式、可溶化、および真核生物ホウ酸輸送体の浄化

Summary

ここで表現し、可溶化、酵母を用いた SLC4 トランスポーター家族に相同性を有するいくつかの真核生物のホウ酸トランスポーターを浄化するプロトコルを提案します。ポリコームタンパク アセンブリの精製 homomeric タンパク質を評価する化学架橋法についても述べる。これらのプロトコルは、他の困難な膜タンパク質の合わせることができます。

Abstract

蛋白質の溶質のキャリア 4 (SLC4) 家族炭酸トランスポーターと典型的なタンパク質陰イオン交換器 1 (AE1、バンド 3 として知られている)、赤色の血液細胞で最も多い膜タンパク質が含まれています。SLC4 家族は相同ホウ酸のトランスポーターは、植物および菌類の特徴とされています。表現し、膜輸送タンパク質構造や機能研究に適した分量の同質性に浄化の重要な技術的な課題が残っています。ここで洗剤、及びs. からのホウ酸トランスポーターの同族体の精製酵母酵母の膜の分離、タンパク質の可溶化におけるホウ酸輸送体の過剰発現の詳細な手順を説明します。酵母、シロイヌナズナとイネ。我々 はまた、グルタルアルデヒド架橋 homomeric トランスポーターの多量体形成を分析するための実験を詳しく説明します。私たちの一般的な手順はすべての 3 つのタンパク質に適用することができ、有効性に最適化されています。ここで開発戦略の多くは、他の困難な膜タンパク質の研究のため利用できます。

Introduction

精製膜タンパク質の十分な量を得ることが困難まま受容体、イオン チャンネル、トランスポーターの構造と機能研究の追求の重大なボトルネックになります。後続の in vitro研究^{1,2,3,4 を有効にするのに十分に表現する画面と検索候補の膜タンパク質を適度に高いスループットのパイプラインの多くのプロトコルが存在します。}.通常、タンパク質の N 末端または C 末端緑色蛍光タンパク質 (GFP) でタグ付けされて、ゲルの蛍光または蛍光検出サイズ排除クロマトグラフィー (FSEC)⁵のいずれかの表現のレベルが監視されます。このようなアプローチは、高発現するタンパク質、中程度または低蛋白質を表現するまたは悪いまたは全く表現蛋白質に膜タンパク質の候補者のトリアージを有効にします。このアプローチは、実験的なデザインがどの蛋白質表現最高を選択するつもりで候補者の遺伝子の多数を調査する場合は、動作します。ただし、いくつかのケースでの実験的アプローチは、その蛋白質の表現のレベルが中程度または低い範囲内に挑戦することができます特定の膜タンパク質を勉強を前提と。さらに、時々 これらのケースで発現レベル最小限しか大きくできます切り捨て、thermostabilizing の突然変異やコドン最適化を介して構造を変えることによって。それは、したがって、そこそこよくのみを表現する膜タンパク質の膜蛋白質の発現と精製プロトコルを最適化するために必要な場合。

トランスポーターの SLC4 家族には炭酸トランスポーター陰イオン交換器 1 (バンド 3 として知られている)、赤血球⁶で最も多い膜タンパク質、細胞呼吸の重要なドライバーが含まれています。SLC4 家族は植物に重要なナトリウム結合 SLC4 トランスポーター^{7,8,9 だけでなく、陰イオン交換器 1 に類似した構造を示すことが示されているホウ酸トランスポーターと相同、10}。ここで酵母や植物は、3 つの異なるホウ酸トランスポーターを浄化する酵母を使用最適化された蛋白質の発現と精製のプロトコルを報告します。我々 は収量と同質性に浄化の効率を最適化するために行った詳細キー手順で強調表示します。また、我々 はグルタルアルデヒドを使用して精製タンパク質洗剤脂質複合体のコンテキストでこれらの運送者ポリコームタンパク アセンブリを監視する化学架橋アッセイを報告します。架橋実験は、浄化後の運送者オリゴマー ポリコームタンパク状態を評価することによって相同物と洗剤の適合性を評価できます。

