マウス子牛に対する一貫したマッサージ様摂動の適用と、結果として生じる筋肉内圧変化のモニタリング

サマリー

ここでは、定義された機械的負荷をマウスの子牛に適用し、それに付着する筋肉内圧力変化を監視するためのプロトコルについて説明する。我々が開発した実験システムは、身体運動やマッサージの有益な効果の背後にあるメカニズムを調べるための有用性がある。

要約

マッサージは、一般的に痛みや炎症を緩和するために有益であると認識されています。以前の研究は、骨格筋にマッサージの抗炎症効果を報告しているが, 背後にある分子メカニズムが十分に理解されていません。.我々は最近、振幅の変化で筋肉内圧力波を発生させることができる局所周期的圧縮(LCC)を適用する簡単な装置を開発した。この装置を用いて、LCCは、その中でマクロファージの炎症反応を調節し、固定化誘発筋萎縮を緩和することを実証した。ここでは、LCCの最適化と適用に関するプロトコルを、マウス後肢の骨格筋の固定化誘発炎症および萎縮に対するマッサージ様介入として説明する。我々が開発したプロトコルは、身体運動やマッサージの有益な効果の根底にあるメカニズムを調査するのに役立ちます。我々の実験システムは、筋肉恒常症の機械的調節を解明するための分析アプローチのプロトタイプを提供するが、より包括的な研究のためにさらなる開発を行う必要がある。

概要

マッサージは、一般的に、痛みの軽減と競争力のある選手と非アスリートの間の物理的なパフォーマンスの改善の両方に有益であると認識されています^1,2.実際、以前の研究では、マッサージが局所的な^炎症3を抑制し、運動後の筋肉^損傷4、5からの回復を促すことが示されている。マッサージの有益な効果の根底にある分子メカニズムは、ほとんど知られていないまま.

マッサージに関する機械的調査の難しさの一つは、マッサージのような介入がテストされる実験技術の再現性に関する。以前の研究では、マッサージを模倣する実験的処置は、主に手のひらや指などの開業医の身体部分を使用した物理的介入の適用を伴う6、7、8。そのため、大きさ、周波数、持続時間、モードを正確に再現することが困難になります。

多くの装置は、定義された機械的負荷を標的組織に適用するために開発された。例えば、Zeng et al.はラットの後肢9に対する長さごとの機械的負荷のための空気システムを^{開発し、Wang}ららはラットとウサギの後肢にマッサージのような機械的負荷を適用できるメカトロニクスデバイスを開発しました。リアルタイムフィードバック^{コントロール10}.それらに比べて、私たちのローカル周期的な圧縮(LCC)システムははるかに簡単で、建設のためのはるかに少ないコストを要求します。それにもかかわらず、軽度の筋肉収縮時に発生する筋肉内圧変化を再現することができます。この装置を用いて、我々は、マッサージのような機械的介入が局所間質流体力学を調節し、固定化誘発筋萎^縮11を緩和することを実証した。

ここでは、エクササイズやマッサージの肯定的な効果の背後にある分子メカニズムを探求するのに役立つ可能性のあるデバイスとプロトコルの詳細を説明します。プロトコルの回路図は、補足図 1として示されます。

プロトコル

すべての動物実験は、国立障害者リハビリテーションセンターの施設動物ケア利用委員会の承認を得て実施されました。

1. マウスの両側後肢の固定化

注:オスC57BL/6マウスは、少なくとも7日間順化後11〜12週間の実験に使用した。

1. ペントバルビタールナトリウム(50mg/kg i.p.)を用いてマウスを適切に麻酔する。マウスが後肢のつま先のピンチに反応しないことを確認します。
   注:マウスの摂食活動に及ぼす影響を最小限に抑えるために、午前10時から午後7時の間に固定化の手順を行います。
2. 膝関節を拡張し、足首関節の足底屈曲を持つ上の位置に置かれたマウスの両側の後肢に外科テープを適用します。
3. L4-5脊椎レベルのトランクにアルミ線(材料の表を参照)を配置し、らせん層の各ターンの間に5mmのギャップを持つ後肢の周りの螺旋状構成でワイヤをコイルします(図1A)。ワイヤーをきつく巻きすぎないようにし、局所的な血流を妨げないようにしてください。
4. 配線からの脱出の可能性を最小限に抑えるために、手動でアルミニウムワイヤーの構成を調整することにより、90°の誘拐の位置で股関節を固定する。
5. マウスを元のケージに戻します。3時間後、彼らは麻酔から回復し、通常どおり食べ物や水へのアクセスを確認してください。
6. ハウス3-6固定化マウスは、固定化前と同様にケージ当たり6匹である。

