方法論記事

神経系発達中の軸の成長と挙動を解析する3Dコラーゲンベースのヒドロゲルの生成

DOI：

10.3791/59481

⸱

2019年6月25日

 , 
1Molecular and Cellular Neurobiotechnology, Institute for Bioengineering of Catalonia (IBEC), The Barcelona Institute of Science and Technology (BIST), Parc Científic de Barcelona, 2Department of Cell Biology, Physiology, and Immunology, Universitat de Barcelona, 3Center for Networked Biomedical Research on Neurodegenerative Diseases (CIBERNED), 4Institute of Neuroscience, University of Barcelona

この記事について

サマリー

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ここでは、3Dマトリックスで軸を成長させる行動を分析し、その自然な発達を模倣する方法を提供する。

要約

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

このプロトコルは、自然なタイプIコラーゲンを使用して、軸生成長を監視および分析するための3次元(3D)ヒドロゲルを生成します。このプロトコルは、ラット尾腱由来I型コラーゲンによって形成された3Dヒドロゲル内の胚または早期産後げっ歯類の脳の小片を特定の多孔性を持つ培養に集中する。組織片はヒドロゲル内で培養され、特定の脳断片または遺伝子組み換え細胞凝集体に直面して、多孔質マトリックス内の勾配を作成するのに適した分子を生成し、分泌する。このプロトコルの手順はシンプルで再現可能ですが、開発中に慎重に検討する重要な手順が含まれています。さらに、成長軸子の挙動は、免疫細胞化学的方法による固定後の位相コントラスト顕微鏡またはモノ/マルチフォトン蛍光顕微鏡を使用して直接監視および分析することができる。

概要

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

軸次成長コーンで終わる神経軸子は、適切な標的に到達するために、特定の経路上の胚の細胞外マトリックス(ECM)を通して長い距離を移動する。成長コーンは軸の遠位部分であり、細胞1、2の物理的および分子環境を感知することに特化している。分子の観点から、成長コーンは少なくとも4つの異なる分子メカニズムによって導かれる:接触引力、化学的魅力、接触反発、および異なる軸方向ガイダンスキュー3、4によって引き起こされる化学脈動,5,6.接触媒介プロセスは、マイクロパターン基板上の2次元(2D)培養物(例えば、分子を含むストライプ7、8またはスポット9)で部分的に監視することができる。しかし、軸ゴンは、環境4、5、10のガイドポスト細胞からいくつかの魅力的で反発性の分子を感知することによって、非拡散的な方法で標的にナビゲートすることができます。ここでは、分泌分子が軸子の発達に化学的または化学的な効果を誘導するかどうかを確認するための3-D培養の簡単な方法について説明する。

軸次誘導キューの効果を決定することを目的とした最も初期の研究は、生体内条件11,12でシミュレートする勾配を生成するために3次元(3-D)行列に植生培養物を使用した。このアプローチは、生体内実験と共に、ネトリン、スリット、セマフォリン、およびエフリン4、5、6の4つの主要な家族の同定を可能にした。これらの分子キューおよび他の因子13は、成長する軸ソンによって統合され、接着複合体のダイナミクスを引き起こし、細胞骨格14、15、16を介して機械的力を伝達する。軸次ナビゲーションのための3D培養物中の分子勾配を生成するために、先駆的な研究者は、プラズマ血栓基板17を使用し、これはまた、組織性スライス製剤18に使用された。しかし、1958年に、3-Dコラーゲンヒドロゲルを生成する新しいプロトコルは、マキシモ・イズ・デバイス19、培養プラットフォーム、顕微鏡観察20に適したいくつかの研究で使用される研究のために報告された。別の先駆的研究は、創傷治癒プロセス21における筋線維芽細胞の分化を研究するためのヒト線維芽細胞を埋め込むためのツールとしてコラーゲンゲルを報告した。並行して、ラムズデンとデイヴィスはウシ真皮からコラーゲンを適用し、感覚神経線維22の誘導に対する神経成長因子(NGF)のプテプティブ効果を解析した。異なる企業や研究室による新しい培養プラットフォーム(例えば、マルチウェルプレート)の開発に伴い、コラーゲン培養はこれらの新しいデバイス6、23、24、25に適応しました。 、26.並行して、エンゲルブレス-ホルム-スウォーム腫瘍細胞株に由来するECM材料の抽出物は、これらの研究27を拡大するために市販された。

