方法論記事

遺伝子およびタンパク質発現解析のためのマウス肩甲間褐色脂肪組織からの褐色脂肪細胞の単離(英語)

DOI：

10.3791/62332

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2021年3月12日

 ,  , 
1Masonic Medical Research Institute

この記事について

サマリー

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この研究では、遺伝子およびタンパク質発現解析のためにマウス褐色脂肪細胞を単離する新しい方法について説明します。

要約

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褐色脂肪組織(BAT)は哺乳類の非震え熱発生に関与しており、褐色脂肪細胞(BA)はBATの機能単位です。BAは多房性脂肪滴と豊富なミトコンドリアの両方を含み、脱共役タンパク質1(UCP1)を発現します。BAは、その起源に基づいて、胚由来の古典的BA(cBA)と白色脂肪細胞由来のBAの2つのサブタイプに分類されます。BAは密度が比較的低いため、従来の遠心分離法ではBATから分離できません。本研究では、遺伝子およびタンパク質発現解析のためにマウスからBAを単離する新しい方法を開発しました。このプロトコルでは、成体マウスの肩甲骨間BATをコラゲナーゼおよびディスパーゼ溶液で消化し、解離したBAを6%ヨージキサノール溶液で濃縮した。次に、単離したBAをTrizol試薬で溶解し、RNA、DNA、およびタンパク質を同時に単離しました。RNA単離後、ライセートの有機相をタンパク質抽出に使用した。私たちのデータは、6%ヨージキサノール溶液がフォローアップ遺伝子およびタンパク質発現研究を妨げることなくBAを効率的に濃縮することを示しました。血小板由来成長因子(PDGF)は、間葉系細胞の増殖および増殖を調節する成長因子である。褐色脂肪組織と比較して、単離されたBAは Pdgfaの発現が有意に高かった。要約すると、この新しい方法は、褐色脂肪細胞の生物学を単一の細胞型レベルで研究するためのプラットフォームを提供します。

概要

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マウスとヒトの両方に、白色脂肪組織(WAT)と褐色脂肪組織(BAT)の2種類の脂肪組織があります1。WATは白色脂肪細胞に中性脂肪の形でエネルギーを蓄え、BATの褐色脂肪細胞(BA)は化学エネルギーを熱2として放散します。BAは、その発生起源に基づいて、胚発生中に形成される古典的なBA(cBA)と、ストレス条件下で白色脂肪細胞から変換された白色脂肪細胞由来のBA(ベージュ/ブライト細胞)にさらに分類されます3。BAは多房性であり、熱発生タンパク質脱共役タンパク質1(UCP1)4を発現します。肩甲骨間BAT(iBAT)デポーは、小型哺乳類の主要なcBAデポの1つです5が、ベージュ色の細胞はWAT6内に分散しています。

エネルギーを散逸させる性質上、BAは肥満を減らすための治療標的として多くの注目を集めています7。肥満の治療を目的としてBAを利用するためには、BAの機能、生存、および動員を制御する分子メカニズムを理解することが不可欠です。BATおよびWATを含む脂肪組織は不均一である。脂肪細胞を除いて、脂肪組織には内皮細胞、間葉系幹細胞、マクロファージなど、他の多くの細胞タイプが含まれています8。UCP1::Creライン9など、マウスBAの候補遺伝子を特異的に枯渇させる遺伝的ツールが利用可能であるが、BATまたはWATからBAを精製する技術は限られており、単一細胞レベルでBAを研究することは困難である。さらに、純粋なBAを取得しないと、BAと非BAの関係が明確に描写されません。例えば、血小板由来成長因子受容体α(PDGFRα)は、未分化間葉系細胞のマーカーとして使用されており、BATの内皮細胞や間質細胞で発現しています。低温ストレスBATでは、PDGFRα陽性前駆細胞が新しいBA10を生じさせる。PDGFRαは、間葉系細胞の成長および増殖を調節する成長因子であるリガンドPDGFによって活性化される11;しかし、BAがPDGFを分泌することによってPDGFRα陽性前駆細胞の挙動に影響を与えるかどうかは不明である。

最近、蛍光活性化セルソーティング(FACS)12に基づくBAs分離プロトコルが公開されました。このプロトコルでは、3%ウシ血清アルブミン(BSA)溶液を使用してBAを非BAから分離し、濃縮BAをFACSでさらに精製しました。このプロトコルの適用は、機器とFACSの両方の操作経験に依存するFACSプロセスの要件によって制限されます。本研究では、BATからBAを分離するための新しいプロトコルが開発されました。このプロトコルによって単離されたBAは、遺伝子およびタンパク質発現研究に直接使用できます。さらに、この研究のデータは、BAが主要なPDGFリソースであることを示唆しています。

