酵母毒性およびサプレッサースクリーンを用いた細菌エフェクタータンパク質を標的とする宿主経路の同定

ここで提示されたものと同様の手順の最初のレポートは、レジオネラ肺炎球菌型IVエフェクターSidD、Rab1^1を変質するdeAMPylasを特徴としました。同等の技術は、いくつかのL.肺炎球菌エフェク^{ター1、2、3}の特性評価に使用された。アッセイは、コキシエラ・ブルネチーIVエフェクタータンパク^質4を特徴付けるために適応され、最近、クラミジア・トラコマティス含有膜タンパク質の特性評価のためにこの技術の有用性が拡張^された5.

このプロトコルは、2つの主要な部分に分けることができる:1)目的の細菌エフェクタータンパク質が酵母およびクローンで発現され、成長欠陥によって示される有毒な表現型についてスクリーニングされ、2)酵母サプレッサースクリーン、有毒株中の酵母ゲノムライブラリーの発現により毒性表現型が抑制されるものである。したがって、毒性スクリーンは、目的の細菌エフェクターが過剰発現されたときに増殖欠陥として現れる毒性表現型の画面である。細菌エフェクターで正常に変換され、発現する有毒クローンが選択され、次のステップのために保存されます。第2の主要なステップは、有毒酵母クローン内の部分的に消化された酵母ゲノムライブラリーを過剰発現することを含む。このプロトコルで使用するために提案された酵母ゲノムライブラリを構成するプラスミドは5−20 kbのインサートを運び、通常はすべてのプラスミドにわたって〜1.5kbの平均遺伝子サイズの3−13酵母オープンリーディングフレーム(ORF)に対応し、全酵母ゲノムカバーを表す約10倍。アッセイのこの部分は、細菌エフェクタータンパク質の毒性を抑制することを目的とするように、サプレッサースクリーンと呼ばれる。潜在的なサプレッサープラスミドは、酵母から単離され、配列化され、および同定された抑制ORFである。サプレッサースクリーンの根底にある根拠は、エフェクタータンパク質が標的とする宿主経路の成分に結合し、相互作用し、および/または圧倒される成分を、それらの宿主タンパク質を過剰に戻すことができ、経路に対する毒性効果を救うことができるということです。成長欠陥。したがって、毒性を抑制するORFを同定すると、多くの場合、宿主経路の複数の参加者を表す。次に、直交実験を行い、細菌エフェクターが実際に関連経路と相互作用することを検証します。これは、これらのタンパク質が多数の宿主プロセスに関与しているため、クラトリンやアクチンなどの結合パートナーが同定された場合に特に必要です。さらなる実験は、感染中にエフェクタータンパク質の生理機能を解明することができる。毒性およびサプレッサースクリーンはまた、免疫沈降によって検出するのに十分な親和性を有する宿主タンパク質を物理的に結合しない細菌エフェクタータンパク質の生理機能を解読するための強力なツールであり、酵母2ハイブリッドスクリーンでは検出されない可能性のある酵素的ヒットアンドラン相互作用のホスト。

サプレッサースクリーンは、細菌エフェクタータンパク質と宿主経路との間の潜在的な生理学的相互作用を明らかにする強力な方法であり得るが、細菌エフェクタータンパク質は酵母の増殖欠陥を誘導しなければならない。サプレッサー画面はほとんど役に立ちません。さらに、有毒な表現型は、少なくとも2−3_ログ10の成長の欠損をもたらすか、またはサプレッサーを同定することが困難であろう。細胞培養のために実験室が設置されている場合、HeLaなどの一般的な細胞株における毒性のスクリーニングエフェクタータンパク質は、酵母毒性スクリーンを進める努力に値するかどうかについての洞察を与えることができる。HeLa細胞におけるエフェクタータンパク質の湿疹発現は、これらの^{スクリーン4}に用いられる酵母株における毒性と非常に強く相関する毒性をもたらす場合がある。HeLa細胞におけるストレスの観察可能な特徴は、ストレス繊維の喪失、プレートからの細胞剥離、およびアポトーシスを示す核縮合を含む。HeLa細胞におけるストレスの視覚的な徴候は、酵母の増殖欠陥を誘導するための良い候補となるタンパク質を作り、これははるかに迅速に複製し、したがって、本質的な経路の摂動に対してより応答性が高くなります。

