごと 4 空井戸も含めるようにしてください。
   6. マルチ チャンネル ピペットを使用して、5 ng/μ l の DNA (正規化された DNA プレート) からマスター ミックス プレートを 6 μ L を追加します。各列が異なる前方バーコードがあり、各行が異なるリバース バーコード (図 2) プライマーをリバース 10 μ M の 1.5 μ 10 μ M 前方プライマーのマスター プレート 1.5 μ L に追加します。
      注: プライマーを追加する前にランダム化されたプレートとマスター ミックスされる可能性があります異なるプライマーを追加した場合、ITS や ITS2 真菌遺伝子を増幅します。この場合、同様のプライマー設計を使用できます。
   7. 3,000 x g に簡単にプレートのスピンダウンは、優しく、ミックスし、反応混合物の 25 μ L で 3 つのプレートに分割マルチ チャンネル ピペットを使用します。
      注: 3 つのレプリケートは厳密には必要ないが、技術の変動の影響が低下します。
2. たちの次の条件に設定を使用して各板の DNA を増幅する: 180 s 98 ° C で、30 のサイクル: 98 ° C、45 s (変化)、10 の 78 ° C (PNA アニール) s、55 ° C、60 s (プライマーアニー リング)、および 90 のための 72 ° C s (拡張子)、その後、600 s 72 ° c 4 ° C に続いてホールド ステップ。増幅後、1 つの単一の 96 ウェル プレートに 3 つの複製版をプールします。
3. 96 ウェル プレート リーダーの高感度蛍光光度計試薬を用いた DNA を定量化します。
   1. 96 ウェル マイクロ プレート、蛍光光度計作業ソリューション (1: 200 染料: バッファー) 98 μ と共に各 PCR の製品の 2 μ L を追加します。標準として 4 井戸があります: DNA 標準 1 の 5 μ L (0 ng/μ L DNA)、1 μ L の標準 2 (10 ng/μ L)、標準 2 (20 ng/μ L)、2 μ L、5 μ L 標準 2 (50 ng/μ L) の。100 μ L の最終巻の蛍光光度計作業ソリューションを加えます。
      注: 各サンプルは、プレート リーダーが使用できない場合、2.3 の手順で説明されているようにベンチトップ蛍光光度計を使用して測定できます。
   2. 4 つの標準の線形回帰によって吸光度出力から DNA 濃度を計算します。
   3. 正常に増幅されたバーコード (これら 15 ng/μ L を超える濃度にしている)、製品プール 100 シングル 1.5 mL チューブ (表 2) に各サンプルの ng。
   4. スプレッドシート プログラムで =AVERAGE() 関数を使用してプールに追加するサンプルの平均数量を計算します。御府内に「空白」の PCR の製品の量を追加します。
      注:「空白」の PCR の製品は、独自の一意のバーコードの組み合わせを持っている、ので、実験室汚染物をチェックするために配置できます。
4. ステップ 2.3、および DNA の取る 600 ng の説明に従ってベンチトップ蛍光光度計を使用してプールの製品の濃度の測定し、分子グレード 1.5 mL チューブに 100 μ L の最終巻に水で希釈します。-20 ° C で残りのプールの保管します。
5. いくつかの例外を除いて 96 ウェル形式で常磁性精製ビーズ確立された PCR 精製プロセスに従う 600 ng DNA 分注を洗ってください。
   1. 70% のエタノールの因数新鮮な 600 μ L を作る。底に沈殿ビーズを再停止する磁気ビーズのボトルを振る。
   2. DNA の 600 ng 因数にビーズ ソリューションの 1 x ボリューム (100 μ L) を追加します。10 回のピペッティングにより徹底的にミックスします。室温で 5 分間インキュベートします。
   3. マグネット スタンドを 2 分間 (またはソリューションがクリアされるまで) にチューブを配置ソリューションからビーズを分離します。マグネット スタンドのチューブでは、磁性ビーズに触れることがなく慎重に明確な上清を吸引、明確な上澄みを廃棄します。
      注: この時点で、私アンプリコン製品は、磁性ビーズにバインドされます。邪魔紛失中の誤嚥は、すべてのビーズは、DNA の損失になります。
   4. マグネット スタンドでチューブを残して、管; 70% のエタノールの 300 μ L を追加エタノールと破棄を 30 s. 吸引室温で孵化させなさい。このプロセスを繰り返し、2 番目の洗浄後すべてエタノールを取り外します。マグネット スタンドからチューブを外し、エアーで 5 分間乾燥させます。
   5. 乾燥ビーズにグレード分子水の 30 μ L を追加し、10 回のピペッティングで混ぜます。ソリューションからビーズを分離する 2 分 1 分のマグネット スタンドにリターン チューブの室温で孵化させなさい。溶出液を新しいチューブに転送します。
      注: 磁気ビーズは下流の反応を影響しません。
6. 掃除、2.3 の手順で説明されているようにベンチトップ蛍光光度計を用いたプールされた DNA の最終濃度を測定します。10 因数を希釈濃度、30 μ L の最終巻でボリューム シーケンス機能によって優先 nM。
7. NGS のプラットフォーム、300 bp ペアエンド シーケンス x 2 で DNA のシーケンスにシーケンス処理施設のサービスを利用します。