最近では、3Dヒドロゲル(例えば、コラーゲン、フィブリンなど)を用いた軸次ガイダンスにおいて、置き方の役割を有する分子勾配を生成するいくつかのプロトコルが開発されている。28.あるいは、候補分子は、多孔質マトリックス中の異なる濃度(例えば、NGF29)で固定化するか、分子を分泌する3-Dヒドロゲル細胞凝集体の小さな領域で培養することによって生成され、放射状を生成することができる。グラデーション4,23,24,25,26.最後の可能性は、このプロトコルで説明されます。

ここで提示される手順は、胚マウス脳の3-ヒドロゲル培養における軸生成長の分析に基づく、簡単で迅速かつ高い再現性の方法である。他の方法と比較して、プロトコルは、非訓練を受けた研究者に適しており、短いトレーニング(1-2週間)後に完全に開発することができます。このプロトコルでは、まず成ラットの尾からコラーゲンを分離し、遺伝子改変された細胞凝集体が胚性神経組織の前で培養される3Dマトリックスをさらに生成する。これらの細胞凝集体は、成長する軸子に対する応答を引き出す候補分子の放射状化学勾配を形成する。最後に、成長軸石に対する分子の効果の評価は、相コントラスト顕微鏡または、あるいは、あるいは、免疫細胞化学的方法を用いて容易に行うことができる。

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プロトコル

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

すべての動物実験は、バルセロナ大学の動物実験倫理委員会(CEEA)のガイドラインとプロトコルの下で行われ、この研究でげっ歯類を使用するためのプロトコルは、CEEAによってレビューされ、承認されました。バルセロナ大学(CEEAの承認#276/16と141/15)。

ラットテールコラーゲンの精製

  1. 倫理的なガイドラインに従って動物を犠牲にした後、成虫スプラーグドーリーラットの尾(8-9週間齢)を収集し、95%のエタノールですすいでください。氷(4°C)の上に2-4尾を置き、プロセス中に氷で覆われたままにしておきます。
  2. 尾腱を得るために、ヘモスタットを使用して尾の最も尾骨椎で尾を固定し、最初から約5〜7ミリメートルの位置に第二のヘモスタットで尾を圧縮します。両方のヘモスタットで鋭くねじって尻尾を壊します。これを行うには、椎骨が壊れるまで数回折り畳み/展開します。
  3. 椎骨を止め剤でゆっくりと引っ張り、腱を鞘から取り外します。この瞬間、小さなはさみで腱を切ります。これらの腱片を無菌の100mmペトリ皿に氷の上に保管してください。
  4. 腱が完全に抽出されるまで、尾の残りの部分のためにクランプとスライドを繰り返します。
  5. 取得したすべての尾について、手順 1.2~1.4 を繰り返します。
  6. 顕微鏡で腱を観察する。小さなはさみで切断し、腱の純度を向上させるためにストレート細かい鉗子で保持し、超純水で腱を3回すすいで、血管を廃棄します。
  7. 湿った腱の3-4グラムを収集します。200-250 mLガラス円錐フラスコで4°Cで3%氷河酢酸の150mLの150mLで腱を溶かし、穏やかな撹拌の下で。
  8. 1時間20,000 x gの遠心分離機。並行して、長さ約10〜15cmの部分を切断して透析チューブ膜を調製し、1mMエチレンディアミンテトラセチン酸(EDTA)を含む超純水で15分間沸騰させます。その後、透析膜を超純水で十分に洗い流します。
  9. 遠心分離後、デカンテーションにより透析チューブ膜に上清を採取する。ペレットには酸性不溶性物質(非コラーゲンタンパク質)が含まれており、上清には可溶性コラーゲンタンパク質が含まれています。
  10. 無菌0.1x最小必須ミディアムイーグル(MEM)の2Lに対して上清を透析し、2-5 LガラスビーカーでpH 4.0。透析を3日間。使用する前に、少なくとも1日2回、変更ごとにpHをチェックして0.1x MEM溶液を変更してください。pHが基本に変わった場合は、pHが4.0になるまで0.1M酢酸を数滴で修正します。
  11. 透析後、透析コラーゲン溶液に抗生物質(ペニシリン/ストレプトマイシン(ペンストレプ菌)の1.5mL)を加えます。コラーゲンストック溶液の5mLアリコットを作り、4°Cで保存します。
    注:この点から、すべての取り扱い手順は、層流フード内の無菌条件下で行う必要があります。
  12. 次のステップに続いて調製したコラーゲンストック溶液のゲル化試験を進めます。
    1. ストックコラーゲンは通常濃縮されすぎるので、0.1x MEM、pH 4.0でストックを希釈することにより、3つの作動希釈(75%、50%、および25%コラーゲン溶液)を調記します。各作業希釈に推奨される最終容積は5 mLです。各条件で、タンパク質の色分計アッセイを使用してタンパク質濃度を確認します。
    2. いくつかの空の1.5 mL円錐遠心管チューブ(各作業希釈のための1つ)、10x MEMチューブ、7.5%重炭酸ナトリウム溶液と氷上のコラーゲンの異なる働き物希釈を配置します。これらが冷却されるまで待ちます。
    3. 寒い(4 °C)遠心管に10x MEMの40-50 μLを加える。次に、重炭酸ナトリウム溶液の7-8 μLと穏やかに混ぜます。
    4. このチューブに異なるコラーゲン希釈剤の310-330 μLを追加し、任意の気泡形成を避けるピペットと穏やかに混合します。コラーゲン-MEM-重炭酸ナトリウム混合物を氷(4°C)に少なくとも5分間保管してください。
    5. 35mmペトリ皿に混合物のピペット10-25 μL。
    6. ヒドロゲルのゲル化(±15~20分)が観察されるまで、37°Cに設定したCO2インキュベーターにペトリ皿を置きます。
    7. 異なるペトリ皿の残りのコラーゲン希釈については、手順1.12.3-1.12.6を繰り返します。
    8. 最良の結果をレンダリングするコラーゲン作業希釈を選択します。
      注:最高のゲル化ヒドロゲルは、均一な半透明のテクスチャ、灰色を持っている必要があり、塊状またはストリンシーであってはならない。私たちの経験では、3:1(コラーゲン:0.1x MEM)の希釈は、最良の実験結果を生成します。