サプレッサー画面は、必ずしもホスト・バインディング・パートナーをサプレッサーとして識別するとは限りませんが、ターゲットとするホスト経路の重要なコンポーネントに影響を与える可能性があり、それによってハイジャックされる生物学的プロセスの全体像が得られます。細菌エフェクタータンパク質。表面上、エフェクタータンパク質の結合パートナーを過剰に提供することは、成長欠陥を救出することが期待されるため、これは直感的ではないようです。感染5時に少なくとも10種類のRab GTPアーゼに結合するC.トラコマティスエフェクタープロテインCT229(CpoS)の標的となる経路を同定する取り組みにおいて、Rab結合パートナーのいずれもCT229の毒性を抑制しなかった。しかし、クラトリン被覆小胞(CCV)の密売に関与する多数のサプレッサーが同定され、CT229がRab依存型CCVの密売を特異的に転覆していることを示すさらなる作業につながった。同様に、酵母増殖欠陥を救出したC.ブルネティエフェクタープロテインCbu0041(CirA)を調べたところ、その後、RhoA4に対するGTPアーゼ活性化タンパク質(GAP)としてCirAが機能することが判明した。

細菌エフェクタータンパク質を標的とする宿主経路を解明するための酵母サプレッサースクリーンの有用性はいくら強調してもしすぎることはできず、細胞内細菌エフェクタータンパク質を特徴付けようとする他の研究者は、大きな利益を得ることができます。これらの技術。これらのアッセイは、免疫沈降および/または酵母2つのハイブリッドスクリーンが結合パートナーを見つけることができず、どの経路が細菌エフェクタータンパク質によって標的にされているかを解明できる場合に価値があります。ここでは、細胞内細菌エフェクタータンパク質を標的とする宿主生物学的経路を同定するための毒性およびサプレッサースクリーンの詳細なプロトコルと、これらのアッセイを使用する際に経験した一般的な障害のいくつかおよび対応するソリューション。