このプロトコルでは、目的のトランスポーターは、出芽酵母における発現の GAL1 プロモーターの誘導制御の下で派生 2 μ プラスミドにクローン化されていますを前提としています。これらの手順の DNA を使用したフルレングスの野生型のホウ酸トランスポーター酵母Bor1 をエンコード (ScBor1)¹¹、シロイヌナズナBor1 (AtBor1)¹²、およびイネの Bor3 (OsBor3)¹³.各構成体の C 末端は 10-His タグを付加し、胸の谷間のトロンビン サイト トランスポーターとタグの間 10-彼 - の除去を有効に挿入目的します。プロトコルはまた、プラスミド、DSY 5 式ひずみ出芽酵母の完全な補足選択培地 (CSM) にヒスチジンに欠けているに既に変換されていることを仮定します。

Protocol

1. メディアと重要なバッファーの準備

1. ガラクトースと脱イオン水の 200 g を 500 mL の容量に追加することによって 40% ガラクトースの 500 mL を準備します。ホット プレートや電子レンジを使用して、ソリューションにガラクトースの率を高めます。0.2 μ m フィルター滅菌ガラスのビンを上部から成る真空ろ過装置と滅菌フィルター。
   注: すべてのメディア ソリューションは、脱イオン水を使用して準備されます。
2. グルコースと水の 200 g を 500 mL の容量に追加することによって 40% ブドウ糖 500 mL を準備します。オートクレーブ滅菌します。
3. 4 の 2 L フラスコに、ヒスチジン (CSM 彼)、3.35 g 酵母窒素アンモニウムの硫酸塩 (YNB + 窒素)、475 ミリリットルの水でなく完全な補完物 0.4 g を追加します。オートクレーブ。2% の最終的なグルコース濃度を達成するためにグルコースを 40 %25 mL を追加します。
4. 追加、ガラス瓶、50 g ペプトンと 25 グラム酵母エキスと 375 mL に水します。オートクレーブ。5 x 10% ガラクトースを含む酵母ペプトン (YP) ソリューションを与える 40% ガラクトースの 125 mL を追加します。
5. 0.04 g を 250 mL のフラスコに追加 CSM-彼の 0.335 g YNB + 窒素・ 47.5 mL に水。オートクレーブ。2.5 mL 40% ブドウ糖 50 mL CSM 彼を得るための追加 YNB + 2% ブドウ糖。
6. 800 mL の水で、トリス基本 121.14 g を混合することによって 1 M トリス pH 7.0 の 1 L を準備します。PH は、7.0 に達するまでは、濃塩酸を追加します。1 L の最終巻に水を追加し、0.2 μ m フィルターを通過します。
7. 400 mL の水と EDTA の 73.06 g を混ぜて 0.5 M エチレンジアミン四酸 (EDTA) pH 8.0 の 500 mL を準備します。EDTA が解散し、pH 8.0 に達するまでは、水酸化ナトリウムのペレットを追加します。500 mL の最終巻に水を追加し、0.2 μ m フィルターを通過します。
8. 200 証拠エタノール PMSF の 1.74 g を混ぜて 100 mM phenylmethanesulfonyl フッ化物 (PMSF) 100 mL を準備します。-20 ° C にてストア
9. 225 mL の 2 倍の 50 mM トリス pH 7.0, 1.4 M NaCl、20% グリセロールと 1 mM EDTA pH 8.0 で構成されるビーズ洗浄バッファーを準備します。
10. 20 mM 4 Morpholinoethanesulfonic 酸水和物 (MES) pH 6.5 では、100 mM の NaCl、2% グリセロールと 0.03 %n-ドデシル-ベータ-D-Maltopyranoside (DDM) から成る、サイズ排除クロマトグラフィー バッファー (S200) 100 mL を準備します。
11. 100 mL の 50 mM トリス pH 7.0, 500 mM, NaCl と 10% グリセロールから成る膜再懸濁バッファーを準備します。
12. 1.6 mL 2-メルカプトエタノール、0.03 g ブロモフェノールの青、2.4 mL 1 M トリス pH 6.8 グリセロール 3 mL 3 mL 20% ドデシル硫酸ナトリウム (SDS) を混ぜて × SDS ページ読み込み染料 3 の 10 mL を準備します。