2. 細胞の調製(COS1)遺伝子組み換え3-Dコラーゲンヒドロゲル中の候補分子を分泌するために遺伝子組み換え

  1. プレート 2 x 106 COS1 細胞を 35 mm ペトリ皿に入れ、10% (vol/vol) 熱不活性化胎児ウシ血清、0.5%(wt/vol)グルタミンおよび1%(wt/vol)ペン/ストレップを含むD-MEMの100mLで構成された完全培養培地でインキュベート一晩で70-80%の合流に達するために、インキュベーター。トランスフェクション手順ごとにペトリ皿を1つ準備します。
  2. 翌日、製造業者の指示に従ってリポソームベースのトランスフェクション法を用いて候補分子(Netrin-1またはSema3E)をコードするDNAを用いてCOS1細胞をトランスフェクトする。
    1. これを行うには、250 μL の無血清培地とDNA(条件当たり1-2 μg)を1.5mL遠心管(DNAチューブ)に混合し、混合します。室温(RT)で5分間インキュベートし、無血清培地の240μLとリポソームトランスフェクション試薬の10μLを加えて第2管(リポソームチューブ)を調製する。RTで5分間インキュベートします。
    2. インキュベーション後、リポソームチューブにDNAチューブの含有量を加え、穏やかに混合する。RTで15分間インキュベートし、培養細胞上の培地を無血清培地の1.5mLで置き換え、DNAリポソーム混合物をペトリ皿にゆっくりと滴下します。CO2細胞培養インキュベーターで3時間インキュベートする。
  3. トランスフェクションインキュベーションの3時間後、培地を完全な培養培地に置き換え、インキュベーターで一晩インキュベートする。
  4. 翌日、0.1Mダルベッコのリン酸緩衝生理食生(D-PBS)で細胞をすすいで、トリプシン-EDTA(CO2インキュベーターで5〜15分間1皿あたり800μL)で培養物を処理し、完全培養培地の15mLで剥離した細胞を集める。
  5. 細胞を4°Cで130 x gで5分間遠心分離します。遠心分離後、培地を取り出し、COS1細胞を含むペレットを氷上に保存します。
  6. 手順1.12.3-1.12.6を繰り返し、コラーゲン作業混合物を調製します。
  7. トランスフェクト細胞のペレットにコラーゲン混合物の100-150 μLを加え、この混合物の45-50 μLを上下にパイプで穏やかに混合し、ペトリ皿(直径35mm)に広げ、長さ約1〜1.5cmのコラーゲン細胞の均一なバンドを形成します。ゲル化(±15-20分)が観察されるまで、37°C(5%CO2)で皿をインキュベーターに入れます。
  8. 第2の培養皿に対照細胞(模擬トランスフェクション)を含む第2のストリップを準備し、インキュベーター(±15〜20分)にプレートし、ゲル化が完了すると、ゲル化した(37°C)COS1完全培養培地をゲル化した各皿に3-4mLを加えるコラーゲン細胞は剥離し、CO2細胞培養インキュベーターに保持します。その後、コラーゲン細胞ストリップを切断し、細かいメスまたは組織チョッパーを使用して小さな正方形の部分(長さ400〜500μm)を生成します。
  9. 同じトランスフェクション条件から3-3.5 mLのニューロン培養培養剤(NCM)を含むペトリ皿にすべてのセクションを移し、解剖顕微鏡下で断片の品質を確認します。繰り返しますが、CO2細胞培養インキュベーターに保管してください。
    注:神経培養培地は、1-5%(vol/vol)熱不活性化馬血清、2mMグルタミン、0.5%(wt/vol)グルコース、1%(wt/vol)ペンストレップ溶液および0.044%(wt/vol)NaHCO3を含有する神経基剤培地から成り立っている。pH が 7.2 ~ 7.3 の間にあることを確認します。