1. 媒体および試薬の調製

注:プレートは、アッセイの日の前に準備する必要があり、1ヶ月間良いです。媒体および試薬はいつでも作ることができ、1ヶ月間良いです。

1. 1,000mLビーカーに800mLの蒸留水にD-(+)-グルコース100gを溶解して、グルコース溶液の1L(10%w/v)を調製する。蒸留水で体積を1Lに調整します。0.2μmの滅菌フィルターを通して滅菌1 Lメディア貯蔵ボトルにフィルターを入れます。
2. 1Lビーカーに800mLの蒸留水に100gのD-(+)-ガラクトースを溶解してガラクトース溶液(10%w/v)を1L調製します。蒸留水を使用して体積を1mLに調整し、0.2μmの無菌フィルターを通して滅菌1,000 mLの媒体貯蔵ボトルにフィルターを入れます。
3. 酵母エキスペプトンデキストロース(YPD)寒天の1Lを調製し、酵母エキス10g、ペプトン20g、グルコース20g、寒天20gを蒸留水1,000mLに溶解して調製する。オートクレーブを20分間、冷却するまで56°水浴で冷却する。1枚あたり約20mLの媒体を使用して100mmプレートに注ぎます。
4. 酵母エキス10g、ペプトン20g、ブドウ糖20gを蒸留水1,000mLに溶解してYPDブロス1Lを調製する。オートクレーブ 20分間
5. 合成ドロップアウト(SD)ウラシル(^ウラ-)グルコース寒天を準備します。1Lの場合、アミノ酸を含まない酵母窒素塩基6.7g、ウラシルを含まないドロップアウトサプリメント1.9g、蒸留水800mLで15gの寒天を溶解する。20分間オートクレーブし、温度が〜50−60°Cになるまで56°水浴で冷却する。50 mL血清学的ピペットまたは滅菌等級シリンダーを使用して、ステップ1.1で調製したグルコース溶液の200 mLを追加します。軽く渦巻くか、かき混ぜ板の上に置いてよく混ぜます。1枚あたり約20mLの媒体を使用して100mmプレートに注ぎます。
6. 合成ドロップアウト(SD)ウラシル(^ウラ-)ガラクトース寒天を準備します。1Lの場合、アミノ酸を含まない酵母窒素塩基6.7g、ウラシルを含まないドロップアウトサプリメント1.9g、蒸留水800mLで15gの寒天を溶解する。20分間オートクレーブし、温度が〜50−60°Cになるまで56°水浴で冷却する。50 mL血清学的ピペットまたは滅菌等級シリンダーを使用して、ステップ1.2で調製したガラクトース溶液の200 mLを追加します。軽く渦巻くか、かき混ぜ板の上に置いてよく混ぜます。1枚あたり約20mLの媒体を使用して100mmプレートに注ぎます。
7. 合成ドロップアウト(SD)ウラシル(^ウラ-)グルコーススープを準備します。1Lの場合、アミノ酸を含まない酵母窒素塩基6.7gと蒸留水800mLでウラシルを含まないドロップアウトサプリメントを1.9g溶解する。20分間オートクレーブし、温度が〜50−60°Cになるまで56°水浴で冷却する。50 mL血清学的ピペットまたは滅菌等級シリンダーを使用して、ステップ1.1で調製したグルコース溶液を200ml添加します。
8. 合成ドロップアウト(SD)ウラシル(^ウラ-)ロイシン(Leu^-)グルコース寒天を準備します。1Lの場合、アミノ酸を含まない酵母窒素塩基の6.7gを溶解する。ウラシル、ロイシン、トリプトファンを含まないドロップアウトサプリメントの1.9 g;寒天の15グラム;蒸留水の800 mLでトリプトファンの0.076 g.20分間オートクレーブし、温度が〜50−60°Cになるまで56°水浴で冷却する。50 mL血清学的ピペットまたは滅菌等級シリンダーを使用して、ステップ1.1で調製したグルコース溶液の200 mLを追加します。1枚あたり約20mLの媒体を使用して100mmプレートに注ぎます。
9. 合成ドロップアウト(SD)ウラシル(^ウラ-)ロイシン(Leu^-)ガラクトース寒天を準備します。1 Lの場合、アミノ酸を含まない酵母窒素塩基の6.7gを溶解する。ウラシル、ロイシン、トリプトファンを含まないドロップアウトサプリメントの1.9 g;寒天の15グラム;蒸留水の800 mLでトリプトファンの0.076 g.20分間オートクレーブし、温度が〜50−60°Cになるまで56°水浴で冷却する。50 mL血清学的ピペットまたは滅菌等級シリンダーを使用して、ステップ1.2で調製したガラクトース溶液の200 mLを追加します。軽く旋回するか、かき混ぜ板の上に置いてよく混ぜます。1枚あたり約20mLの媒体を使用して100mmプレートに注ぎます。
10. 合成ドロップアウト(SD)ウラシル(^ウラ-)ロイシン(Leu^-)グルコーススープを準備します。1 Lの場合、アミノ酸を含まない酵母窒素塩基の6.7gを溶解する。ウラシルなしドロップアウトサプリメントの1.9 g, ロイシン, トリプトファン;蒸留水の800 mLでトリプトファンの0.076 g.20分間オートクレーブと温度が〜50°Cになるまで56−60°水浴で冷却する。50 mL血清学的ピペットまたは滅菌等級シリンダーを使用して、ステップ1.1で調製したグルコース溶液の200 mLを追加します。
11. ポリエチレングリコール(PEG)溶液を調製します。蒸留水にポリエチレングリコール3350の50%w/vを加えます。オートクレーブで殺菌します。
12. 1M酢酸リチウム(LiAc)を200mLの蒸留水に脱水して1M酢酸リチウム(LiAc)を調製する。オートクレーブで殺菌します。
13. ニシン精子DNAを準備します。蒸留水を用いて10mg/mLニシン精子DNAを2mg/mLに希釈する。100°Cで5分間加熱し、直ちに氷の上に5分間置きます。

