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Research Article
Nicholas E. Buglak1,2,3,5, Edward S. M. Bahnson1,2,3,4,5
1Department of Surgery, Division of Vascular Surgery,University of North Carolina at Chapel Hill, 2Center for Nanotechnology in Drug Delivery,University of North Carolina at Chapel Hill, 3Curriculum in Toxicology & Environmental Medicine,University of North Carolina at Chapel Hill, 4Department of Cell Biology & Physiology,University of North Carolina at Chapel Hill, 5McAllister Heart Institute,University of North Carolina at Chapel Hill
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
ラット頸動脈バルーン傷害は、アテローム硬化性血管の血流を回復させるために行われる臨床血管形成術手順を模倣する。このモデルは、動脈壁を遠ざけ、内皮細胞の内皮層を脱脂することによって動脈損傷応答を誘導し、最終的にはリモデリングおよびインティタル過形成応答を引き起こす。
心血管疾患は、アテローム性動脈硬化症の一部により、世界中の死亡および障害の主な原因であり続けている。動脈硬化性プラークは、動脈の発光表面積を狭くし、器官および遠位組織への十分な血流を減少させる。臨床的には、ステント配置の有無にかかわらずバルーン血管形成術などの血管形成術のような再血管形成手順は、血流を回復させることを目的としている。これらの手順は、プラークの負担を軽減することによって血流を再確立するが、それらは、動脈治癒応答を開始する血管壁を損傷する。長期の治癒応答は動脈の修復、または再狭動を引き起こし、最終的にこれらの再血管化処置の長期的な成功を制限する。したがって、前臨床動物モデルは、レステノーシスを駆動する病態生理学的メカニズムを分析するために不可欠であり、新たな治療戦略をテストする機会を提供する。ネズミモデルは、大型動物モデルよりも安価で操作が簡単です。バルーンまたはワイヤー損傷は、マウスモデルで使用される2つの一般的に受け入れられている傷害モダリティです。特にバルーン傷害モデルは、臨床血管形成術を模倣し、修復の発達のために動脈に十分な損傷を引き起こす。ここでは、改変された、圧力制御されたラット頸動脈バルーン傷害モデルを行い、組織学的に分析するための外科的詳細を説明する。さらに、このプロトコルは、新内皮過形成を阻害するためにどのように治療の局所的な来期適用を使用することができるかを強調する。最後に、3次元で動脈損傷を可視化・可視化するための新しいアプローチとして、光シート蛍光顕微鏡を紹介する。
心血管疾患(CVD)は、世界的に主要な死因である1.アテローム性動脈硬化症は、ほとんどのCVD関連の罹患率および死亡率の根本的な原因である。アテローム性動脈硬化症は、動脈内のプラークの蓄積であり、管腔が狭くなり、臓器および遠位組織への適切な血液灌流を妨げる2。重度のアテローム性動脈硬化症を治療するための臨床介入には、ステント配置の有無にかかわらずバルーン血管形成術が含まれる。この介入は、バルーンカテーテルをプラークの部位に進め、バルーンを膨らませてプラークを動脈壁に圧縮し、明るい領域を広げることを含む。しかし、この手順は動脈損傷応答3を発する動脈に損傷を与える。この傷害応答の長時間の活性化は、動脈の修復、または再狭小化、新内皮過形成および血管リモデリングに二次的に至る。血管形成術の間、内皮層は、即時血小板の形成および局所炎症をもたらす内皮細胞の脱ヌードである。局所シグナル伝達は、血管平滑筋細胞(VSMC)および発着性線維芽細胞における表皮変化を誘発する。これは、内腔へのVSMCおよび線維芽細胞の内向きの移動および増殖につながり、新内皮過形成4、5に至る。循環前駆細胞および免疫細胞も、全量の休止に寄与する。適用可能な場合、薬物溶出ステント(DES)は、残り性化7を阻害するための現在の標準である。しかし、DESは動脈再血管形成を阻害し、従って、後期ステント血栓症8を生じさせるプロ血栓性環境を作り出す。したがって、動物モデルは、再脳炎の病態生理を理解し、再血管化手順の有効性を延長するためのより良い治療戦略を開発するために不可欠である。
この病理を研究するために、大小の動物モデル9がいくつか利用されている。これらは、動脈の光側のバルーン傷害3、10またはワイヤー傷害11、ならびに動脈の周りの部分結紮12またはカフ配置13を含む。バルーンとワイヤーの損傷は、両方とも動脈の内皮層を脱裸にし、血管形成術後に臨床的に起こることを模倣する。特に、バルーン傷害モデルは、臨床設定(すなわちバルーンカテーテル)と同様のツールを利用する。ラット動脈は市販のバルーンカテーテルに適したサイズであるため、バルーン損傷はラットモデルで最もよく行われます。ここで我々は、圧力制御された細分動脈損傷、ラット頸動脈バルーン損傷の確立された、改変されたバージョンを記載する。この圧力制御アプローチは、臨床血管形成術を密接に模倣し、傷害14、15の2週間後に再現可能な新内皮過形成を可能にする。さらに、この圧力制御動脈損傷は手術後2週間までに完全な内皮層復帰をもたらす16.これは、内皮層が完全なカバレッジ3に戻らないクロウズによって記述された元のバルーン傷害モデルと直接対照的です。
手術後、治療はいくつかのアプローチを通じて、損傷した動脈に適用されるか、または向けられ得る。本明細書に記載される方法は、プルロン酸ゲル溶液に埋め込まれた小分子の回来期適用を使用する。具体的には、100μMシンナミックアルデヒドの溶液を25%プルロニックF127ゲルで動脈に塗布し、新内膜過形成を阻害する損傷直後に動脈に塗布する。Pluronic-F127は、制御された方法で薬物を局所的に送達することができる無毒、熱可逆ゲルである17.一方、動脈損傷は局所的であるため、地方行政はオフターゲット効果を最小限に抑えながらアクティブな原則をテストすることを可能にする。それにもかかわらず、この方法を用いた治療の有効な送達は、使用される低分子または生物学的の化学に依存する。
ここに記載されているすべての方法は、ノースカロライナ大学チャペルヒル校の施設動物のケアと使用委員会(IACUC)によって承認されています。
1. 術前の手順
2. 手術手順
3. 術後の手順
4. 組織の収穫とイメージング