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プロトコル

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すべてのマウスは病原体のない状態で維持され、すべての手順はフリーメーソン医学研究施設動物管理および使用委員会(IACUC)によって承認されました。UCP1::Cre9 およびRosa 26tdTomatoes マウス系統13 が以前に報告された。すべてのマウスを12時間の明暗サイクルで室温に保ちました。

1.溶液と褐色脂肪組織(BAT)の準備

  1. 消化液と分離液を15 mL遠沈管で調製します。
  2. 10 mLのBAT消化溶液:10 mLの滅菌リン酸緩衝生理食塩水(PBS)に、3.5 mg / mLのディスパーゼII、1 mg / mLのコラゲナーゼII、および10 mM CaCl2 を加えてBAT消化溶液を作ります。
  3. 10 mLの12%ヨージキサノール溶液(分離溶液):1 mLの10x PBS、2 mLの60%ヨージキサノール、0.01 mLの1 M MgCl 2、0.025 mLの1 M KCl、0.1 mLの0.2 Mエチレンジアミン四酢酸(EDTA)および6.865 mLのddH2 Oを混合して、12%のヨージキサノールを得る。
  4. 1匹の成体マウスをCO2 過剰摂取で安楽死させる。簡単に説明すると、マウスケージを1分当たり10〜30%ケージ容積の変位率で100%CO2 で満たす。 5分後、目に見えて呼吸がないことを確認して死亡を確認する。
  5. 動物を解剖し、肩甲骨間BATを収集します。実体顕微鏡でWATと筋肉層を取り除きます。
  6. 十分な消化を行うには、各BATローブを~3 mm3 の部分にカットし、金属攪拌子と5 mL消化溶液を入れた清潔な50 mLフラスコに入れます。消化を開始する前に、BATと消化バッファーを含むフラスコを氷上に1時間置きます。
    注:次の手順では、褐色脂肪細胞の分離に約80 mg BATを使用しました。

2. BAの分離手順

  1. インキュベーターに封入されたマグネチックスターラーにフラスコを置きます。攪拌速度をそれぞれ60rpmに、インキュベーターの温度を35°Cに設定する。消化は約30分間続きます。消化中にBATスライスがスターラーバーの周りに塊を形成する場合は、1 mLピペットチップを使用して凝集組織を破壊します。
  2. 清潔な50 mL遠心チューブの上に70 μmのストレーナーフィルターを置きます。約4 mLの細胞懸濁液をストレーナーに通してピペットで入れます。4 mLの12%ヨージキサノール溶液でストレーナーを洗浄します。ピペットを上下に動かして、細胞とヨージキサノール溶液を混合します。細胞混合物を2本の透明な5 mLポリスチレン試験管に移します。
    注:消化の終わりには、消化溶液は濁っているはずで、十分な消化を示しています。毎回新鮮な消化液を使用してください。調製したら、消化溶液は2時間以内に使用する必要があります。
  3. 消化が十分でない場合は、手順2.2と2.3をもう一度繰り返します。
  4. 分離溶液とBAが入った透明なポリスチレンチューブを氷上に1時間放置します。BAは上部にレイヤーを形成します。
  5. 顕微鏡検査のために20 μLの単離されたBAを取り出します。

