骨置換材料における骨成長と新生血管の評価のためのウサギにおける骨増強の卵子モデル

サマリー

ここでは、骨再生能力の観点から骨置換材料を評価することを目的として、ウサギの外科的プロトコルを提示する。ウサギの頭蓋骨に固定されたPEEKシリンダーを使用することにより、骨伝導、骨化誘導、骨形成および材料によって誘発される血管形成は、生きているまたは安楽死した動物のどちらかで評価されてもよい。

要約

ウサギの石灰葉モデルの基本的な原理は、頭蓋骨の皮質部分の上に垂直に新しい骨組織を成長させることです。このモデルは骨の成長および新生血管のサポートの点で口腔および頭蓋骨の骨の再生のための骨置換材料の査定を可能にする。動物が麻酔され、換気(気管内挿管)されると、ポリエーテルエーテルケトン(PEEK)で作られた4つのシリンダーが、中央値と冠状動脈縫合糸の両側に頭蓋骨にねじ込まれる。5つの骨内穴は、各シリンダーによって区切られた骨領域内で掘削され、骨髄細胞の流入を可能にする。材料サンプルは円柱に入れられ、その後閉じられます。最後に、手術部位が縫合され、動物が目覚める。骨の成長は、微小トモグラフィーを使用して生きた動物で評価することができる。動物が安楽死されると、骨の成長と新生血管化は、微小トモグラフィー、免疫組織学および免疫蛍光を使用して評価することができる。材料の評価には最大の標準化とキャリブレーションが必要なため、石灰化モデルは理想的に見えます。アクセスは非常に容易で、口径測定および標準化は定義されたシリンダーの使用によって促進され、4つのサンプルは同時に査定することができる。さらに、生きた断層撮影が用いられ、最終的には安楽死させる動物の大幅な減少が予想される。

概要

骨増強の石灰化モデルは、口腔および頭蓋骨外科領域におけるガイド付き骨再生(GBR)の概念を最適化することを目的として90年代に開発されました。このモデルの基本的な原理は、頭蓋骨の皮質部分の上に垂直に新しい骨組織を成長させることです。これを行うには、反応器(例えば、チタン-ドーム、-シリンダーまたは-ケージ)は、移植片によって行われる骨再生を保護するために頭蓋骨に固定される(例えば、ヒドロゲル、骨置換など)。このモデルの助けを借りて、チタニウムまたはセラミックケージ1、2、3、4、5、6、GBRの膜7、8、9 ^,10, 骨源因子^{11,12,13,14,15,16,17}, 新しい骨代用品^{12,16,17,18,19,20,21,22,23,24歳,25名,26歳,27歳,28歳,29}または骨再生^{プロセス30}中の新生血管形成のメカニズムを評価した。

翻訳の観点から見ると、石灰化モデルは、^顎31のクラスIV欠陥と比較することができる1つの壁欠陥を表す。目的は、内因性骨壁からの横面サポートなしで、皮質領域の上に新しい骨を成長させる。モデルは従って非常に厳しく、骨の皮質部分の上の縦の骨伝導の本当の潜在性を評価する。本明細書に記載のモデルが主に骨代用における骨伝導の評価に専念している場合、骨形成および/または骨化誘導も評価され、血管形成1、2、3、および ^4,5,6,7,^{8,9,10,11,12,13 ,14,15,16,17,18,19,20,21,22 ,23,24},^{25,26,27,28,29,30}.

本質的に倫理的、実用的、経済的な理由から、骨代謝と構造が^人間32と比較して非常に関連しているウサギで産石体モデルが開発されました。上記に引用された30の参考文献のうち、80%がウサギの石化モデル1、2、3、4、5、6、7、8^{を使用した,9,10,11},^{12,13,14,15,17,22, 23,26,27},^28,29,30,33,したがって、この動物モデルの関連性を実証する。2008年、ブゼンレヒナー群は、8つの骨置換物を同時^に20個(ウサギとの2つの骨置換物と比較して)比較できるように、子牛モデルをブタに移した。一方、うさぎの子牛体モデルを羊に移しました。簡単に言えば、チタンドームは羊の頭蓋骨の上に置かれ、新しい3Dプリント骨置換物の骨伝導を特徴付けた。これらの研究は、我々は石灰化モデルとその^分析16、21を開発し、習得することができました。