2.酵母のホウ酸トランスポーターの発現

1. 50 ml の CSM 彼の 3 つの変換されたイースト コロニーを接種 + 30 ° C で 190 rpm で一晩 YNB + 2% グルコース メディアやふれ
2. 次の日は、600 の波長で光の密度を決定する分光光度計を使用して nm (外径₆₀₀) 各 4 2 L フラスコをそれぞれ含む CSM 彼の 500 mL の 0.01 外径₆₀₀に接種して YNB + 2% グルコース メディア。
3. すべてのグルコースを消費し、高密度成長する細胞を許可する 30 h 30 ° C で 190 rpm で横に振る。
   注: 成長時間が長くより大きいセルの結果の結果が、大きい収穫膜利回り、最終的に大きい精製タンパク質が得られます。
4. 5 x YP 培地 2% ガラクトースの最終的な誘導濃度 10% ガラクトースの 125 mL を追加することによって式を誘導します。16 h 30 ° C で 190 rpm で横に振る。
5. 4,000 x gで 15 分間で回転による収穫細胞では、100 mL の冷たい水で細胞を再懸濁します。
   注: この時点で細胞が凍結される-80 ° C で無期限に、またはセル換散および膜の収穫に引き続き、準備。我々 は通常細胞の 40-45 g を収穫します。

3. 酵母の膜の収穫

1. プロテアーゼ阻害剤として行動する 2 つのセルの巻き上がり 1 M トリス pH 7.0 では、0.5 M の EDTA の 0.45 mL 11.25 mL と 100 mM PMSF、後者の 2.25 mL を加えます。225 mL の 50 mM Tris pH 7.0 では、1 mM EDTA、および 1 mM PMSF のセル再懸濁バッファー内の結果の最終巻に水を追加します。
   注: ビーズ叩いて、換散を抵抗する場合は部分的に固定されたまま、ので、凍結細胞を使用してに徹底的に、常温で約 1 時間の解凍が細胞を許可するかどうか。
2. ビーズを破っての 450 mL 金属キャニスターにセルの巻き上がりを追加します。冷たい 0.5 mm のガラスビーズを残りのボリュームの締めくくり。
3. ローターとビーズの商工会議所を組み立てるし、氷水に浸します。ライセートの過熱を防ぐために 2 分残りピリオドで区切られた 6 の 1 分のパルスを実行します。
4. ガラス瓶の中にプラスチック製の使い捨てボトル上部フィルターねじ込みによる吸引ろ過装置を組み立てます。残りのプラスチック製のデバイスを渡すライセートを許可しながら、ビーズをキャプチャできるため、ろ過膜を削除します。ライセートからアセンブリを真空の適用中にビーズ暴行部屋の内容を注ぐことによってビーズを分離します。
5. 225 ml 50 mM Tris pH 7.0 では、1 mM EDTA、1 mM PMSF、1.4 M の NaCl および 20% のグリセロールを含む洗浄バッファー x 2 のビード暴行商工会議所を洗います。それらを洗浄するためにビーズの上に商工会議所の内容を空にします。
   注意: 洗浄分離 〜 450 mL 細胞の最終巻と大幅増加収穫された膜が得られます。最終濃度 50 mM Tris pH 7.0 では、1 mM EDTA、1 mM PMSF、10% グリセロールと 700 mM の NaCl、塩分濃度を高めることの主な目的は周辺膜蛋白質を分離します。
6. 細胞ライセート 15,000 × gで 15 分間スピンダウンします。ポリカーボネート瓶と膜を収集する超遠心機で 135,000 x gで 1 h のスピンに上澄みを注ぐ。
   注: 超遠心機が利用できない場合膜は 53,000 x g、床モデルの遠心分離機の達成力で 3 時間回して収集可能性があります。
7. 上澄みを廃棄し、膜ペレットとボトルの重量を量る。50 mM Tris pH 7.0 では、500 mM の NaCl、および 10% グリセロールを含む膜再懸濁約 35 mL バッファー内膜ペレットを再懸濁します、ガラス douncer に追加します。収穫された膜の質量を決定する空遠沈管の重量を量る。
   注: 効率的な膜収穫、膜の重量に等しくなります膜収穫用セルの重量約 20%。このプロトコルは 40-45 g の典型的な細胞収率を与える、従って私達は同様に 8-9 g 膜の収率を期待します。
8. Dounce 均質膜、そして因数-80 ° C で不明確に保存されるかもしれない今 50 mL の円錐管に
   注: この実験では、通常 2 つの因数作られています、1 つの元のセルの準備から実行する 2 つの別々 の蛋白質精製できるように。