3. BAからのRNAおよびタンパク質の単離

  1. BA層を2本の1.7 mLマイクロ遠心チューブにピペットで入れ、RNAとタンパク質を分離します。BAs層を乱すことなく、過剰なヨージキサノール溶液を慎重に除去します。
  2. 1 mLのトリゾールを加えて、RNA、DNA、タンパク質を同時に細胞溶液に分離します。細胞を溶解するのに十分に混合する。
  3. 200 μLのクロロホルムを加えて相を分離します。
  4. チューブを9,981 x g 、4°Cで10分間遠心分離します。
  5. 遠心分離後、RNA単離には水相を使用します。本研究では、逆転写には全RNAを用い、リアルタイムPCRを用いて定量RT-PCRを実施した。プライマー配列は 材料表に記載されています。
  6. 300 μLの有機相を2 mLの微量遠心チューブに移します。
  7. 有機相に、2.5容量の100%エタノールとボルテックスを10秒間加えます。
  8. 200 μLの1-ブロモ-3-クロロプロパンを加え、10秒間ボルテックスします。
  9. 600μLの二重蒸留水とボルテックスを10秒間加えます。
  10. 混合溶液を室温で10分間放置する。
  11. 9,981 x g で4°Cで10分間遠心分離します。 このステップで、フェーズが分離されます。タンパク質相は中間層に局在する。
  12. 一番上の水溶液を取り除きます。残りの溶液に1 mLの100%エタノールを加えます。
  13. 10分間遠心分離、9,981 x g、4°C。 遠心分離後、タンパク質ペレットが形成されます。上澄み液を捨てる。
  14. ペレットを1mLの100%エタノールで洗浄する。
  15. 10分間遠心分離、9981 x g、4°C。 ペレットを保存し、上清を廃棄する。
  16. ペレットを室温で10分間風乾します。
  17. ウェットペレットの重量を測定します。20 μL/mgペレットの比率で1%SDS溶液を追加します。
  18. チューブを加熱シェーカーに入れてペレットを溶解します。温度を55°C、速度を11 x gに設定します。タンパク質ペレットを完全に溶解するのに通常5〜10分かかります。
    注:溶解タンパク質の濃度は、BCAアッセイ14によって測定することができる。

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結果

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褐色脂肪細胞単離のための肩甲間BATの調製
褐色脂肪細胞(BA)の単離プロセスを 図1Aに示します。BATおよび消化/分離溶液の調製から単離されたBAの取得までのプロセス全体には、約4時間かかります。

成体マウスでは、肩甲骨間領域に豊富なBATが存在する。この肩甲骨間BAT(iBAT)は、筋肉層とWATで覆われています(図1B)。消化手順を開始する前に、筋肉層とWATを除去して、きれいなiBATを生成する必要があります(図1C)。公開されているBA分離プロトコルでは、ミンチBATがBA分離12に使用されました。この研究では、3 mm3 サイズのBATを消化すると(図1D)、ミンチBATよりも多くのBAが得られました。

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ディスカッション

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本研究では、遺伝子およびタンパク質発現解析のためのBAを単離する新しい方法を開発しました。

公開されているBA分離プロトコルでは、3%BSA溶液を使用してBA12を濃縮しました。それにもかかわらず、この公開されたプロトコルによって達成された濃縮BAは、タンパク質発現分析に直接使用することはできませんでした。これは、BAs溶液に存在する濃縮BSAがフォローアップタンパク質抽出を妨げるためです。3% BSA溶液で濃縮されたBAをTrizol試薬で処理すると、粘着性のあるタンパク質凝集体が形成され、その大部分はGTPCタンパク質抽出プロセスに溶解しませんでした。さらに、GTPCタンパク質抽出産物では、タンパク質の大部分がBSAであった(図3B)。この新しいプロトコルでは、BAを精製するために3%BSA分離溶液を6%ヨージキサノールに置き換えました。6%ヨージキサノール溶液はBAを非BAから効率的に分離し、単離されたBAは形態を維持していました(

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謝辞

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Z. Linは、国立衛生研究所HL138454-01とフリーメーソン医学研究所の資金によって支援されました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
抗体
抗原CompanyCatalog
PPARγLSBioLS-C368478
PDGFRaサンタクルーズsc-398206
UCP1R&DシステムIC6158P
Chemical and solutions
コラゲナーゼ、タイプIIサーモフィッシャーサイエンティフィック17101015
1-ブロモ-3-クロロプロパンSigma-AldrichB62404
ウシ血清アルブミン(BSA) GoldbioA-421-10
塩化カルシウムBio BasicCT1330
クロロホルムIBI ScientificIB05040
Dispase II, proteaseSigma-AldrichD5693
EDTABio BasicEB0107
エタノールIBI ScientificIB15724
LiQuant Universal Green qPCRMaster MixLifeSctLS01131905Y
塩化マグネシウム六水和物Boston BioProductsP-855
OneScrip Plus cDNA Synthesis SuperMixABMG454
OptiPrep (Iodixanol)Cosmo Bio USAAXS-1114542
PBS (10x)Caisson LabsPBL07
PBS (1x)Caisson LabsPBL06
Pierce BCAタンパク質アッセイキットサーモフィッシャーサイエンティフィック23227
塩化カリウムボストンバイオプロダクツP-1435
SimplyBlue safe StainInvitrogenLC6060
ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)Sigma-Aldrich75746
Trizol 試薬ライフテクノロジー15596018
Primers
遺伝子名(種) フォワードリバース
Pdgfra(マウス)CTCAGCTGTCTCCTCACAgGCAACGCATCTCAGAGAAAAGG
pdgfa(マウス)TGTGCCCATTCGCGCAGGAAGAGTTGGCCACCTTGACACTGCG
36B4(マウス)
Ucp1ACTGCCACACCTCCAGTCATTCTTTGCCTCACTCAGGATTGG
strong>Equipment
名前会社名Application
Keyence BZ-X700KeyenceImaging brown adipocytes
Magnetic stirrerVWRDissociate BAT
QuantStudio 6 Flex Real-Time PCR SystemAppliedバイオシステム定量PCR
Odyssey Fc イメージングシステムLI-CORウェスタンブロットイメージング
TGCTGAACATCTCCCCCTTCTCTCTCTCTCTCTCTCTCTCTCTCGCCAGGAC <