最後の3つの研究は、16、20、21、他のいくつかの調査と一緒に12、17、18、19、22^を引用しました。 ^23,24,26,27,^28,29, スクリーニングおよび特性としての石灰化モデルの大きな可能性を確認モデル。しかし、得られた結果は非常に満足できるものの、(1)チタンドームの使用は、X線拡散を妨げ、次に生きたマイクロCTの使用を妨げるといういくつかの制限を指摘しました。これらは組織学的処理の前に取り除くことができませんでした, 研究者は、ポリ(メチルメタクリレート)樹脂(PMMA)にサンプルを埋め込むために強制しました.したがって、結果として得られた分析は、主に地形に限定されました。(2)特に動物の費用、動物の物流、メンテナンス、手術に関連する費用が高い。(3) 大型動物に対する倫理的認可の取得が困難であること。

Polo,et al.²⁶による最近の研究は、ウサギのモデルを大幅に改善した。チタンドームは、材料の一定量で充填することができるクロース可能なシリンダーに置き換えられました。これらのシリンダーの4はウサギの頭蓋骨に置かれました。完成時にシリンダーを取り外して生検が金属フリーになり、サンプル処理に関する柔軟性が大幅に向上しました。ウサギの子牛モデルは、低コスト、容易な動物処理、サンプル処理の容易さと同時試験のために魅力的になりました。これらの最近の開発を活かし、チタンをPEEKに置き換えてシリンダーを製造することで、X線拡散や生きた動物へのマイクロトモグラフィーの利用を可能にすることで、モデルをさらに改良しました。

この記事では、麻酔と手術プロセスについて説明し、このプロトコルを使用して得られる出力の例、すなわち(免疫-)組織学、組織体学、生体および生体微小トモグラフィーを示し、骨のメカニズムを評価します。骨代替材料によって支えられた新しい骨合成を再生し、定量化する。

プロトコル

スイスの法的要件に従って、プロトコルは学術委員会によって承認され、州および連邦獣医機関(認可n°GE/16/16およびGE/100/18)によって監督されました。

1. 特定の装置および動物

1. シリンダー
   1. 内径5mm、外径8mm、高さ5mm(図1)を持つ、PEEKの横安定化タブを備えたマシンシリンダー。
   2. シリンダーの上部(厚さ1mm)に正確にクリップできる設計の機械PEEKキャップ。
   3. 手術前にオートクレーブによってPEEKシリンダーおよび帽子を殺菌する。
2. ネジ
   1. 自己掘削マイクロネジ(市販の純チタン(グレード5)製)を使用して、シリンダー(直径1.2mm、長さ4mm)を固定します。手術前にオートクレーブで殺菌する。
3. 動物
   1. 生後3ヶ月のニュージーランドの白ウサギ(オスまたはメス)を購入し、それぞれ約2.5kgの体重を持つ。
      注:ジュネーブ大学で飼育してウサギを得ました。

