患者由来グリオーマ幹細胞を用いたGBMの潜在的併用療法を同定するための迅速スクリーニングワークフロー

サマリー

神経膠腫幹細胞(GSC)は、最も流行し、壊滅的な原発性脳腫瘍である神経膠芽腫(GBM)における腫瘍開始、血管新生、薬剤耐性に不可欠な役割を果たす癌細胞のごく一部である。GSCの存在は、GBMを個々の標的剤のほとんどに非常に難治性にするため、潜在的な有効な組み合わせ治療薬を同定するためにハイスループットスクリーニング方法が必要です。プロトコルは、相乗的相互作用と潜在的な併用療法のための迅速なスクリーニングを可能にする簡単なワークフローを記述します。このワークフローの一般的なステップは、ルシメラーゼタグ付きGSCの確立、マトリゲルコーティングされたプレートの調製、併用薬物スクリーニング、分析、および結果の検証を行う。

要約

神経膠腫幹細胞(GSC)は、最も流行し、壊滅的な原発性脳腫瘍である神経膠芽腫(GBM)における腫瘍開始、血管新生、薬剤耐性に不可欠な役割を果たす癌細胞のごく一部である。GSCの存在は、GBMを個々の標的剤のほとんどに非常に難治性にするため、潜在的な有効な組み合わせ治療薬を同定するためにハイスループットスクリーニング方法が必要です。プロトコルは、相乗的相互作用と潜在的な併用療法のための迅速なスクリーニングを可能にする簡単なワークフローを記述します。このワークフローの一般的なステップは、ルシメラーゼタグ付きGSCの確立、マトリゲルコーティングされたプレートの調製、併用薬物スクリーニング、分析、および結果の検証を行う。

概要

神経膠芽腫(GBM)は、最も一般的で積極的なタイプの原発性脳腫瘍である。現在、最大治療(手術、化学療法、放射線療法の組み合わせ)を受けたGBM患者の全体的な生存期間は、まだ15ヶ月よりも短い。したがって、GBMのための新しく効果的な治療法が緊急に必要です。

GBMにおけるグリオーマ幹細胞(GSC)の存在は、これらのステム様細胞が腫瘍微小環境、薬剤耐性、および腫瘍再発¹の維持においてピボット役割を果たすため、従来の治療に対してかなりの課題を構成している。したがって、GSCをターゲットにすることは、GBM治療²の有望な戦略である可能性があります。しかし、GBMにおける薬物有効性の大きな欠点は、遺伝子変異、混合サブタイプ、エピジェネティック調節、腫瘍微小環境の違いを含むがこれらに限定されない異遺伝学的性質であり、治療のために非常に難治性となる。多くの臨床試験に失敗した後、科学者や臨床研究者は、単剤標的療法はおそらくGBMのような非常に異質な癌の進行を完全に制御することができないことに気づいた。一方、慎重に選択された薬物の組み合わせは、互いの効果を相乗的に増強することによってその有効性が承認されており、GBM治療のための有望な解決策を提供する。

CI(組合せ指数)、HSA(最高単一剤)、ブリス値など、薬物の組み合わせの薬物相互作用を評価する方法は多いが、^これらの計算方法は通常、複数の濃度の組み合わせに基づいている。実際、これらの方法は、薬物と薬物相互作用の肯定的な評価を提供することができますが、ハイスループットスクリーニングに適用される場合、非常に面倒なことができます。このプロセスを簡素化するために、患者GBMの外科的生検に由来するGSCの成長を阻害する潜在的な薬物組み合わせを迅速に同定するためのスクリーニングワークフローが開発された。各薬剤の相乗効果を定量化するために、期待される組み合わせ効果と観測された組み合わせ効果の差を反映した感度指数(SI)をこの方法に導入し、SIランキングで候補を容易に特定することができます。一方、このプロトコルは、20の小分子阻害剤の中で、GBM治療のための第一線化学療法であるテモゾロミドと抗グリオーマ効果を相乗効果できる潜在的な候補を特定するスクリーンの例を示しています。