Results

推奨されるプロトコルを実行する必要があります結果、データセットの各サンプルに戻る一致し、いずれか細菌に代入することができますインデックス付きのペアエンド リードの操作分類単位 (乙) または順序の変形 (ESV、増幅とも呼ばれますシーケンス バリアント (ASV) と sub-operational 分類単位 (sOTU)) は、下流の分析によって異なります。高品質シーケンス データを取得するためにサンプル間の整合性を維持し、サンプル処理やライブラリの準備の間に任意の潜在的なバイアスの導入を最小限に抑えるために各ステップで注意する必要があります。収集した後、処理、および (手順 1 と 2) のサンプルから DNA を抽出すると、はっきりと増幅を抑制すると有機物の無料結果溶出液が表示されます。微量分光光度計による各 DNA のサンプルを測定することにより純度を確認ことができます、我々 は土壌 DNA 抽出キットがすべての汚染物質を確実に削除することを発見しました。予測可能な DNA の品質結果特異 DNA を結合する蛍光ベースの染料に依存して定量化方法が紫外線吸光度

Discussion

このプロトコルは、ルート endosphere、根、およびサンプル処理し、下流配列にサンプリング、フィールドからの土壌微生物群集組成の基礎の確立されたパイプラインを示します。勉強ルート関連内細菌叢解析特有の課題、ため一部サンプリングの固有の難しさへの土壌から。土壌は非常に物理的・化学的性質の面で変数と異なる土壌条件はわずか数ミリ^28,29によって分けることができます。これはかなり異なる微生物群集の組成を持ち、活動^30,31隣接するサンプリング サイトから集めたサンプルにつながることができます。したがって、土壌コアのコレクターやシャベルを使用して一貫性のあるサンプリングの深さと DNA の抽出の前に均質化ルート マイクロバイ研究内再現性に不可欠ですを維持します。根と根分画で; を効率的に分離も欠かせません過酷なルート表面殺菌法を用いた潜在的分離エンドファイト DNA の抽出の前に根の内でより保守的な洗浄が根...