2. 手術

1. 外科用トレイ
   1. メス、はさみ、2つの鉗子、台座エレベーター、注射器(1、2、5、50 mL)、外科モーター、円形の外科バー(0.8 mmの直径)、針、無菌生理生理生理物、4つのシリンダー、8本のねじ、およびドライバーを準備しておいてください。
2. 前臨床治療
   1. 手術の1週間前に動物を順応させる。
   2. 手術後3日まで手術の2時間前に開始する予防抗生物質(口ごと5-10mg/kg(PO))を毎日提供する。
3. 麻酔と挿管
   1. ケタミンの筋肉内(IM)注射によって動物を鎮静する (25 mg/kg, 50 mg/mL, 0.5 mL/kg) + キシラジン (3 mg/kg, 20 mg/mL, 0.15 mL/kg).動物が眠るのを20分待つ
      深く(完全な筋肉のアトニー)。
      注:この前投薬は、シンプルで速く、痛みのない挿管プロセスを可能にします。深い鎮薬と麻酔は、ステップ2.3.8に記載されているように誘導される。
   2. 静脈内(IV)カニューレを耳から静脈の静脈に入れ、挿管が完了するまで閉じたままにしておきます。
      注:このIVラインは、それぞれ深部鎮鎮薬と麻酔のためのフェンタニルとプロポフォールを浸透させるのに役立ちます(ステップ2.3.8を参照)。
   3. 挿管が行われるまで純粋な酸素で5%のセボフルランを供給することにより、麻酔を維持します。
      注:このステップは、動物が覚醒の兆候(眼の動き、筋肉の収縮)を示している場合にのみ必要です。
   4. 10%リドカインを噴霧することにより、気管を局所的に麻酔する。ウサギを傾向のある位置に置き、垂直方向の延長で頭を維持します。
   5. 管内の気流が聞こえるまで、小径(2.5mm)の最初の気管チューブをウサギの気管にスライドさせます。これは喉頭を開き、決定的な管の挿入を容易にする。
   6. チューブの位置を気管に固定するために、チューブにガイド(挿管カテーテル)を挿入します。小径チューブを取り外し、ガイドの決定的な気管チューブ(4.9mm)をスライドさせます。
   7. ガイドを取り外し、気管内チューブの端にあるバルーンを膨らませ、気管にデバイスを密封してブロックします。チューブは所定の位置に留まるが、額に結ばれたレースを使用して固定することができる。 直ちに換気(7 mL/kg、周波数40/分)純粋な酸素で3%のセボフルランを持つ動物。
   8. 継続的にパーフューズ(耳静脈)フェンタニル(0.01 mg/mL、2-4 mL/h)を鎮鎮鎮を誘発し、2-4 mg/kg(2%)プロポフォール(20mg/mL、4-8 mL/h)は麻酔を誘発し、リンガーの酢酸塩を4mL/kg/hで維持し、等容性を維持する。
   9. 直腸温度プローブを配置します。また、プロセス全体の間に心臓機能、温度および酸素飽和度を監視します。
   10. 自律呼吸を監視することにより、麻酔の深さを制御します。動物が自律呼吸の徴候を示す場合は、プロポフォールとフェンタニルの小さなボーラスを分配する。
4. サイトの準備
   1. 手術台の上にマットレスパッドで覆われた加熱パッド(39°C)にウサギを置きます(火傷を避けるために)。頭皮を剃る。
   2. 刺激や乾燥を避けるために、目に潤滑ゲルを塗布してください。ポビドネヨウ素(10%)で皮膚を洗い流して部位を消毒する。その後、生殖不能の外科ドレープでウサギをドレープし、頭蓋骨のアクセス領域を切り取ります。
   3. ポビドネヨウ素で手術部位を消毒する(10%)二度目だ刺激や乾燥を避けるために、目に潤滑ゲルを塗布してください。
   4. 完全な外科用皿を置くドレープテーブル(無菌ドレープ)を準備する。
5. 手術部位開口部
   1. 頭蓋骨に2%(1mL)の皮下(SC)注射で局所麻酔する。
   2. 軌道から外眼突起(長さ約4cm)まで、腺矢状線に沿って皮膚(メスで)を切開する。骨膜が切開されていることを確認します。
   3. 切開の両側の骨膜(骨膜エレベーター付き)を穏やかに上昇させる。滅菌生理生理で部位をすすいでください。
6. シリンダー配置
   1. 頭蓋骨の中央分離帯と冠状縫合糸を見つけます (図 2A,B)。これらの解剖学的線は十字を形成することに注意してください。円柱は十字によって定義された各象限に配置され、円柱のエッジが縫合糸の上にないようにします(図2C)。
   2. 最初の円柱を左上の象限(左前頭骨)に置き、デバイスを平らに置くようにします。強い手圧で位置に固定し、抵抗が感じられるまでマイクロスクリューをねじ込みます。ネジヘッドがシリンダタブの表面と同じであることを確認します。
   3. 他のタブで同じ手順を繰り返し、シリンダーを頭蓋骨にしっかりと固定します。シリンダーが骨に密断されていることを確認します。
   4. 右上四半期(右前頭骨)、左下四半期(左頭頂部骨)、右下四半期(右頭頂部骨)の手順を繰り返します。
7. シリンダーが外接する領域内の5つの髄質内孔の骨掘削(図1)
   1. シリンダが外接する領域の中央に、骨に丸い穴を開けて生理物灌漑(直径0.8mm、奥行き〜1mm)の下に閉塞内穴を開けます。出血が現れることを確認します。
   2. 2 本のタブ ネジを通過する軸に沿って、シリンダの内側のエッジで、さらに 2 つの内側の穴をドリルします。垂直軸に沿って、円柱の内側のエッジでさらに 2 つの髄質内穴をドリルします。出血が現れることを確認します。
   3. 他の 3 つのシリンダ内で操作を繰り返します。
8. 材料サンプルとキャッピングでシリンダーを充填(図3)
   1. 製造元の指示または材料仕様に従って、所望の骨代替材料を準備します。
   2. 最初の円柱を材料サンプルでつばに塗り、キャップを取り付けて円柱を閉じます。他の3つのシリンダーでプロセスを繰り返します。
9. 手術部位閉鎖
   1. シリンダーの上の皮膚を断続的な非吸引性縫合糸で閉じます。
   2. 創傷にスプレー可能なドレッシングを適用します。

3. 術後治療

1. 鎮呼吸と麻酔(プロポフォールとフェンタニル灌流停止)の供給を停止し、自律呼吸の回復を確認します。
2. 動物が自律呼吸を回復したら、換気を止めてください。完全な目覚めの前に純粋な酸素の下で動物を維持します。
3. ブプレノルフィン塩酸塩SC(0.02 mg/kg、0.03 mg/mL、0.67 mL/kg)を注入し、手術後の鎮食剤として3日間6時間ごとに注射を繰り返します。
4. 水と完全な供給と通常のハウジングに動物を転送します。
5. 創傷治癒の約10日後に縫合糸を取り除く。