4. 可溶化およびタンパク質の精製

1. ビーカーに攪拌棒と n-ドデシル-β-D-Maltopyranoside (DDM) 使用されている g 膜ごとの 150 mg を追加します。蛋白質または 4 ° C で氷の上を保つため、すべての回で。
   注: DDM は吸湿性、使用しないときは-20 ° C で乾燥剤をガラスの瓶に保存する必要があります。また、純粋な蛋白質のかなりの量を取得する浄化膜の 4-5 g 間で使用する一般的なです。
2. 膜を融解し、g 膜膜再懸濁バッファー 1 mM PMSF と 20 mM のイミダゾール pH 8.0 補われるあたり 15 mL の最終巻。DDM とビーカーに膜を追加し、4 ° C で 1 時間攪拌
   注: DDM 濃度 1 %w/v になりますが、膜タンパク質の可溶化 g 膜ごと追加洗剤量を認識するより重要であります。
3. 非溶解材料をペレットへの 4 ° C で 135,000 x gで 25 分のスピンします。上清を 5 μ m のシリンジ フィルターをフィルターします。
4. 蠕動ポンプによってサンプル 1 mL 固定化ニッケル アフィニ ティー ・ カラムに 1 mL/min の流量に設定負荷平衡 0.05%、20 mM のイミダゾール pH 8.0、10% グリセロール 20 mM Tris pH 7.0, 500 mM の NaCl の DDM。
   注: 低発現蛋白質のため改良された純度・収量を用いて観察された 1 mL 5 mL 列、およびコバルト イオンではなくニッケルではなくアフィニ ティー ・ クロマトグラフィーのため。
5. 0.05%、80 mM のイミダゾール pH 8.0、10% グリセロール 20 mM Tris pH 7.0 では、500 mM の NaCl を含む洗浄バッファーの 10 列ボリュームを洗い流す DDM。
   注: 10 彼タグ付きタンパク質の洗浄時に使用できるイミダゾールの集中は一般的に高く評価されており、改良された純度の結果よりも高い。
6. 0.05%、300 mM のイミダゾール pH 8.0、10% グリセロール 20 mM Tris pH 7.0 では、200 mM の NaCl を含むバッファーにタンパク質を溶出 DDM。10 1 mL で溶出液を収集し、, 可溶化ライセートと洗って分数とともに 4 20% トリス-グリシン-SDS のページ ゲルでランします。
7. 通常 5-6 mL の濃縮液 500 μ L 以下 4 ° C で冷蔵ベンチトップ遠心分離機で 50 kDa カットオフ コンセントレーターのボリューム、プール ピーク画分
   注: 500 μ L は典型的な最大ボリューム サイズ排除クロマトグラフィ (SEC) カラムに注入です。この時点で蛋白質は-80 ° C で不明確に保存されるかもしれないまたは秒に続き
8. 0.2 μ m 回転カラム フィルターを通してタンパク質をフィルターし、S200 バッファーのサイズ排除カラム (例えば、 Superdex 200) に注入: 0.03%、2% のグリセロール、20 mM Mes pH 6.5 では、100 mM の NaCl DDM。
   メモ: 以降グルタルアルデヒド架橋試金、緩衝剤は第一級アミンを含まれてはいません。Mes のトリスを交換するときにここで行うと、必要に応じてバッファーを交換する機会です。
9. ピーク分数 4 20% トリス-グリシンの SDS ページのゲルを実行します。ゲルを染色、純粋なピーク画分を収集、4 ° C で 50 kDa カットオフ コンセントレーターに集中
10. -80 ° C で無期限にストアの 280 nm の波長で吸光度を測定することによってタンパク質の濃度を測定します。