2. 目的の遺伝子を酵母毒性プラスミドプラスミドpYesNTA-Kanにクローニングする

注:現在、商業的にも学術的にも様々な酵母毒性ベクターが利用可能です。酵母サプレッサースクリーンは、目的のエフェクタータンパク質を発現するプラスミドを提供するこれらのベクターの多くと併用することができ、ウラシル以外のドロップアウト選択およびBla^R以外の抗生物質マーカーを使用する。本研究では、カナマイシン耐性カセットを含む修正pYesNTA^{ベクター4、5}を用いて、潜在的なサプレッサーのスクリーニングを容易にした。クローニングスキームは、エフェクタータンパク質がGalプロモーターおよびHis-Tagとフレーム内になければならないことを可能にする必要があります。クラミジアトラコマティス封入膜タンパク質CT229は、これらのアッセイの原理の証明として使用された。

1. PCR を使用して、CT229 +1 Kpn F (CCGGTACCAATGTCTCTCTCTCTTtaTTATtaTTATtaTTATTATTAGTT) および CT229 XhoI R (CCCTCGAGTTTTTTTCTGGGATCC) プライマーを使用して、製造元の指示に従ってC. トラコマティスゲノム DNA から CT229 を増幅します。次の PCR 条件を使用します: (1) 98 °C 30 s;(2) 98 °C 10 s, 55 °C 30 s, 72 °C 2 分;(3) 合計 25 倍の手順 2 を繰り返します。(4) 72 °C 10分間;および(5)4°Cホールド。
2. 1%アガロースゲル上のPCR産物の5°Lを分析する(図1)。
3. 製造元の指示に従って PCR 精製キットを使用して、残りの 45 μL の DNA を精製します。
4. KpnI-HFおよびXhoI-HFを使用した水浴中で、精製されたPCRインサートとpYesNTA-Kan(図2)の50μLを37°Cで1時間消化します。
   注:pYesNTA-Kanの場合、KpnI-HFの5°L、XhoI-HFの5°L、および60μLの総体積で6μLのバッファを使用してプラスミドの5μgを消化します。インサートの場合は、2μLのKpnI-HF、XhoI-HFの2μL、および6μLのバッファを使用して、精製されたPCR製品の50°L全体を消化します。
5. 1%アガロースゲルでプラスミドダイジェスト全体を実行します。製造業者の指示に従ってゲル抽出キットを使用して消化されたプラスミドの精製を行う。
6. 製造元の指示に従って、PCR 精製キットを使用して消化された PCR インサートを精製します。
7. 2μLのpYesNTA-Kan(ステップ2.5)、DNAリガーゼ緩衝液2μL、T4リガーゼの1μL、および15μLのインサートを使用して、インサートをpYesNTA-Kanにクローニングします(ステップ2.6)。室温で1時間インキュベートする。
8. 大腸菌能細胞の50°Lにクローニング反応全体を加え、形質転換反応を行う。
9. カルベニシリンの100μg/mLを含むLBプレート上の変換反応全体をプレートします。
10. 3つの個々のコロニーを有するカルベニシリンの100μg/mLを含むLBの10 mLを接種する。150 rpmで振とう37°Cで一晩インキュベートする。
11. メーカーの指示に従ってプラスミドミニプレップキットを使用してプラスミドを分離します。
12. 遺伝子特異的プライマーを用いて単離されたプラスミドを配列する(ステップ2.1)。