結果

ここに記載されるモデルは、骨置換における骨伝導の評価に専念する。骨置換物の骨形成および骨化誘導(前)細胞化または生理活性分子を搭載した場合、血管形成1、2、3、4、ならびに評価されてもよい。^{5,6,7,8,9,10歳,11歳,<...}

ディスカッション

ここに記載されているモデルは簡単で、すべてのステップが従い、装置が適している限り、非常に簡単に開発されるべきです。記載されているプロトコルは外科的方法であるので、すべてのステップは重要に見え、適切に従わなければならない。動物実験、特にウサギの取り扱いや麻酔の訓練を受ける必要があります。プロの麻酔科と獣医の助けを求めるのを躊躇しないでください。縫合除去の前後に動物の毎日の視覚モニタリングを主張することが重要です。頭蓋骨の皮膚が厚く、豊富で緩い場合でも、シリンダーの固定は大きな緊張を引き起こす。縫合糸があまりにも早く取り除かれると、創傷が再び開き、縫合と新しい抗生物質治療をもう1週間必要とする。創傷ラインから脱落した場合、外科医は縫合が可能かどうかを考慮する必要があります。そうでない場合は、サンプル拒否を考慮する必要があります。

プロトコルセクションで説明する重要な手順に加えて、以下の詳細は、このプロトコルの適切な実装に役立つ場合があります。技術的な観点からは、使用されるウサギは若くて小さいので、プロトコルで説明されているように、2段階の挿管を使用することが重要です。2番目の(そして最...

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
Drugs
エンロフロキサシン バイトリル 10%	バイエル		抗生物質
フェンタニル	ビシェル		鎮痛用
ケタラー 50mg/ml	ファイザー		ケタミン 麻酔用
リドヘックス	ビクセル		目のための潤滑ジェル
オプサイト	・スミスと甥	66004978	スプレー可能なドレッシング
ポビドン ヨウ素 10%、ベタジン	ムンディファーマ		抗感染剤
プロポフォール 2%	ブラウン	3538710	麻酔用
ラピドカイン 2%	シンテチカ		局所麻酔
リンガー酢酸	フレゼニウス・カビ		ボリューム補償
ロンプン 2%	バイエル		麻酔用キシラジン
セボフルラン 5%	アッヴィ		麻酔用
滅菌生理食塩水	シンテティカ
テムゲシック	レキット ベンキーザー		ブプレノルフィン塩酸塩、鎮痛剤
チオペンタール インレサ	オスペディアラ		麻酔用
キシロカイン 10% スプレー	アストラゼネカ		挿管用
名前	会社	カタログ番号	コメント
Equipment
Fresenius Vial pilot C	Imexmed		Infusion pump
加熱パッド	ハーバード装置
サクションドミナント 50	Medela(メデラ
)サクションチューブ Optimus	Promedical	80342.2
外科用モーター	シック歯科	用キューブ	髄内穴の穴あけ
換気	マケ サーボ1
名前	会社名	カタログ番号	コメント
Material
シリンダーとキャップ	Boutyplast	カスタマイズされた	構成:PEEK(ポリエーテルエーテルケトン)
手動自己保持シャフト	GlobalD	ACT1K
自己保持シャフト用モバイルハンドル	GlobalD	MTM
自己掘削ネジ	GlobalD	VA1.2KL4	クロスドライブネジ チタン grade5、ISO 5832-3
名前	会社	カタログ番号	コメント
手術トレイ
気管内チューブ Shiley 直径 2,5mm	Covidien	86233	挿管用
気管内チューブ シャイリー 直径 4,9mm	Covidien	107-35G	挿管用
Ethicon prolene 4-0	Ehticon	8581H	非吸収性縫合
糸 鉗子	マルセル・ブラン	BD027R	145 mm
挿管カテーテル	クック 挿	管用
ニードルホルダー	マルセルBlanc	BM008R
Needles BD Microlance3	Becton Dickinson	300300/304622	26G; 18G
Periosteal	HU-Friedy	P9X
Round surgical burs	Patterson	78000	0.8 mm in diameter, Drilling of intramedullary
Scalpel	Swann-Morton		n°10 と n°15
はさみ	マルセルブラン	00657	180ミリメートル
シリンジOmnifix	ブラウン	4616057V	5ml、10mlと50ml
ベンフロンG22	ブラウン	42690985-01	耳の静脈静脈炎ラインのためのvasofix安全性