5. グルタルアルデヒド架橋法

1. S200 バッファー、S200 バッファー、1 μ L の水または 20% ドデシル硫酸ナトリウム (SDS)、1.5% グルタルアルデヒドの 1 μ L に続いての 5 μ L で 0.5 mg/mL 蛋白質の 3 μ L を混合することによって 10 μ L 反応を準備します。
   注: これは 0.15 mg/mL タンパク質と 0.15% グルタルアルデヒドの 1 x 反作用を与えます。SDS の前処理を含むサンプルは重要なマイナス コントロールし混合し、グルタルアルデヒドを追加する前に 5 分間室温でインキュベートする必要があります。
2. 室温で 30 分間反応を孵化させなさい。ローディングの染料、グルタルアルデヒドを消光 Tris バッファーの過剰を含む SDS ページのゲル x 3 の 5µL を追加することで反応を停止させます。
3. 1 レーンあたり 1.5 μ g のタンパク質を読み込む 4 20% トリス-グリシン-SDS のページ ジェルの上に 15 μ L すべてをロードします。200 V で 30 分間染色でゲルを実行し、変性の単量体のサイズの 2 倍で動作するバンドの証拠によってダイマー架橋の程度を決定します。
   注: グルタルアルデヒド滴定と時間経過が行われる最初 homomeric トランスポーターの最適な条件を見つけること。

Results

ニッケルのアフィニ ティー ・ クロマトグラフィーの実行から溶出画分の典型的なゲルは、すべて 3 つのタンパク質部分精製 (図 1A) を表示します。はしごの右にし、ライセート、よくノザンかない蛋白質のために典型的であるホウ酸トランスポーターに対応する重要なバンド表示されない各場合でです。80 mM 洗浄車線比較的高いイミダゾールの集中にもかかわらず 10 彼タグ付きタンパク質の最小の損失を示しています。ホウ酸のトランスポーターに対応するバンドは溶出画分に容易に明らかであり、溶出蛋白質の大部分を含むとみなされる分数が S200 ゲルろ過カラムに注入する前に集中しています。この段階でタンパク質が充分に精製多く下流用 S200 列 (図 1B) に注入する前に集中してサンプルで余分なバンドによって示される。ただし、サイズ排除カラムに試料を注入する高純度 (図 1B C) の溶出画分を明らかにします。クロマト グラムとホウ酸輸送体のそれぞれに対応するジェルが掲載されています。アフィニ ティー ・ クロマトグラフィーの溶出時にサンプルの適度な純度、にもかかわらず蛋白質はゲル濾過カラムから溶出時に高純度。批判的に、クロマト グラムは、ボイド ボリュームで保持されるほとんどのタンパク質で主に単一単分散ピークとして移行する各蛋白質を明らかにします。一般的に、安定と折り畳まれたタンパク質は、不安定、誤って折りたたまれた、または集約されたタンパク質が void のボリュームで複数の非対称ピークまたは大きなピークを与える一般的に、単分散と優れたピーク対称を与えます。ScBor1、および約 1 mg 各精製の AtBor1 と OsBor3 の L カルチャごとの酵母培養の L あたり約 2 mg 精製蛋白質の最終的な収量を入手するが一般的です。これらの番号は 1 つに由来する膜の 4-5 g の 1 つの因数から精製された蛋白質の量の元のセルの準備の半分。