3. 培養用胚性移植の生成

  1. 定期的な滅菌ガイドラインに従ってオートクレーブによって外科用具(はさみ、メスの刃のハンドル、まっすぐおよび曲げられた鉗子)を殺菌する。並行して、ハンクのバランス塩溶液-グルコースバッファーの500 mLとHBSS-Gの10 mLを含む4-5ペトリ皿(直径100mm)を準備します。これらのプレートを氷(4°C)の上に置きます。
  2. 承認された倫理的手順に従って、無菌領域の外で妊娠中の雌ラット(胚性16.5)を犠牲にする。腹腔からはさみで胚の角を切り、冷たいHBSS-Gを含む大きなペトリ皿に入れます。
  3. 皿を層流フードに入れ、まっすぐな鉗子で胚を抽出する。冷たいHBSS-Gを含む新しい皿にそれらを置きます。次に、小さな鉗子を使用して胚の皮膚を取り除き、湾曲した直進鉗子を使用して慎重に脳を解剖する。冷たいHBSS-Gを含む皿に入れます。
  4. 解剖顕微鏡の下で、メスまたは細かいはさみで両方の半球を分離し、細かい鉗子で脳片からジエンセファロン、髄膜および血管を除去するために、中間線に沿って半分に脳を切断します。
  5. 残りの胚と共に手順 3.3-3.4 を繰り返します。組織の質を維持するために2時間以上解剖を遅らせないで下さい。
  6. 100%エタノール(特にポリテトラフルオロエチレン(PTFE)切断プレートとカミソリブレード)で組織チョッパーのすべての部分をきれいにします。ティッシュチョッパーをUV照明の下で層流束フードに15分間保管してください。
  7. 各組織片(例えば、海馬を含む皮質)を組織チョッパーの切断板に移す。海馬の場合は、カミソリの刃に垂直に配置し、厚さ450〜500μmの組織切片を得る。
  8. 完全なNCMの3-4 mLといくつかの35ミリメートルペトリ皿を準備し、ティッシュチョッパープレートからペトリ皿にティッシュピースを転送します。関心のある地域が解剖されるにつれて、多くの料理が必要になる場合があります。
  9. 細かいタングステン針を使用して完全なNCMで組織解剖を終了します。解剖顕微鏡下で得られたスライスの品質を確認してください。層が暗視野光学で明確に識別できることを確認し、タングステン針で対象領域(例えば海馬のCA領域)を解剖する。破損したスライスを破棄します。海馬の移植片をCO2インキュベーターで完全なNCM培地に保管してください。

4. コラーゲンヒドロゲルにおける3D共培養物の調製

  1. 層流フードにいくつかの滅菌4ウェル培養プレートを配置し、手順1.12.2-1.12.6で前述のようにコラーゲン作業混合物を調製します。
  2. ヒドロゲル混合物の15〜20 μLをウェルの底部に入れ、円形コラーゲンベースを作製する。残りの井戸に対してこの手順を繰り返します。ヒドロゲルベースからの過度の液体蒸発を避けるために、同時に5枚以上のプレートを準備しないでください。
  3. 完全なゲル化(±15-20分)が観察されるまでインキュベーターで皿を保ち、ゲル化が完了したときにのみインキュベーターからプレートを取り出します。ゲル化したコラーゲンの品質を確認してください。
  4. 小さなCOS1セル凝集体をピペットで転送します。ヒドロゲルベースの上に置き、1つの植生サイズで凝集する細胞の部分に近いピペットで同じベースにティッシュピースを置きます。
  5. ステップ1.12.2-1.12.6のように氷の上に新しい働くコラーゲン混合物を準備します。
  6. この新しい混合物の15-20 μLを穏やかにピペットし、植物および細胞凝集体をカバーする。サンドイッチ状のヒドロゲル培養が観察されます。この瞬間、微細なタングステン針で植生を再配向し(COS1細胞凝集体に触れないでください!)、±500-600 μmで細胞凝集体に直面します。
  7. ゲル化が観察されるまでプレートをインキュベーターに戻し(±10-15分)、完全なNCMの0.5 mLを2%B27サプリメントで補充し、インキュベーターで36~48時間培養を保ちます(37°C、5%CO2)。