2. マウス胃腸筋の筋肉内圧の測定

注:LCCと組み合わせた圧力モニタリング実験では、円筒単位(36g、66g、および200g)のいくつかの異なる重量を試験した。この測定は、筋肉の炎症および萎縮を分析する実験とは別に行われた(詳細についてはステップ3-5を参照)、すなわち、圧力測定を受けたマウスは組織学的分析に使用されなかった。

1. 圧力測定は、後肢配線およびLCCと比較して、より侵襲的な手順(例えば、皮膚切開および針挿入)を伴うので、3つの麻酔薬(メデトミジン0.75mg/kg、ミダゾラム4.0mg/kg、およびブトルオール5.0mg/kg)の混合物を使用する。i.p.)。マウスが後肢のつま先のピンチに反応しないことを確認します。
2. マウスを起こしやすい位置に置き、電気剃毛で脱毛し、70%のエタノールとクロルヘキシジン浸漬吸収性綿で皮膚表面を半殺菌した後、後子牛にメスで2mm切開を行います。
3. 皮膚表面に鈍器角(150°–170°)で胃腸筋に20G留置針を挿入します。
4. 針のプラスチックシースをガイドとして使用して、血圧テレメータのセンサー(材料の表を参照)を胃腸筋の中腹に置き、筋肉からシースを取り除きます。
5. 4-0ナイロン縫合糸で皮膚を縫合した後、マウスの子牛に円筒単位のいくつかの異なる重みを持つLCCを適用し(詳細についてはステップ3を参照)、生体信号分析のためのソフトウェアを使用して筋肉内圧を監視します(表を参照)材料)。
6. マウスを元のケージに戻します。3時間後、麻酔/鎮鎮薬から回復し、通常どおり食べ物と水にアクセスできるようにしてください。

3. マウス子牛の局所周期的圧縮(LCC)

1. 筋肉内圧測定と安楽死(子宮頸部脱臼)を除き、麻酔にはペントバルビタールナトリウム(50mg/kg i.p.)を使用してください。
2. 後肢配線からマウスを外し、膝関節を伸ばし、足首関節の足底を曲げて子牛が上向きに向くように、その位置に置きます。ステージ上でマウスの後肢を固定しないでください。
3. クッションパッドで覆われた円筒形の重量ユニット(図1B)を1日30分、7日間1Hzで垂直に動かして、ふくらはぎにLCCを適用します。
4. 毎日のLCCの各試合の後、マウスの後肢を再配線します。

4. 胃腸血症の免疫組織化学分析

1. 3つの麻酔薬(メデトミジン0.75mg/kg、ミダゾラム4.0mg/kg、ブタルフォルノール5.0mg/kg)の混合物の経皮注射による十分な麻酔/鎮血管下での子宮頸部脱臼によりマウスを安楽死させる。
2. 後子ふくらはぎ表面を脱毛した後、皮膚切開を行い、外科用はさみを用いて脛骨骨から分離して胃腸筋を解剖し、最適な切断温度化合物溶液で素早く凍結する。
3. クライオスタットを使用して、ガラススライド上の胃腸筋のクライオセクションサンプルを準備します。分析するまで-80°Cの冷凍庫にサンプルを保管します。
4. 冷凍庫から分析する胃腸凍結切除サンプルを取り出し、室温で空気乾燥して脱水します。
5. 液体ブロッカーペンを使用して、スライド上のすべてのクライオセクションを含む領域を描画します。円は、ソリューションがスライドから流れ出るのを防ぎます。
6. 湿った環境が水浸しの紙布で作成されるトレイにスライドを配置することにより、サンプルの乾燥を避けてください。
7. 100 μLのブロッキングバッファー(0.25%カゼイン、キャリアタンパク質、および0.015Mアジドを含むリン酸緩衝生理食塩水(PBS))を室温で30分間塗布します。
8. PBS-T(0.1%ポリオキシエチレンソルビタン単価を含むPBS)で5分間インキュベーションしてスライドを2回すすいでください。
9. 各サンプルにPBSで希釈した一次抗体を100μL塗布し、トレイを蓋で覆い、室温で一晩インキュベートします。
10. PBS-Tで3回洗います(各洗浄につき5分)。
11. 各試料にPBSで希釈した二次抗体を100μLに塗布し、室温で1時間インキュベートします。
    注:抗ラミニン染色には、Alexa Fluor 568-共役二次抗体を使用してください。抗F4/80、抗MCP-1、抗TNF-αの場合は、Alexa Fluor 568-または488結合二次抗体を使用します。
12. PBS-Tで3回洗います(各洗浄につき5分)。
13. 各サンプルにPBS-Tで希釈したDAPI溶液を100μLで塗布し、室温で3分間インキュベートします。
14. PBS-Tで3回洗う(各5分)。
15. 取り付け媒体でサンプルを取り付け、カバースリップで覆います。