架橋実験精製 homomeric トランスポーターが容易に評価ソリューション (図 2) にそのアセンブリを持つことができますを示しています。SDS の前処理を含むサンプルの目的は、架橋がソリューションにたたんだ状態に依存して架橋したがってが発生しないこと多量体形成は過酷な洗剤によって破壊されるときを示すことです。結果、3 つのホウ酸トランスポーター、ScBor1 の 1 つはない二量体化他の 2 つ、AtBor1 と OsBor3、架橋ダイマー化を表示し、これらの条件で DDM で精製したときを区別します。すべてのタンパク質がクロスリンク可能性がありますを参照してくださいすることが可能です。この例では、AtBor1 が完了するクロスリンク間 OsBor3 モノマーの微量が表示、されます。架橋の程度が、互いに近接のリジン残基の数によって異なります、他の架橋試薬が異なる膜タンパク質を架橋して効率的に可能。

図 1.3 つのホウ酸トランスポーターの親和性とサイズ排除クロマトグラフィー精製をニッケルします。各垂直パネル (A)、(B) と (C) ScBor1、AtBor1、および OsBor3 のためのデータが含まれています。(A) ニッケルのアフィニ ティー ・ カラム。M 左に指定された kDa の重みを持つ分子量マーカーの梯子であります。L はライセート、原油、W は 80 mM のイミダゾール洗浄。他のすべての番号付きの車線は、300 mM のイミダゾールと溶出 1 mL の一部分に対応します。分数上記バーを結合し、列に注射用集中種別を示します。(B) P は、S200 列に注入する前に高濃度タンパク質を示します。溶出の秒端数は、ゲルの車線である (C) のクロマト グラム分数に合わせて金具右へ。ボイド ボリュームは 8 mL の直後後です。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

図 2.精製のトランスポーター ポリコームタンパク アセンブリを評価するアッセイを架橋します。分子量の梯子は、左側に表示されます。とりわけどのタンパク質が存在し、グルタルアルデヒド追加または SDS のグルタルアルデヒド加算の前に前処理サンプルがあったかどうか、他のレーンが表示されます。矢印は、AtBor1、OsBor3 のモノマー、ダイマーの位置を示します。ScBor1 は AtBor1、OsBor3 より小さい蛋白質を期待どおりに実行します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください。

Discussion

ここで、我々 は 3 つの異なる真核生物のホウ酸トランスポーターの同質性に浄化、詳細なプロトコルを共有しています。ここに示すプロトコルは、純度の向上、歩留り向上最適化結果および出芽酵母^1,14、不可欠な膜タンパク質の発現のための他のプロトコルから派生されます。ここで最適化されたパラメーター、細胞培養成長量と時間、ビーズ溶解手順、セル換散バッファー組成および親和性の浄化で蛋白質の浄化、グラム膜、金属イオンに対して使用する洗剤の量を識別アフィニ ティー ・ カラムと架橋アッセイ運送者オリゴマーのポリコームタンパク状態を評価することによって相同物と洗剤の適合性を評価するための実装のボリューム。プロトコルは、植物と菌類の種組成から複数 SLC4 同族体の成功。不可欠な膜蛋白質の浄化のためのすべての戦略の制限は、普遍的な膜蛋白質の浄化の方法には、動作する保証は存在しないことです。私達のプロトコルが¹⁵をターゲット シーケンス id および SLC4 トランスポーターそしてこうして SLC4、SLC23、および SLC26 家族構造に近いタンパク質が有望なことができるため、成功する可能性が高いことは可能です。同様より進化のホウ酸トランスポーターから遠い膜トランスポーターがあります、プロトコルが式システム、洗剤、またはその他の重要なパラメーター⁴を変えることによって異なる、このようでなければならないとしている可能性が高く。