プロトコル

GBM検体は、南京医科大学第一付属病院の人間研究倫理委員会による完全なインフォームド・コンセントを得た後、定期的な手術中に患者から取得した。

1. 患者由来GSCの分離と培養

1. 無菌PBSで満たされた15 mL遠心分離管に新鮮な外科的に切除された神経膠芽腫組織を入れ、さらに手術するまで氷の上に組織を保管する。
2. 脱解はさみを使用して約0.5〜1mmの直径の部分にGBM組織をミンチし、生体安全キャビネット内の細胞の破片を除去するために神経基底媒体で組織標本を洗浄する。
3. 37°Cで1mg/mLコラゲターゼAで組織断片を消化し、遠心分離機を400xgで4°Cで5分間消化します。
4. 上清を取り除き、白紙の神経基底培地でペレットを懸濁し、氷の上で繰り返しピペットを入れてペレットを機械的に解化します。
5. GSC培養培地を充填した超低結合6ウェル培養プレート(レシピについては表1)で、5%CO2と湿度90%の37°Cで、神経圏形成まで培養する。
6. 十分な神経球形成では、1.5 mLマイクロチューブ内のピペットを使用し、室温で5分間800 x g の遠心分離機を使用して収集します。
7. ペレットを再懸濁し、一次GSCを維持するために上記の培地で満たされたいくつかのフラスコに分割する。
   注:例で使用される患者由来のGSCは、WHOグレードIV再発GBMを有する34歳の男性患者の外科的生検に由来した。GSCは、将来の実験のためにXG387と命名されました。上記のGSCに対してPCRベースのマイコプラズマ試験を実施し、マイコプラズマ汚染がないことを確認した。このプロトコルで使用されるGSCを含むすべての実験は、15個のパッセージ<行った。

2. ルシメラーゼタグ付きGSCの準備

1. 培地培養からGSCを回収し、室温で3分間70 x g で遠心分離します。
2. 上清を取り除き、37°Cで4分間アキュターゼで細胞を消化する。 200 μL のチップとピペットを繰り返し使用して、細胞ペレットの解約と再中断を行います。
3. 12ウェル培養プレートでウェル当たり2 x 10^5細胞 に希釈し、細胞を一晩培養する。
4. プレート内の各ウェルに30 μLルシメラーゼ-EGFPウイルス上清(力素>10⁸ TU /mL)を加え、25°Cで2時間1,000 x g の細胞を遠心分離します。 細胞を一晩培養する。
5. 翌日培地をリフレッシュし、さらに48時間培養します。
6. GFP陽性細胞の外観を確認するために、フローレス顕微鏡下で細胞を観察します。
7. フローセルソーターを使用して、GFP蛍光が高いGSCを選別して選択し、細胞をさらに培養します。

3. 細胞生存率のバイオ・ルミネッセンスベースの測定

1. 細胞外マトリックス(ECM)混合物を含むコーティングプレート(例えば、マトリゲル):各ウェルに0.15mg/mL ECM混合物の40 μLを加え、37°Cで1時間プレートをインキュベートします。 余分なECM混合物を取り除き、PBSで一度穏やかにすすいだ。
2. 15,000、10,000、8,000、6,000、4,000、2,000、1,000、および500 XG387-Luc細胞を含む100 μL培養培地を100 μLのブランク培地と共に加え、それぞれ6回のウェル底プレート培養で6回の複製を行います。
3. 上清を取り除き、150 ng/μL D-ルシフェリンを含む50μLの培地を各ウェルに加え、37°Cで5分間培養します。
4. IVISスペクトルイメージングシステムを使用して、プレート内の細胞のバイオ発光の画像を撮ります。内蔵のソフトウェアを使用して、対象領域(ROI)の複数の円形領域を作成し、細胞のバイオ発光を定量化します。