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
0.1-10/20 & マイクロ;Lフィルター付きマイクロピペットチップ	USA Scientific	1120-3810	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
1.5 mL 微量遠心チューブ	USA Scientific	1615-5510	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
10 µLマルチチャンネルピペット	エッペンドルフ	3122000027	他のサプライヤーの同等のものに置き換えることができます。
10 µL、100 µL、および1000 µL マイクロピペット	エッペンドルフ	3120000909	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
100 & マイクロ;Lマルチチャンネルピペット	Eppendorf	3122000043	他のサプライヤーの同等のものと交換できます。
1000 &マイクロ;Lフィルター付きマイクロピペットチップ	USA Scientific	1122-1830	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
2 mL微量遠心チューブ	USA Scientific	1620-2700	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
2 mmの土壌ふるい	業サプライヤー	60141009	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
200 µLフィルター付きマイクロピペットチップ	USA Scientific	1120-8810	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
25 mLリザーバーVWR	International LLC	89094-664	サプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
50 mLコニカルバイアル	サーモフィッシャーサイエンティフィック	352098	サプライヤーの同等のものに置き換えることができます。
500 mL真空フィルター(0.2 µm孔径)	VWR International LLC	156-4020
96-well microplates	USA Scientific	655900
96-well PCR plates	BioRad	HSP9631
Agencourt AMPure XP beads	Thermo Fisher Scientific	NC9933872	使用説明書: https://www.beckmancoulter.com/wsrportal/ajax/downloadDocument/B37419AA.pdf?autonomyId=TP_DOC_150180 &documentName=B37419AA.pdf
アルミホイル	ボードウォーク	7124	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
0.001gの分解能を持つ分析スケール	Ohaus Pioneer	PA323	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
Bioruptor Plus 超音波装置	Diagenode	B01020001
ウシ血清アルブミン (BSA) 20 mg/mL	ニューイングランド バイオラボ	B9000S
遠心分離機	エッペンドルフ	5811000908	50mL および 96 ウェル プレートを含む バケツアダプター
極低温手袋	ミリポア シグマ	Z183490	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
DNeasy PowerCleanキット(オプション)	Qiagen Inc.	12877-50	以前はMoBio
DNeasy PowerSoilキット	Qiagen Inc.	12888-100	以前の MoBio
ドライアイス	任意の	NA
DynaMag-2 磁石	サーモフィッシャーサイエンティフィック	12321D
エタノール	VWR インターナショナル LLC	89125-188	を代用しないでください 他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
ガロンサイズのフリーザーバッグ	ジップロック	NA	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
Gemini EMマイクロプレートリーダー	Molecular Devices	EM	は、96ウェルプレートを上から読み取る別の蛍光光度計を使用することができます。
K2HPO4	Sigma-Aldrich	P3786
KH2PO4	Sigma-Aldrich	P5655
白衣	Workrite	J1367	他のサプライヤーからの同等のものと代替できます。
液体N2	Any	NA	他のサプライヤーからの同等のものと代替できます。
液体 N2 デュワー	サーモフィッシャーサイエンティフィック	4150-9000	他のサプライヤーからの同等のものと代替できます。
Milli-Q 超純水製造装置	ミリポアシグマ	SYNS0R0WW
ミニ遠心分離機	エッペンドルフ	5404000014
モレキュラーグレードの水	サーモフィッシャーサイエンティフィック	4387937	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
迫撃砲VWR	International LLC	89038-150	サプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
ニトリル手袋	サーモフィッシャーサイエンティフィック	19167032B	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
ペーパータオル	VWRインターナショナルLLC	BWK6212	他のサプライヤーからの同等のものと交換することができます。
PCRプレートシーリングフィルム	サーモフィッシャーサイエンティフィック	NC9684493
PCRストリップチューブ USA	サイエンティフィック	1402-2700
乳棒	VWR International	LLC 89038-166	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
プラスチックヘラ	LevGo, Inc.	17211
プラチナホットスタートPCRマスターミックス (2x)	サーモフィッシャーサイエンティフィック	13000014
PNA - 葉緑体およびミトコンドリア	PNA Bio	NA	バイオインフォマティクスで配列を確認してください
保護メガネ	ミリポアシグマ	Z759015	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
Qubit 3.0 Fluorometer	Thermo Fisher Scientific	Q33216
Qubit dsDNA HS assay kit	Thermo Fisher Scientific	Q32854
ゴム槌 (オプション)	Ace ハードウェア	2258622	他のサプライヤーの同等のものと交換できます。
はさみまたははさみ	VWR International LLC	89259-936	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
ショベル	ホームデポ	2597400	他のサプライヤーからの同等のものと交換することができます。
ソイルコアコレクター(小径:<1インチ)	ベンメドウズ	221700	他のサプライヤーからの同等のものと交換できます。
スプレーボトルサンタ	クルス	バイオテクノロジーsc-395278	サプライヤーからの同等のものと交換することができます。
標準的な脱塩バーコード付きプライマー(10 µM) (表 1)	IDT	NA	4 nmole Ultramer DNA オリゴと標準的な脱塩。NGSアダプターとシーケンシングプライマー(表1)は、v3ケミストリーを使用してIllumina MiSeqで使用するように設計されています。
サーモサイクラー	サーモフィッシャーサイエンティフィック	E950040015	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。
Triton X-100	Sigma-Aldrich	X100	他のサプライヤーの同等品と交換できます。
ボートの重量を量る	スペクトラムケミカルズ	B6001W	他のサプライヤーからの同等のものに置き換えることができます。