プロトコルは、蛋白質の浄化、彼タグの最も一般的に使用される親和性タグの活用します。初期溶出画分中の不純物の存在、にもかかわらずニッケル親和性、広範な洗浄およびそれに続く SEC 浄化の組み合わせは、高純度のタンパク質の結果します。10-His タグによりより厳格なイミダゾールを洗うため洗浄によって 8 彼- または 6-彼-タグを許可で削除することができますよりもより多くの背景結合蛋白質できますように。純粋な分数の私たちの選択は、ほとんどの非常に純粋なゲルの分数は、ピークの秒端数に対応の保守的な側に誤る。わずかにより少なく純粋な蛋白質のトレードオフはあるものの、プールおよび複数の分数を集中して最終的な蛋白質収量を大きくできます。ここで示される方法有効数量ではそのタグを切断し、別にトランスポーターを交換から成る浄化の違いとその結晶構造⁷の決定につながった AtBor1 の精製結晶回折⁷を改善する洗剤です。

我々 のプロトコルは、同族体と使用可溶化し、それらを浄化する洗剤の選択の重要な考慮事項を発生させます。それは比較的穏やかな、可で成功した多くの場合、さまざまな膜タンパク質の構造と機能の研究で使用されていますので、DDM は洗剤の共通の最初の選択肢です。洗剤が膜は貧しい人々 の選択であるかどうかを決定する、評価の一般的な方法は蛋白質が、SEC クロマト グラム上の単一単分散ピークではなく void ボリュームまたは多ピークの範囲で大きなピークを与えるかどうかを誤って折りたたまれた、または不安定な蛋白質を示します。微妙な考察は、ScBor1 の私たちの浄化によって発生します。それは大量と良好なルックスと単分散構造研究のための魅力的なターゲットをことを示唆している、SEC のクロマト グラム上で浄化します。ただし、我々 の架橋分析精製時のモノマーであること明らかにします。それは ScBor1 ことができるネイティブ セルの単量体として存在することが可能ですが、研究を示す SLC4 トランスポーターとそのホモログが二量体^7,8,9,10をする可能性があります。結晶化と AtBor1 の構造を解決後に架橋の試金の開発が発生しました。しかし、我々 は架橋試金で AtBor1 と比較して ScBor1 を評価することがされていた貴重な時間と研究の取り組みは、後者の場合、最終的に、失敗は、ScBor1 ではなく AtBor1 の追求にリダイレクトされている可能性があります結晶化と回折の実験。この試金はこうして同族体または構造の研究を進めてときにタンパク質がその疑いのネイティブ構造を維持して条件の優先順位を設定するために使用する洗剤を区別する研究者を助けることができます。さらに、アッセイは、どのアミノ酸が多量体形成インターフェイスとモノマーを義務づけるに鉛を不安定にアミノ酸置換を見つけるために、多量体形成の重要なプローブを使用できます。このようなアプローチは、膜輸送体^16,17,18homomeric アセンブリの機能的意義をプローブに使用されています。

本手法の一般的な利点は、酵母を多様な機能¹の多くの挑戦的な膜蛋白質の表現を有効にするのに示されていることです。さらに、その低コストと成長時間少ないティッシュ文化または高価な成長媒体を必要とする表現の戦略を使用することができることができる多くの研究努力のためのアクセシビリティも向上します。ここで説明されている手順は比較的高価であり、アプローチの可能性を強調している 1 週間で実行できます。これらのプロトコルの実装は、他の困難な膜タンパク質の構造と機能の研究を有効にすることができます。