図1は、この手術を行うために使用されるすべての材料および外科用具を示しています。ヘマトキシリン&エオシン(H&E)2週間の損傷した動脈断面の染色は、新内皮肥大の明確な視覚化を可能にする。図2は、健康、負傷、治療された動脈のH&E染色動脈断面の代表的な画像を示しています。図2はまた、画像処理ソフトImageJを用いて、損傷した動脈における新内皮過形成のレベルを定量化する方法を概説する。このアプローチを使用して、ネオインティマの周囲、ならびに内部および外部弾性層層がそれぞれの領域を定量化するために追跡される。我々が記述する圧力制御された区分傷害法は、0.29(2つの異なる外科医およびn=11ラット)の標準偏差を有する0.80のメディア比に対するインティマをもたらすと説明する。PLUROnicにおけるCAの回来期適用による治療は、前に示したように、新内皮過形成の阻害をもたらす(閉塞率の61%減少)15。
図3 は、ECAとSTAの分岐で最適な動脈切除術を作成するための図 を示しています 。CD31染色は、内皮層を裏打ちする内皮細胞を可視化するために、固定動脈上で行うことができる。動脈は、1%アガロースに埋め込まれ、iDISCO+法を用いてクリアして、サンプル20の屈折率を均質化することができる。その後、動脈を光シート蛍光顕微鏡で画像化することができ、I:M比を定量化するためのソフトウェアを使用して画像をレンダリングすることができます。このアプローチを用いて、H&Eの結果と一致する0.86のI:M比を得た。
| セクション番号 | 参照 |
| 10セクション | 27 |
| 8つのセクション | 28 |
| 6-10セクション | 29 |
| 6 つのセクション | 30 |
| 5つのセクション | 31 |
| 3つのセクション | 32 |
表 1.過形成解析のために一般的に使用される動脈断面の数。

図 1.手術器具とツール。 画像の左上隅から時計回りに開始する順序で: (A) 綿棒;(B)ベタジン溶液;(C) ガーゼ;(D) 70% エチルアルコール溶液;(E)針付き1ccの注射器;(F) アトロピン;(G) リトラクター;ここで使用される曲がったペーパー クリップ。(H) リマディル;(I) 鉗子を適用するマイクロサーリファインクランプ;(J)針ホルダー;(K)4-0ナイロン縫合糸;(L) 4-0 ビクリル縫合糸;(M) 無菌ドレープ;(N)マヨハサミ;(O) 標準鉗子;(P) 微細曲面鉗子;(Q) マイクロディセクセ(R) マイクロセリファインクランプ;(S) 細かいはさみ;(T) T ピン;(U) 湾曲止止(V) 3つの7-0プロレン縫合糸は約1インチに切断される。(W)100 μLの 25% pluronic-127 ゲル;(X) 潤滑眼軟膏;(Y)2フランス風船塞栓カテーテル無菌生理液中;(Z) インスフレーター. この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

図 2.ヘマトキシリン&エオシン(H&E)ラット頸動脈の断面の染色および分析。(A)健康な、怪我をしていない右頸動脈の断面。IEL = 内部弾性薄層、EEL = 外部弾性薄層。(B)2週間の負傷した左頸動脈の断面は、プルロニック-F127車両で治療した。(C)100 μMのシンナミックアルデヒドで治療された2週間の左頸動脈の断面。スケールバー= 100 μm(D) 損傷を定量化するための凍結動脈の断面図。スライド1は分岐から始まり、幅5μmの6つの動脈セクションがスライドごとに取られます。通常、このスライドの前に損傷が発生するので、断面はスライド70に続きます。(E) 負傷した左頸動脈の断面を、プルロニック車両で処置した (B).最も内側の黒い線はネオインティマをトレースし、明るい領域を示します。真ん中の黄色の線は、内部弾性層の領域、またはチュニカのインティマを示します。外側の青い線は、外弾性層、またはチュニカアドベンティシアの領域を表します。スケールバー = 100 μm(F)(E)から得られた測定値に基づいて、パーセントの血管閉塞とインティマ:メディア(I:M)比を測定するために使用される計算。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