3. 酵母の毒性に関する目的のタンパク質を試験する

1. YPD寒天上のストリークサッカロミセスセレビシエW303(ステップ1.3)を単離したコロニーを得た。24時間30°Cでインキュベートする。
2. 寒天プレートから単一のコロニーで10mLのYPDスープ(ステップ1.4)を接種する(ステップ3.1)。一晩で150rpmで振とう30°Cでインキュベートする。
3. 10 mLのYPDスープ(ステップ1.4)に一晩培養物の0.5 mLを加え、4時間150rpmで振とう30°Cでインキュベートします。
   1. 10mLの培養物を3,000 x gで4°Cで10分間ペレット化する。
   2. ペレットを滅菌水1mLで再サスペンドし、マイクロ遠心管に移し、室温で3,000 x gでペレットを1分間行う。
   3. ペレットを1mMの酢酸リチウム(LiAc)の1mLで再スマードし、室温で1分間3,000 x gのペレットで再スマー。
   4. LiAc洗浄2xを繰り返します。
   5. 洗浄を取り外します。50% PEG 3350 の 2.4 mL でペレットを再サスペンドします。1M LiAcの360 μL、ニシン精子DNAの2mg/mLの500 μL、滅菌水の400°Lを加えます。
      注: これは 20 の変換に対して十分です。
   6. ステップ3.3.5から180μLの変換ミックスを、ステップ2.12から5μLのpYesNTA-Kan CT229プラスミドDNA(100−500ng)を含むマイクロ遠心管に追加します。
   7. 30°Cの水浴で30分間インキュベートする。
   8. 42°Cの水浴で30分間インキュベートする。
   9. 室温で1分間3,000 x gのペレット。
   10. ピペットで変換ミックスを削除します。ペレットを滅菌水100°Lで再サスペンドします。SDウラに変換をプレート^-グルコースで寒天(ステップ1.5)。
   11. 48時間30°Cでプレートをインキュベートします。
4. SDウラの5 mLを接種^{する -}プレートから単一のコロニーでグルコース(ステップ1.7)を含むスープ。150 rpmで振とうで30°Cで一晩インキュベートする。ベクター単独で形質転換した酵母を陰性対照として含める。
   1. 96ウェルプレート(A2-A6)の5ウェルに180μLの滅菌水を加えます。
   2. 混ぜる一晩培養物をボルテックス。
   3. 最初のウェル(A1)に酵母を180μL加えます。連続希釈1:10(未希釈を含む合計6サンプル)。
   4. マルチチャンネルピペットを使用して、SDウラ上の各希釈のスポット5μL^-グルコース(ステップ1.5)とウラ^-ガラクトース(ステップ1.6)寒天プレート。48時間30°Cでインキュベートする。
5. ガラクトース含有媒体上で増殖した目的のエフェクタータンパク質を発現する酵母の増殖を、ベクターのみを発現する酵母の増殖と比較して毒性を評価する。
6. ウェスタンブロッティングによるHisタグ融合タンパク質の発現を確認する。