Materials

List of materials used in this article

Name	Company	Catalog Number	Comments
2-メルカプトエタノール	Sigma-Aldrich	M3148
4-モルホリノエタンスルホン酸水和物 (MES)	Acros	172591000
Äkta Pure 25 L FPLC	GE Healthcare	29018224
Amicon Ultra 15 mL, 50 kDa MWCO 濃縮器	ニッケルカラムフラクション濃縮用	ミリポア	UFC905024
Amicon Ultra 4 mL, 50 kDa MWCO 濃縮器	S200 フラクション濃縮用	ミリポア	UFC805024
バクトペプトン	BD 診断	211677
バクト酵母抽出物	BD診断	288620
ガラス三角フラスコ、2L	Sigma-Aldrich	CLS44442L
卓上遠心分離機	Sorvall	Legend RT
ボトルトップフィルター	Nalgene	595-4520	膜を取り外し、ガラスビーズのろ過に使用
ブロモフェノールブルー	Sigma-Aldrich	114391
完全なサプリメント混合物ヒスチジンなし	サンライズサイエンス	1006-100
D-ガラクトース	Sigma-Aldrich	G0750
D-グルコース	Sigma-Aldrich	RDD016
エタノール、200プルーフ	Pharmco-Aaper	111000200
エチレンジアミン四酢酸 (EDTA)	Sigma-Aldrich	EDS-500G
ゲルタンク SDS-PAGE システム	バイオ・ラッド	1658004
ガラスビーズビート細胞攪乱細胞撹乱細胞	BioSpec	1107900
ガラスビーズ、0.5mm	BioSpec	11079105
グルタルアルデヒド	電子顕微鏡科学	16019
HiTrap IMAC FF カラム、1 mL	GE Healthcare	17-0921-02
酸	Sigma-Aldrich	258148
イミダゾール	Acros	12202	で 8% 溶液として送付
インスタントブルーゲル染色	Expedeon	ISB1L
JA-10 ローター	Beckman	369687
JA-14 ローター	Beckman	339247
微量遠心チューブ、1.5mL	Thermo Scientific	3451
微量遠心分離機、冷蔵	Fisher	13-100-676
ミニプロティアントリスグリシンゲル、4-20%	バイオ・ラッド	456-1096
Minipuls 3 蠕動ポンプ	ギルソン	F155005	ライセートをロードするために使用されます
イ	ナルコ	1758-1350
ニッケル (II) 硫酸塩 ヘキサハイドレート	Sigma-Aldrich	227676
温度制御付きオービタル振盪インキュベーター	ニューブランズウィック	C24
p423 GAL1 プラスミド ホウ酸トランスポーターインサート			著者から入手可能
フェニルメタンスルホニルフッ化物 (PMSF)	Acros	215740050
ポリカーボネート超遠心チューブ	ベックマン	355618
ポリプロピレンボトル、250mL	ベックマン	356011
ポリプロピレンボトル、500mL	ベックマン
Precision Plus Protein Kaleidoscope Standards	Bio-Rad	1610375
S. cerevisiae 発現株 DSY-5			著者から入手可能
塩化ナトリウム	Sigma-Aldrich	S7653
ドデシル硫酸ナトリウム	Sigma-Aldrich	L3771
水酸化ナトリウム	Sigma-Aldrich	S8045
スピンカラム 0.2 µmフィルター、	S200カラムに注入する前にタンパク質をろ過するための	ミリポア	UFC30GV0S
ファルコンチューブ、15mL	ラボデポ	TLD431696
滅菌ファルコンチューブ、50mL	ラボデポ	TLD431698
Superdex 200 10/300 GLカラム	GEヘルスケア	17-5175-01SEC	精製に使用
シリンジフィルター、5µア	フィニティーカラムをロードする前にライセートをろ過するための	m Pall	4650
トリスベース	Sigma-Aldrich	T1503
Type 70 Ti ローター	ベックマン	337922
超遠心分離機	ベックマン	L8-70M
アミノ酸を含まない YNB+窒素	サンライズ サイエンス	1501-500