図 3.動脈開管作り。 適切な動脈管を作成し、偽の道を避けるために手順の図。CCA=一般的な頸動脈、ECA=外外頸動脈、ICA=内頸動脈、OA=後頭動脈、STA=優れた甲状腺動脈。ECAとSTAの分岐間の分岐を分離します。この分岐を、領域が明るい色に変わるまで、動脈壁の薄さを示し、その後、マイクロ解剖ハサミを使用して動脈切除術を作成します。細かい鉗子を使って動脈管内開管術を行い、バルーン挿入を補助する。 この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

図 4.動脈損傷を可視化する光シート蛍光顕微鏡。 下に代表的な横断セクションを持つ14週齢のスプレイグ・ドーレーラットからの一般的な頸動脈の長さに沿った縦断断面。動脈はCD31で染色され、AF647で対等化される。(A)健康な、怪我をしていない右頸動脈の断面。白 =CD31、緑=弾性薄層、L =ルーメン、スケールバー=200-500μm.(B)負傷の断面、左頸動脈はプルロニックF127車両で治療した。矢印は、新内皮過形成の領域を示す。(C) インティマ対メディア (I:M) 損傷していない頸動脈の比率, 各グループに正確な値を記載 (n=1). この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。
著者らは、この原稿の出版に関して利益相反はないと宣言している。
ラット頸動脈バルーン傷害は、アテローム硬化性血管の血流を回復させるために行われる臨床血管形成術手順を模倣する。このモデルは、動脈壁を遠ざけ、内皮細胞の内皮層を脱脂することによって動脈損傷応答を誘導し、最終的にはリモデリングおよびインティタル過形成応答を引き起こす。
N.E..Bは、国立環境衛生研究所(5T32ES007126-35、2018)と米国心臓協会の博士前フェローシップ(20PRE35120321)からの訓練助成金によって支援されました。E.S..M.Bは、UNC臨床・トランスレーショナルサイエンス賞K12奨学生プログラム(KL2TR002490、2018)、国立心臓・肺・血液研究所(K01HL145354)の一部の支援を受けたKL2学者でした。著者らは、LSFMを支援してくれたUNC顕微鏡サービス研究所のパブロ・アリエル博士に感謝する。光シート蛍光顕微鏡は顕微鏡サービス研究所で行いました。病理学・検査医学科の顕微鏡サービス研究所は、P30 CA016086がんセンターのコアサポート補助金によって、UNCラインバーガー総合がんセンターに支えられている。
| 1 mL | シリンジ フィッシャー | 14955450 | |
| 1 mL 針付きシリンジ | BD | 309626 | |
| 2 フレンチ フォガティ バルーン塞栓切除カテーテル | エドワーズ ライフサイエンス | 120602F | |
| 4-0 エチロン (ナイロン) 縫合糸 | Ethicon Inc | 662H | |
| 4-0 Vicryl 縫合糸 | Ethicon Inc | J214H | |
| 7-0 プロレン縫合 | Ethicon Inc | 8800H | |
| 70%エチルアルコール | |||
| 抗ウサギ アレクサフルーア 647 | サーモフィッシャーサイエンティフィック | A21245 | |
| アトロピン硫酸塩 | 獣医用 | Vedco Inc | |
| 綿棒 | ピューリタン | 806-WC | |
| 湾曲止血器 | ファインサイエンスツール | 13009-12 | |
| 細かい湾曲した鉗子 | ファインサイエンスツール | 11203-25 | |
| ファインハサミ | ファインサイエンスツール | 14090-11 | |
| ガーゼ | Covidien | 2252 | |
| IHC-TEK希釈剤(pH 7.4) | IHCワールド | IW-1000 | |
| インシャフレーター | メリットメディカル | IN4130 | |
| ヨウ素溶液 | |||
| 獣医用潤滑眼軟膏 | Dechra | ||
| メイヨーはさみ | ファインサイエンスツール | 14010-15 | |
| マイクロSerrefines | ファインサイエンスツール | 18055-05 | |
| Microdissectionはさみ | ファインサイエンスツール | 15004-08 | |
| マイクロSerrefineクランプ鉗子を適用する | ファインサイエンスツール | 18057-14 | |
| ニードルホルダー | ファインサイエンスツール | 12003-15 | |
| Pluronic-127(滅菌水で希釈) | Sigma-Aldrich | P2443 | 25%調製 |
| ウサギ抗CD31 | Abcam | ab28364 | |
| トラクター | 曲 | がったペーパークリップはよく機能します | |
| マジル(カルプロフェン) | ゾエティス株式会社 | 獣医用 | |
| 生理食塩水 | |||
| 標準的な鉗子 | のファイン サイエンス ツール | 11006-12 | |
| 滅菌ドレープ | Dynarex | 4410 | |
| T ピン |