4. 酵母ゲノムライブラリーで有毒酵母を変換する

1. SDウラの100 mLを接種^{する -}グルコーススープ(ステップ1.7)からステップ3.4から1 mLのストックを使用する。150 rpmで振とう30°Cで16−24時間インキュベートする。SDウラの900 mLを置く^-スラウススープを一晩で30°Cで、メディアを前温します。
2. 一晩培養物の100mL全体を前温1Lフラスコに加える。150 rpmで振とう30°Cで4−5時間インキュベートします。
   1. 4°Cで10分間6,000 x gで培養物をペレット。
   2. 上清を捨てる。滅菌水の250 mLでペレットを再サスペンドします。4°Cで5分間6,000 x gで培養をペレット。
   3. 上清を捨てる。1 mM LiAcの250 mLでペレットを再サスペンドします。4°Cで5分間6,000 x gで培養をペレット。
   4. LiAcを取り外し、50%PEG 3350の9.6 mLでペレットを再サスペンドします。1M LiAc の 1.44 mL、2 mg/mL ニシン精子 DNA の 2 mL、pYep13 ゲノム ライブラリ (ATCC 37323) の 50 μg を追加します。滅菌水で体積を15mLに調整します。反転によって穏やかに混ぜる。
   5. 30°Cの水浴で30分間インキュベートする。
   6. 750 μL のジメチルスルホキシド (DMSO) を加えるため、変換効率を高めます。42°Cの水浴で30分間インキュベートし、10分ごとにやさしく反転して混ぜます。
   7. 室温で5分間3,000 x gで酵母をペレット。
   8. 上清を捨て、滅菌水10mLでペレットを再サスペンドします。室温で5分間3,000 x gのペレット。
   9. 滅菌水の8 mLでペレットを再サスペンドします。
   10. 変換効率を決定するために、SD^ウラ-Leu-グルコース寒天上の各希釈の1:10とプレート100μLを希釈する(ステップ1.8)。
   11. SDウラ上のサンプルのプレート200μL^- Leu^-ガラクトース寒天(ステップ1.9)プレート。全部で50枚のプレートを使用してください。
   12. 48-96時間またはコロニーが現れるまで30°Cでインキュベートする。
       注:コロニーは一般に48-72 hのグルコース寒天プレートと72-96時間のガラクトース寒天プレートに現れます。
3. SDウラのパッチコロニー(潜在的な^救助)- Leu^-ガラクトース寒天(ステップ1.9)を拡大し、在庫を作ります。24−48hのための30 °Cでインキュベートする。
4. パッチの一部を使用して、SD^ウラ-Leu-グルコーススープ(ステップ1.10)の5 mLを接種します。 150 rpmで振とうで26°Cで一晩インキュベートする。
   1. 滅菌水の180°Lを96ウェルプレート(A2-A6)の5ウェルに加えます。
   2. 混ぜる一晩培養物をボルテックス。
   3. 最初のウェル(A1)に酵母を180μL加えます。連続希釈1:10(未希釈を含む合計6サンプル)。
   4. マルチチャンネルピペットを使用して、SDウラ上の各希釈のスポット5 μL^-グルコースとSDウラ^-ガラクトース寒天プレート。コントロールとして単独で毒性エフェクターを含む。
   5. 48時間30°Cでインキュベートする。
5. 有毒エフェクターを単独で発現する酵母の成長を、潜在的なサプレッサーを含む酵母と比較する。エフェクターを単独で発現する酵母と比較して毒性を低下させた潜在的なサプレッサーのみ進む。

5. サプレッサーの特定と確認

1. SDウラの5 mLを接種^- Leu^-グルコーススープ(ステップ1.10)をステップ4.4から酵母の100μLで、150rpmで振とうして30°Cで一晩インキュベートする。
   1. 室温で2分間3,000 x gで酵母をペレット。ピペットを使って上清をそっと捨てます。
   2. メーカーの指示に従って、酵母プラスミドミニプレップキットでプラスミドを分離します。
2. 単離されたプラスミドを大腸菌の有能な細胞に変換し、カルベニシリンの100 μg/mLでLB寒天上の全体の形質転換をプレートします。24時間37°Cでインキュベートする。
3. 100 μg/mLのカルベニシリンを含むLBブロスの10 mLを接種し、プレートから3つのコロニーを含み、150rpmで振とうして一晩37°Cでインキュベートします。
   1. 室温で10分間3,000 x gでペレット培養。製造元の指示に従ってミニプレップ キットを使用してプラスミドを分離します。
4. プロトコルの第 3 部のステップに従って、ステップ 5.3.1 から単離されたプラスミドを使用して有毒酵母を再変換します。
   1. SDウラ^の5 mLを接種 - Leu^-変換プレートからコロニーを有するグルコーススープ。150 rpmで振とうで30°Cで一晩インキュベートする。
   2. ウラ上のスポット^- Leu^-グルコースとガラクトース寒天は、毒性の抑制を確認します。
5. pyep13 F (ACTACGCGATCATGGCGA) および pyep13 R (TGATGCCGGCCACGATGC) プライマーを使用して酵母 ORF を識別するシーケンス。

実際の酵母サプレッサースクリーンを実行する前に、目的のエフェクタータンパク質が酵母の毒性をテストする必要があります。これは、ガラクトース誘導性プロモーターの制御下で酵母に目的とするタンパク質を発現させることによって達成される。グルコースの成長(非誘導条件)は、まず、目的のタンパク質の発現に起因する毒性が特異的であり、一般的な欠陥ではないことを保証するために比較されるべきである。図3に示すように、毒性は小さなコロニーおよび/または減少した成長として現れる。酵母の成長の2-3の対数の減少は、酵母サプレッサースクリーンに最適です。