5. 移植細胞凝集共培養物の固定化と免疫細胞化学的手順

  1. 36-48時間のインキュベーション後、培地を取り出し、0.1Mリン酸緩衝生理食生(PBS)、pH 7.3ですすいですすいだ。その後、0.1Mリン酸バッファー(PB)、pH 7.3、4°Cで4%パラホルムアルデヒドで1時間培養物を固定する。
  2. 固定性を取り除き、0.1 M PB、pH 7.3で培養物を3~4回(各10~15分)軽くすすいで下します。
  3. ヘラまたは鉗子で井戸の底からヒドロゲルサンドイッチを取り外します。細かいペイントブラシでコラーゲンブロックを0.5%の非イオン洗剤で0.1M PBSを含む6ウェル培養プレートに移します。
  4. ブロッキング溶液中の自由浮遊ヒドロゲル(10%血清、0.5%非イオン界面活性剤、0.1M PBSで0.2%ゼラチン)を穏やかな攪拌でRTで2-3時間インキュベートします。
  5. 0.5%の非イオン界面活性剤を含む0.1 M PBSで3回(各10〜15分)すすいでいます。
  6. 5%の血清、0.5%の非イオン界面活性剤、0.2%ゼラチン、および0.02%のアジドナトリウムを含むPBSで希釈した一次抗体を含むインキュベートする。シェーカー上の4°Cで36-48hの一次抗体でインキュベートします。
    注:通常、クラスIIIβ-チューブリン(α-TUJ-1)に対する抗体(希釈1:2,000)は、3-ヒドロゲル培養における軸上成長を定義するために使用される。
  7. インキュベーション後、ステップ5.5のようにすすいで下す。
  8. 5%の血清、0.5%の非イオン界面活性剤、および0.2%ゼラチンで希釈したシェーカー上でRT(または4°Cで6-7h)の二次抗体でインキュベートします。この実験では、馬の抗マウスビオチン化抗体(希釈1:200)を用いた。
  9. 5.5のように文化をすすいで。
  10. 5%の血清、0.5%の非イオン界面活性剤、および0.2%のゼラチンを含むPBSで1:100希釈したアビジンビオチン複合体(ABC)溶液で4°Cで2日間培養する。あるいは、同じバッファー内にワサビペオキシドペルオキシダーゼ(HRP)タグ付きストレプトアビジン(希釈1:300-400)を使用する。
  11. 5.5に記載されている培養物をすすいでくる。
  12. 0.1 M Tris-HCl バッファーで培養物を数回すすいで、pH 7.6 を 1 時間使用します。
  13. 0.1 Mトリス-HCl、pH 7.6で3,3'-ダイアミノベンジジンテトラ塩酸塩(DAB)溶液の0.03%で培養をインキュベートします。
  14. 1%H2 O2の5-8 μLを追加し、4-10倍の目的を使用して顕微鏡下でDABの開発を監視し、10-15分待ちます。
  15. 0.1 M Tris-HCl バッファー pH 7.6 で DAB 溶液を除去して反応を停止します。
  16. PBSの培養物を30分間すすいで(いくつかの変更)。
  17. 水性ベースの取り付け媒体を使用して、ヒドロゲルをガラススライドに取り付けます。
  18. Sholl分析プラグインを使用して、またはImageJソフトウェア30用NeuriteJプラグインを使用して、ヒドロゲル内の軸ゴンの長さと分布を分析します。

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結果

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ここでは、胚性マウス神経系の3Dヒドロゲルコラーゲン培養における軸上成長を研究するために広くアクセス可能な方法論を提示する。この目的のために、成体ラットの尾からコラーゲンを単離し、ネトリン-1またはSema3Eを発現する遺伝子組み換え細胞凝集体を培養した3Dマトリックスを生成し、胚性神経組織(例えば、海馬のCA領域)と対峙した。これらの細胞凝集体は、コラーゲンマトリックス内の候補分子の放射状に分布する勾配を形成した。最後に、異なる分子に対する神経応答を評価するために、免疫サイト化学的方法(例えば、α-TUJ-1)を用いて培養物を標識し、簡潔で簡単な定量法を適用することにより、プタギュレーションの効果を決定するのに十分なデータを得た。軸上の行動の候補。

我々の実験では、海馬軸がNetrin-1に直面したとき、これらの軸がNetrin-1の供給源に向かって優先的に成長し、Netrin-1がこれらの軸子の化学魅力的な分子として作用することを示す(図1B)。対照的に、Sema3E分泌細胞と対峙した...