4. テモゾロミド治療と併用スクリーニング

1. 処理前に、上記の4つの96ウェルプレートをプレコートする。
2. XG387-Luc細胞を100μL培養培地中の1,000個の細胞の密度で96ウェルの光学底板の各ウェルに入れ、細胞を一晩培養します。
3. テモゾロミドと対象薬剤をストック溶液から事前に準備します。800 μM、600 μM、400 μM、300 μM、200 μM、100 μM、および 50 μM のテモゾロミドを単剤処理用培地に濃縮シリーズを用意します。培養液中のセストック溶液中のテモゾロミドと標的剤を希釈し、それぞれ、併用薬物スクリーニング用に200μMおよび2μMの最終濃度を得た(表2)。
4. ほとんどのGSCがプレートの底に付着したら、培養培地を取り除きます。テモゾロミドを含む上記の調製された培地を各井戸に加え、治療ごとに3回の技術的複製を行います。
5. テモゾロミドを治療し、薬物の組み合わせをスクリーニングするには、ブランク培地を除去し、200 μMテモゾロミド、または2μM標的剤、または各ウェルに両方の組み合わせを含む上記の調製培地を追加して、1回の治療につき3回の技術的複製を行います。
6. 37°C、5%のCO2で3日間、すべてのプレートをインキュベートします。
7. 薬物含有培地を取り出し、150ng/μL D-ルシフェリンを含む50μLのブランク培地を各ウェルに加え、37°Cで5分間培養します。
8. IVISスペクトルイメージングシステムを使用して、プレート内の細胞のバイオ発光の画像を撮ります。内蔵のソフトウェアを使用して、複数の円形ROIを作成し、細胞のバイオ発光を定量化します。

5. XG387-LucおよびXG328-Luc細胞株におけるテモゾロミドとUMI-77の併用処理

1. 上記のとおり、治療前に3つの96ウェルプレートをプレコートする。
2. 種子XG387-LucおよびXG328-Luc細胞は、それぞれ100μLの培養培地中の密度1,000個の細胞を96ウェルの光学底板の各ウェルに入れ、細胞を一晩培養した。
3. 600 μMから構成される濃度シリーズを準備し、 400 μM、300 μM、200 μM、100 μM、50 μM、および0 μMのテモゾロミドと、6 μM、4 μM、3 μM、2 μM、1 μM、0.5 μM、および0 μMの培地で構成される濃度シリーズ
4. ほとんどのGSCがプレートの底部に付着している場合は、ブランクメディアを取り外します。治療ごとに3つの技術的な複製のために各井戸に上記の準備された媒体を追加します。
5. これらのプレートを37°C、5%CO2で3日間インキュベートします。
6. 薬物含有培地を除去する;150 ng/μL D-ルシフェリンを含む50μLのブランク培地を各ウェルに加え、37°Cで5分間細胞をインキュベートして生物発光測定を行います。

6. データ分析

1. 図2Aの式に従って、テモゾロミドおよび標的剤の感度指数(SI)スコアを計算する。
   注:SIスコアは、別の薬物の添加の影響を定量化することです。それは-1から+1の範囲で、正の値はテモゾロミド相乗効果を示した。
2. CompuSynソフトウェアを使用してテモゾロミドとUMI-77の間の組み合わせインデックス(CI)値を計算し、それらの組み合わせ相互作用を分析します。CI 値 <1 は相乗効果を示します。CI 値 >1 は拮抗を示します。
3. Combenefitソフトウェアを使用して、テモゾロミドとUMI-77の間の高い単一エージェント(HSA)値を計算します。HSA値は、組み合わせた阻害効果を示す。HSA値>0は相乗効果を示し、HSA値<0は拮抗を示す。

結果

XG387細胞は、超低添付着6-ウェル培養板または非被覆板⁵で表1に記載の培養培地に神経球を形成した(図1A)。まず、XG387-Luc細胞からのバイオ発光強度が細胞数に比例したかどうかを確認する試験を行った。図1Bに示すように、生物発光強度は細胞密度に比例して増加し、それらの間に線形補正をもたらした(Pearson r = 0.9872;p < 0.0001;図1C)。ルシファーゼタグ付き細胞の生体発光は測定が容易かつ迅速であるため、これは、実行可能なGSCの密度を測定する簡単な方法を提供します。次に、テモゾロミドの抗増殖活性を評価した。図1Dに示すように、400μMのテモゾロミドはXG387-Luc細胞の約20%増殖阻害を引き起こし、有用であるが、その抗GBM効果はさらに改善され得る。組み合わせスクリーニングに...