5. 胃腸血症のヒストモルモメトリック分析

1. サンプルスライドを蛍光顕微鏡(材料の表を参照)に配置し、適切なフィルタ(DAPI-B、励起のための360/40 nm、発光のための460/50 nm)で20×目的を使用してサンプルを表示します。GFP-B、励起のための470/40 nmおよび放出のための535/50 nm;FRITC、励起のための540/25 nmおよび放出のための605/55 nm。
2. 画像解析ソフトウェア(材料表参照)を使用して、各筋線維の断面積(CSA)を測定し、F4/80-、MCP-1-、およびTNF-α陽性細胞の数をカウントします。
   注:抗ラミニン-2免疫染色で可視化された基板膜の内部マージンをトレースすることにより、各筋線維のCSAを決定します。

結果

我々の以前の^観察12と一致して、胃炎筋線維のCSAは後肢固定化によって有意に減少した(図2A,B)。さらに、我々の免疫蛍光染色分析は、MCP-1およびTNF-αを発現する細胞が、いずれも炎症^{過程13、14}を調節する上で重要な役割を果たしていることを明らかにし、胃腸筋において有意に増加した。固定化された後肢の組織(MCP-1:図2C,F,H;TNF-α:図 2D,G,I)。F4/80で陽性染色された細胞の増加と共に、マクロファージのマーカー(図2C-E,H,I)は、後肢の固定化が局所炎症反応を伴うふくらはぎ...

ディスカッション

我々は、抗炎症作用を有するマッサージのような機械的刺激を適用する方法を説明した。当社のシステムは、以前に報告されたものと比較した場合でも、次の利点があります。第1に、以前の研究^では、2を加える機械的力を定量的に定義したり、体表面での測定に基づいてその大きさを定義したりはしなかったが、^組織10の内部には定義されなかった。対照的に、血圧テレメータを用いて筋肉内血圧を測定した。第二に、装置のシンプルな構造(図1B)により、比較的低コストで高い一貫性と再現性を持つシステムを構築することができました(図3A)。第三に、我々の介入(LCC)は、筋肉内圧変化(50 mmHg¹⁵⁾に関する身体活動(軽度の筋肉収縮)に関する。我々のアプローチは、身体的不活動のデメリットを軽減する可能な治療/予防手順としてマッサージのような介入のための科学的基礎を提供します^16...

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
アルミワイヤー	DAISO JAPAN	B028	ワイヤーによる制限から逃れるためにアルミワイヤーを使用
血圧テレメーター	ミラー	SPR-671	筋肉内圧を測定するために血圧テレメーターを使用しています。
DAPI	サーモフィッシャーサイエンティフィック	D1306	DAPIは、蛍光顕微鏡のDNA染色に一般的に使用される蛍光プローブです。
ヤギ抗ウサギ Alexa Fluor 488 (希釈比, 1:500)	Invitrogen	A11034	免疫組織化学染色用抗体.
ヤギ抗ラット Alexa Fluor 568 (希釈比, 1:500))	Invitrogen	A11077	免疫組織化学染色用抗体。
ImageJ	NIH	N/A
LabChart8	ADInstrumens		生体シグナルを取得するための解析ソフトウェア。
Prolong gold	サーモフィッシャーサイエンティフィック	P36930	Prolong goldは、染色されたサンプルを埋込むためのものです。
Protein Block Serum-Free	Dako	X090930-2	免疫組織化学処置における非特異的バックグラウンド染色のブロッキングに。
ラット モノクローナル anti-laminin-2 抗体 (希釈比, 1:1000)	Sigma Aldrich	L0663	免疫組織化学染色用抗体.
ラット モノクローナル 抗 F4/80 抗体 (希釈比, 1:500)	Abcam	ab6640	免疫組織化学染色用抗体.
Rabbit polyclonal anti-MCP-1 antibody (Dilution ratio, 1:1000)	Abcam	ab25124	免疫組織化学染色用抗体。
Rabbit polyclonal anti-TNF-α 抗体 (希釈比, 1:1000)	Abcam	ab66579	抗体 免疫組織化学染色用.
サージカルテープ	3M Japan	1530EP-0	サージカルテープは、関節の動きを制限するために使用されます。