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ディスカッション

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

アクソンの開発の成長は主に侵襲的であり、ECMの劣化および改造を含む。ここで提示される手順を使用して、研究者は、軸質(または細胞)が生体内で行うように遺伝子組み換え細胞によって分泌される化学勾配に応答することができる天然タイプIコラーゲンによって形成された均質な3Dマトリックスを得ることができます。魅力的または阻害性の手がかり(タンパク質、脂質など)の勾配に対する異なる軸応答は、特定の対照(模擬トランスフェクト細胞)と容易に比較することができる。利点として、腱は分離しやすく、実際に動物実験の残骸となりうることを言及する必要があります。また、腱は、皮膚や肺31などの他の組織と比較して濃縮された高いコラーゲンである。

ここで説明する方法は簡単に実行できますが、プロセス中に特別な注意が必要な手順がいくつかあります。コラーゲン抽出に関しては、コラーゲンの純度とゲル化の質を向上させるために、尾腱から不要な血管や皮膚の破片を除去することが不可欠です。また、無菌層流フードの下でいくつかのステップを実行し、使用前に手術用具を殺菌することにより、滅菌条...

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開示事項

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

著者は何も開示していない。

謝辞

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

著者は、編集上のアドバイスのためのトム・ヨハンナンと技術的な援助のためのM.セグラ・フェリウに感謝します。この研究は、CERCAプログラムとイノベーション学科、大学、およびカタルーニャ総局の企業の大学と研究委員会(SGR2017-648)によって資金提供されました。この研究は、BFU2015-67777-RとRTI2018-099773-B-100、スペインプリオンネットワーク(プリオネットスペインAGL2017-90665-REDT)、および研究所カルロIII(CIBERN)を通じてスペインの研究イノベーション大学(MEICO)によって資金提供されました。PRY-2018-2)。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
Material
3,3′-ジアミノベンジジン四塩酸塩10 mg錠剤(DAB)SigmaD5905
成体Sprague-Dawleyラット(8〜9週齢) Criffa-Credo, Lyon, France
アビジン-ビオチン-ペルオキシダーゼ複合体 (ABC)Vector LabsPK-4000
B27 serum-free supplement 50x Invitrogen17504-044
ビシンコニン酸(BCA)タンパク質アッセイキットPierce23225
cDNA プラスミドベクター
COS1細胞株ATTCCRL-1570
D-(+)-グルコースSigma16325
D-(+)-グルコース (45% 水溶液) 完全神経基礎培地SigmaG8769
D-MEM(Dulbecco's Modified Eagle Medium 1x ) for COS1 culture mediumInvitrogen41966-029
Dulbecco'培養用 S リン酸緩衝生理食塩水 10x (Ca2+ および Mg2++) (D-PBS) 培養用Invitrogen14200
Ethanol merck108543
エチレンジアミン四酢酸二水和物二ナトリウム塩 (EDTA)SigmaE5134
蛍光封入剤 (Fluoromount-G など)Electron Microscopy Sciences (EMS)17984-25
ゼラチン粉末 SigmaG1890
氷酢酸 (Panreac, カタログ番号 211008)Panreac211008
Hank'の平衡塩溶液 Invitrogen24020083