ディスカッション

本研究では、患者由来のGSCを用いたGBMの潜在的な併用療法を同定するために適用できるプロトコルについて説明した。Loewe、BLISS、HSAの方法などの標準的な相乗効果/加算率メトリックモデルとは異なり、従来の方法として完全な要因論的方法で複数の濃度で組み合わせる薬物ペアを必要としないシンプルで迅速なワークフローが使用されました。本ワークフローにおいて、siRNAの感作効果を小分子阻害剤と組み合わせて評価する研究から生じたSI(感度指標)は、2つの小分子阻害剤の相乗効果を定量化するために導入された^。SI値の範囲は-1~1で、陽性のSI値は各薬剤間の感作効果を示す。SI値が高いほど、相乗効果は強くなります。SI値だけでは、薬物と薬物相互作用の種類(相乗的、添加剤、または拮抗的)に関する肯定的な答えを提供することができないが、それらのトップランクの候補者は関心のある薬物と相乗する可能性が高く、したがってさらなる検証に値する。それに比べて、現在のハイスループット薬物併用スクリーニング方法論のほとんどは依然として面倒であり、難しいアルゴリズム

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
B-27	Gibco	17504-044	50X
EGF	Gibco	PHG0313	20 ng/ml
FGF	Gibco	PHG0263	20 ng/ml
Gluta Max	Gibco	35050061	100X
Neurobasal	Gibco	21103049	1X
Penicillin-Streptomycin	HyClone	SV30010	P:10,000ユニット/ml    S: 10,000 ug/ml
ピルビン酸ナトリウム	Gibco	2088876	100 mM
表 1.ザ 処方 GSCの 完全な培地。
ABT-737	MCE		セレクティブ&BH3模倣 Bcl-2, Bcl-xL および Bcl-w 阻害剤
アダボセルチブ(MK-1775)	MCE		Wee1 阻害剤
アキシチニブ	MCE		マルチターゲットチロシンキナーゼ阻害剤
AZD5991	MCE		Mcl-1 阻害剤
A 83-01	MCE		TGF-&β; I型受容体の強力な阻害剤 ALK5キナーゼ
CGP57380	Selleck		Potent MNK1 阻害剤
ダクトリシブ(BEZ235)	セレック		デュアルATP競争力 PI3K および mTOR 阻害剤
ダサチニブ	MCE		デュアル Bcr-AblおよびSrcファミリーチロシンキナーゼ
阻害剤エルロチニブ	MCE		EGFR チロシンキナーゼ阻害剤
ゲフィチニブ	MCE		EGFR チロシンキナーゼ 阻害剤
リニファニブ	MCE		マルチターゲット阻害剤  ベグフール および PDGFR ファミリー
マシチニブ	MCE		阻害剤 c-Kit
ML141	Selleck		非競合阻害剤 Cdc42 GTPase
OSI-930	MCE		Kit、KDRおよびCSF-1Rのマルチターゲット阻害剤
パルボシクリブ	MCE		選択的 CDK4 および CDK6 阻害剤
SB 202190	MCE		選択的 p38 MAPキナーゼ 阻害剤
化セパントロニウム(YM-155)	MCE		サバイビン 阻害剤
TCS 359	Selleck		Potent FLT3 inhibitor
UMI-77	MCE		Selective MCL-1 阻害剤
4-ヒドロキシタモキシフェン(アフィモキシフェン)	セレック		選択 エストロゲン受容体(ER) 変調器
表2。テスト画面で使用された 20 の対象エージェントの情報。これらはすべて、標的選択的低分子阻害剤です。プロバイダー、名前、およびターゲットは表に記載されています。