参考文献

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  1. Zwick, R. K., Guerrero-Juarez, C. F., Horsley, V., Plikus, M. V. Anatomical, physiological, and functional diversity of adipose tissue. Cell Metabolism. 27, 68-83 (2018).
  2. Symonds, M. E. Brown adipose tissue growth and development. Scientifica. 2013, Cairo. 305763(2013).
  3. Giralt, M., Villarroya, F. White, brown, beige/brite: Different adipose cells for different functions. Endocrinology. 154, 2992-3000 (2013).
  4. Cannon, B., Nedergaard, J. Brown adipose tissue: function and physiological significance. Physiological Reviews. 84, 277-359 (2004).
  5. Cinti, S. The adipose organ. Prostaglandins, Leukotrienes and Essential Fatty Acids. 73, 9-15 (2005).
  6. Wu, J., et al. Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and human. Cell. 150, 366-376 (2012).
  7. Cypess, A. M., Kahn, C. R. Brown fat as a therapy for obesity and diabetes. Current Opinion in Endocrinology, Diabetes and Obesity. 17, 143-149 (2010).
  8. Schoettl, T., Fischer, I. P., Ussar, S. Heterogeneity of adipose tissue in development and metabolic function. Journal of Experimental Biology. 221, (2018).
  9. Kong, X., et al. IRF4 is a key thermogenic transcriptional partner of PGC-1α. Cell. 158, 69-83 (2014).
  10. Lee, Y. H., Petkova, A. P., Konkar, A. A., Granneman, J. G. Cellular origins of cold-induced brown adipocytes in adult mice. The FASEB Journal. 29, 286-299 (2015).
  11. Kim, W. -S., Park, H. -S., Sung, J. -H. The pivotal role of PDGF and its receptor isoforms in adipose-derived stem cells. Histology and Histopathology. 30 (7), 793-799 (2015).
  12. Hagberg, C. E. Flow cytometry of mouse and human adipocytes for the analysis of browning and cellular heterogeneity. Cell Report. 24, 2746-2756 (2018).
  13. Madisen, L., et al. A robust and high-throughput Cre reporting and characterization system for the whole mouse brain. Nature Neuroscience. 13, 133-140 (2010).
  14. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical biochemistry. 150, 76-85 (1985).
  15. Chey, S., Claus, C., Liebert, U. G. Improved method for simultaneous isolation of proteins and nucleic acids. Analytical Biochemistry. 411, 164-166 (2011).
  16. Ford, T., Graham, J., Rickwood, D. Iodixanol: A nonionic iso-osmotic centrifugation medium for the formation of self-generated gradients. Analytical Biochemistry. 220, 360-366 (1994).
  17. Kovacovicova, K., Vinciguerra, M. Isolation of senescent cells by iodixanol (OptiPrep) density gradient-based separation. Cell Proliferation. 52, 12674(2019).
  18. Lock, M., et al. versatile manufacturing of recombinant adeno-associated viral vectors at scale. Human Gene Therapy. 21, 1259-1271 (2010).
  19. Marin, R. D., Crespo-Garcia, S., Wilson, A. M., Sapieha, P. RELi protocol: Optimization for protein extraction from white, brown, and beige adipose tissues. MethodsX. 6, 918-928 (2019).
  20. Sonna, L. A., Fujita, J., Gaffin, S. L., Lilly, C. M. Invited Review: effects of heat and cold stress on mammalian gene expression. Journal of Applied Physiology. 92, 1725-1742 (2002).
  21. Gensch, N., Borchardt, T., Schneider, A., Riethmacher, D., Braun, T. Different autonomous myogenic cell populations revealed by ablation of Myf5-expressing cells during mouse embryogenesis. Development. 135, 1597-1604 (2008).

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