熱不活化ウシ胎児血清 Invitrogen10108-165
熱不活化ウマ血清 Invitrogen26050-088
過酸化水素 (H2O2、32 to 33% in water)Sigma316989
L-グルタミン 200 mM 溶液 (100x) for complete Neurobasal and COS1 mediumInvitrogen25030-024
Lipofectamine 2000 ReagentInvitrogen11668-019
マウス妊娠女性(胚日12.5〜16.5;E12.5-16.5) Criffa-Credo, Lyon, France
Modified Minimum Essential Medium Eagle (MEM)Invitrogen11012-044
Monoclonal antibody against class III &β;-tubulin (clone TUJ-1)Biolegend801201
N-2 supplement 100x Invitrogen17502-048
神経基礎培地 Invitrogen21103049
パラホルムアルデヒドメルク1,040,051,000
ペニシリン/ストレプトマイシン溶液 100x Invitrogen15140-22
免疫細胞化学用リン酸緩衝生理食塩水10x(PBS)InvitrogenAM9624
二次抗体:ビオチン化ウマ抗マウス Vector LabsBA-2000
無血清培地 (Opti-MEM)Invitrogen11058-021
アジ化ナトリウム パンレアック162712
重炭酸ナトリウム溶液7.5% Invitrogen25080-094
無菌培養グレード H2O シグマW3500
トライトン X-100 SigmaX100
Trizmaベース SigmaT1503
Trypsin-EDTA (Trypsin (0.05% (wt/vol) with EDTA (1x)Invitrogen25300-054
Equipment
剖用の大1本と1本の小さな湾曲したはさみ ファインツール機器または類似の
1.5 mLコニカル遠心チューブ エッペンドルフまたは類似の
15 mLコニカル遠心チューブ コーニングまたは類似の
2止血剤  ファインツール機器または類似の
ストレート解剖ハサミ2ファインツール機器または同様の
遠心分離用200mL遠心分離チューブNalgeneまたは同様の
200mL滅菌ガラス円錐フラスコ2L
ガラスビーカー4
ウェルおよび6ウェル培養プレート Nunc176740および140675
自動ピペットポンプと使い捨ての10 mLおよび25 mLフィルター入り滅菌プラスチックピペット。ギルソン、ブランド、エッペンドルフまたは類似のもの 
自動ピペット、滅菌フィルターチップおよび現在の滅菌チップ Gilson、Eppendorf、または同様の
角度固定ローター付きベンチトップ微量遠心分離機 エッペンドルフ、ベックマン・コールター、または同様の
ベンチトップ冷蔵遠心分離機、スイングバケットローター付き(1.5、15、50 mLチューブアダプター付き)エッペンドルフ、ベックマン・コールター、または同様の
細胞培養インキュベーター、37°C;C、5% CO2および95%空気
透析チューブセルロースメンブレンSigmaD9402
析チューブクロージャー SigmaZ37101-7
ディスポーザブルガラスピペット
暗視野光学系解剖顕微鏡 オリンパスSZ51または同等品 
高速冷蔵ベックマン・コールター遠心分離機または角度固定ローター
層流フード
大100mm、60mm、小35mm Ø細胞培養皿 ヌンク 150679、150288、150318、それぞれ
マグネティックスターラーとマグネティックスピンバーIKAまたは類似の
McIlwain組織チョッパーMickle Laboratory Engineering
1対の細いまっすぐな鉗子と1対の湾曲した鉗子 ファインツール、器具、または類似の
もの、ティッシュチョッパー
メス(番号15および11)、
コラーゲンとティッシュピースを移すための2組の細かいヘラファインツール、器具、または同様の
用 解小型個 透付き同等品 用のカミソリの刃、、もの