図4に示すように、毒性およびサプレッサー画面は、プロトコルセクションで説明されている方法を使用して8つのステップで達成することができる。目的の遺伝子は適切なベクター1にクローニングされ、得られた構成要素は酵母に変換され、毒性を評価する。本研究では、目的の遺伝子としてCT229を用い、ベクターとしてpYesNTA-Kanを用いった。また、Hisタグ付き融合タンパク質の発現をウェスタンブロッティングにより確認した。理想的には、ガラクトース含有媒体上で成長した酵母の2−3対数減少を観察すべきである。目的のタンパク質が酵母に対して毒性がある場合(図3および図4)、サプレッサースクリーンは、酵母ゲノムライブラリーpYep13で有毒株を変換することによって行うことができる。形質転換体は、グルコース寒天上でめっきされ、形質転換効率とガラクトース寒天を決定し、潜在的なサプレッサーを同定します。このプロトコルを使用して、銀河寒天上の合計10-250コロニーで5 x 10 5の最小変換効率を達成しました。SD Ura- Leu-ガラクトース寒天(図4)にこれらのコロニーをパッチすると、多くの偽陽性がパッチを当てたときに成長しないので、真のサプレッサーの同定に役立つ。ここで、50個のコロニーにパッチを適用し、エフェクター毒性を抑制した8つのクローンが得られた(図4)。SDウラ上のスポッティングサプレッサー- Leu-ガラクトース寒天は、毒性の抑制を確認するために行われました。図4に示すように、pSup1およびpSup2はエフェクタータンパク質の毒性を抑制し、一方、pSup3は抑制しなかった。したがって、pSup3は廃棄された。プラスミドは、その後、サプレッサーから単離され、プラスミド収率を増加させるために大腸菌に変換された。その後、プラスミドを毒性酵母に再変換して、単離されたプラスミドがエフェクター毒性を確実に抑制することを確認することができる(図4)。単離されたプラスミドのほとんどは毒性を助長すべきであるが、時折有毒酵母株に再変換されたときに毒性を抑制しないプラスミドが得られる。これらのプラスミドは廃棄され、再変換後に毒性を抑制するもののみを配列する必要があります。

単離されたプラスミドは、複数の酵母ORF4を含む。どちらが真のサプレッサーであるかを特定するために、各ORFを個別にクローン化し、前述の1、2、3、4に記載の有毒酵母株で発現させることができる。

図1:標的遺伝子のPCR増幅クラミジア・トラコマティス・セロバーL2からのCT229は、ゲノムDNAからPCR増幅した。PCR産物を臭化エチジウムで染色した1%アガロースゲル上で分析した。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

図2:pYesNTA-Kanプラスミドマップ目的の標的遺伝子をpYesNTA-Kanの多重クローニング部位(MCS)にクローニングし、大腸菌での選択にカナマイシンを用い、S.セレビシエでの選択にウラシルドロップアウトを用いた。Hisタグ付き融合タンパク質の発現をウェスタンブロッティングにより検証した。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

図3:代表的な酵母毒性結果目的のエフェクタータンパク質をpYesNTA-Kanにクローニングした配列検証済みプラスミドをS.セレビシエに変換し、形質転換体を連続的に希釈し、ウラに発見した-グルコースおよびガラクトース寒天は毒性を評価した。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

図4:酵母サプレッサー画面の概要目的の標的遺伝子をpYesNTA-Kanにクローニングし、プラスミドをS.セレビシエに変換した。形質転換体を連続的に希釈し、ウラに発見した -グルコースとガラクトース寒天は、毒性を評価するために。毒性エフェクタータンパク質を標的とする経路を同定するために、毒性タンパク質を発現する酵母株を酵ゲノムライブラリーで形質転換した。コロニーはウラ- Leu-ガラクトース寒天にパッチを当て、毒性を評価するために発見されました。プラスミドは、エフェクタータンパク質の毒性を抑制するものから単離した。プラスミドを有毒酵母株に再変換し、単離されたプラスミドがサプレッサーであることを確認した。サプレッサーからのプラスミドを配列し、存在する酵母OrFを同定した。この図の大きなバージョンを表示するには、ここをクリックしてください。

著者らは、競合する財政的利益がないことを宣言する。