参考文献

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ramón y Cajal, S. Les nouvelles idées sur la structure du système nerveux chez l'homme et chez les vertébrés. , (1894).
  2. Ramón y Cajal, S. Nuevo concepto de la histología de los centros nerviosos. , (1893).
  3. Marin, O., Valiente, M., Ge, X., Tsai, L. H. Guiding neuronal cell migrations. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 2 (2), 001834(2010).
  4. Tessier-Lavigne, M., Goodman, C. S. The molecular biology of axon guidance. Science. 274 (5290), 1123-1133 (1996).
  5. Dickson, B. J. Molecular mechanisms of axon guidance. Science. 298 (5600), 1959-1964 (2002).
  6. Kolodkin, A. L., Tessier-Lavigne, M. Mechanisms and molecules of neuronal wiring: a primer. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 3 (6), 001727(2011).
  7. Rosentreter, S. M., et al. Response of retinal ganglion cell axons to striped linear gradients of repellent guidance molecules. Journal of Neurobiology. 37 (4), 541-562 (1998).
  8. Knoll, B., Weinl, C., Nordheim, A., Bonhoeffer, F. Stripe assay to examine axonal guidance and cell migration. Nature Protocols. 2 (5), 1216-1224 (2007).
  9. von Philipsborn, A. C., et al. Growth cone navigation in substrate-bound ephrin gradients. Development. 133 (13), 2487-2495 (2006).
  10. Chen, H., He, Z., Tessier-Lavigne, M. Axon guidance mechanisms: semaphorins as simultaneous repellents and anti-repellents. Nature Neuroscience. 1 (6), 436-439 (1998).
  11. Jessell, T. M., Sanes, J. R. Development. The decade of the developing brain. Current Opinion in Neurobiology. 10 (5), 599-611 (2000).
  12. Serafini, T., et al. The netrins define a family of axon outgrowth-promoting proteins homologous to C. elegans UNC-6. Cell. 78 (3), 409-424 (1994).
  13. Charron, F., Tessier-Lavigne, M. Novel brain wiring functions for classical morphogens: a role as graded positional cues in axon guidance. Development. 132 (10), 2251-2262 (2005).
  14. Fournier, M. F., Sauser, R., Ambrosi, D., Meister, J. J., Verkhovsky, A. B. Force transmission in migrating cells. Journal of Cell Biology. 188 (2), 287-297 (2010).
  15. Dent, E. W., Gertler, F. B. Cytoskeletal dynamics and transport in growth cone motility and axon guidance. Neuron. 40 (2), 209-227 (2003).
  16. Lowery, L. A., Van Vactor, D. The trip of the tip: understanding the growth cone machinery. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 10 (5), 332-343 (2009).
  17. Castellani, V. B. Protocols for Neuronal Cell Culture. , Humana Press Inc. (2001).
  18. Gahwiler, B. H. Organotypic monolayer cultures of nervous tissue. Journal of Neuroscience Methods. 4 (4), 329-342 (1981).
  19. Bornstein, M. B. Reconstituted rattail collagen used as substrate for tissue cultures on coverslips in Maximow slides and roller tubes. Laboratory Investigation. 7 (2), 134-137 (1958).
  20. Billings-Gagliardi, S., Wolf, M. K. A simple method for examining organotypic CNS cultures with Nomarski optics. In Vitro. 13 (6), 371-377 (1977).
  21. Bell, E., Ivarsson, B., Merrill, C. Production of a tissue-like structure by contraction of collagen lattices by human fibroblasts of different proliferative potential in vitro. Proceedings of the National Academy of Science. 76 (3), 1274-1278 (1979).
  22. Lumsden, A. G., Davies, A. M. Earliest sensory nerve fibres are guided to peripheral targets by attractants other than nerve growth factor. Nature. 306 (5945), 786-788 (1983).
  23. Chedotal, A., et al. Semaphorins III and IV repel hippocampal axons via two distinct receptors. Development. 125 (21), 4313-4323 (1998).
  24. Kennedy, T. E., Serafini, T., de la Torre, J. R., Tessier-Lavigne, M. Netrins are diffusible chemotropic factors for commissural axons in the embryonic spinal cord. Cell. 78 (3), 425-435 (1994).
  25. Klein, R. Eph/ephrin signaling in morphogenesis, neural development and plasticity. Current Opinion in Cell Biology. 16 (5), 580-589 (2004).
  26. Wang, K. H., et al. Biochemical purification of a mammalian slit protein as a positive regulator of sensory axon elongation and branching. Cell. 96 (6), 771-784 (1999).
  27. Emonard, H., Grimaud, J. A., Nusgens, B., Lapiere, C. M., Foidart, J. M. Reconstituted basement-membrane matrix modulates fibroblast activities in vitro. Journal of Cell Physiology. 133 (1), 95-102 (1987).
  28. Knapp, D. M., Helou, E. F., Tranquillo, R. T. A fibrin or collagen gel assay for tissue cell chemotaxis: assessment of fibroblast chemotaxis to GRGDSP. Experimental Cell Research. 247 (2), 543-553 (1999).
  29. Kapur, T. A., Shoichet, M. S. Immobilized concentration gradients of nerve growth factor guide neurite outgrowth. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 68 (2), 235-243 (2004).
  30. Torres-Espin, A., Santos, D., Gonzalez-Perez, F., del Valle, J., Navarro, X. Neurite-J: an image-J plug-in for axonal growth analysis in organotypic cultures. Journal of Neuroscience Methods. 236, 26-39 (2014).
  31. Balestrini, J. L., et al. Comparative biology of decellularized lung matrix: Implications of species mismatch in regenerative medicine. Biomaterials. 102, 220-230 (2016).
  32. Qian, J., et al. Kinetic Analysis of the Digestion of Bovine Type I Collagen Telopeptides with Porcine Pepsin. Journal of Food Science. 81 (1), 27-34 (2016).
  33. Eyre, D. R., Weis, M., Hudson, D. M., Wu, J. J., Kim, L. A novel 3-hydroxyproline (3Hyp)-rich motif marks the triple-helical C terminus of tendon type I collagen. Journal of Biological Chemistry. 286 (10), 7732-7736 (2011).
  34. Garnotel, R., et al. Human blood monocytes interact with type I collagen through alpha x beta 2 integrin (CD11c-CD18, gp150-95). Journal of Immunology. 164 (11), 5928-5934 (2000).
  35. Montolio, M., et al. A semaphorin 3A inhibitor blocks axonal chemorepulsion and enhances axon regeneration. Chemistry and Biology. 16 (7), 691-701 (2009).
  36. Garcia-Gareta, E. Collagen gels and the 'Bornstein legacy': from a substrate for tissue culture to cell culture systems and biomaterials for tissue regeneration. Experimental Dermatology. 23 (7), 473-474 (2014).

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