ホフマン反射(H反射)に基づく痙縮の臨床的評価と末梢神経の電気刺激の使用は確立された方法です。ここでは、マウス前足のH反射定量化のための終末神経刺激と直接神経刺激のプロトコルを提供します。
このコンテンツを表示するには、JoVEへの購読が必要です。 または、無料トライアルをお申し込みください。
この記事について
サマリー
要約
ホフマン反射(H反射)は、伸張反射の電気的類似物として、脊髄損傷や脳卒中などの損傷後の神経回路の完全性の電気生理学的検証を可能にします。H反射反応の増加は、非随意筋収縮、病理学的に増強された伸張反射、対応する筋肉の筋緊張亢進などの症状とともに、脳卒中後痙縮(PSS)の指標です。
やや神経非特異的な経皮的測定とは対照的に、ここでは、前足の尺骨神経と正中神経でのH反射を直接定量化するプロトコルを提示します。直接刺激とさまざまな神経への適応に基づいて、この方法は、痙縮関連疾患モデルの電気生理学的変化を検証するための信頼性が高く用途の広いツールです。
概要
生理学者ポール・ホフマンにちなんで名付けられたホフマン反射(H反射)は、同じ筋肉から生じて導く感覚ニューロンと運動ニューロンの軸索を運ぶ末梢神経の電気刺激によって誘発することができます。これは、モノシナプス伸張反射の電気的に誘発された類似体であり、同じ経路1を共有しています。筋肉のストレッチとは異なり、H反射は電気刺激から生じます。末梢神経が低電流強度で電気的に刺激される場合、Ia求心性線維は、その大きな軸索直径2のために典型的に最初に脱分極される。それらの活動電位は、脊髄のアルファ運動ニューロン(αMN)を興奮させ、それが次にαMN軸索を下って筋肉に向かって移動する活動電位を誘発します(図1)。このカスケードは、いわゆるH波に反映される小さな振幅の筋肉反応を生成します。刺激強度を徐々に増加させることにより、追加の運動単位の動員によりH波の振幅が増加する。ある刺激強度から、αMNの細い軸索の活動電位が直接誘発され、M波として記録されます。このM波は、H波よりも短いレイテンシで現れます(図2)。刺激強度をさらに高めると、より多くのαMN軸索の動員によりM波の振幅が大きくなるのに対し、H波は徐々に小さくなる。H波は、αMN軸索の活動電位のアンチドロミックバックプロパゲーションにより、高い刺激強度で抑制することができます。これらのトリガーされた活動電位は、Ia刺激からの電位と衝突し、したがって互いに打ち消し合う可能性があります。最大刺激強度を超えると、オルソドロミック(筋肉に向かって)およびアンチドロミック(脊髄に向かって)活動電位がすべてのMN軸索に発生します。前者は最大M波振幅(Mmax)を生じさせ、後者はH反射3を完全に廃止する。
脳卒中後の痙縮(PSS)または脊髄損傷(SCI)の評価には、ヒトの運動および痙縮の神経基盤を評価するためにH反射が使用されてきました1。測定間および被験者間のH反射の変化の定量化の改善は、H波とM波の比率(H / M比)を使用することによって達成されます。あるいは、速度依存性うつ病(RDD)は、上昇周波数のセット(例えば、0.1、0.5、1.0、2.0、および5.0Hz)を使用して測定される。RDDは、脳卒中またはSCIによって乱される可能性のある抑制性回路の完全性を反映しています。すべての神経回路が無傷の場合、H反射の均一で周波数に依存しない抑制があります。しかし、脳卒中またはSCIの結果として神経抑制が低下する場合、H反射の抑制は刺激頻度の増加とともに減少する4。
表面電極を使用した正しい電気生理学的記録は困難な場合があり、運動課題、抑制メカニズム、およびαMN興奮性の影響を受ける可能性があります5。げっ歯類の経皮的記録では、刺激電極が脛骨神経の近くに配置され、記録電極が前足の関連する筋肉の近くに配置されます。しかし、私たちの経験によれば、経皮電極の正しい配置(図1A)は、げっ歯類ではヒトの表面電極の配置よりもさらに複雑で可変です。これは、H反射を引き出すために必要な長さ、周波数、および刺激強度の違いにつながる可能性があります。これらの方法論的課題は、H反射測定研究の数が非常に限られている理由を説明することができます(たとえば、実験的脳卒中モデル3,4、およびその他の痙縮モデル6。個々の神経に対するH反射の正確な(長期の)刺激および記録は、原則として、標的神経を囲む埋め込み型電極を用いて達成することができる7,8。動物に潜在的な副作用とプローブの潜在的な不安定性を伴う困難な手術のために、このアプローチは現場では標準にはなりませんでした。ここで紹介する方法には、ある程度の外科的専門知識も必要です。しかし、それは、隣接する神経の同時刺激を回避する低刺激強度を使用して、in vivoで孤立した神経の新規で正確な刺激と記録を可能にします。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
プロトコル
すべての実験は、ヨーロッパおよび国内の動物飼育法および施設のガイドラインに準拠して実施され、ノルトラインヴェストファーレン州自然管理局(Az:81-02.04.2019.A309)によって承認されました。このプロトコルは、成体マウス(約8〜16週齢のC57Bl / 6Jマウス)および前肢の記録に最適化されています。後肢のそれぞれの神経を刺激し、後肢の筋肉を記録することで簡単に適応できます(図1B)。記録および刺激電極の説明は、 材料の表に追加されています。このプロトコルは端末測定にのみ使用されることに注意してください。
1. 事前準備
- 動物の体重を量り、ケタミン(100 mg / kg)とキシラジン(10 mg / kg)の混合物をi.p. 経由で 注射して麻酔を開始します。
- 外科的耐性に達するまで、マウスを加温ボックスに入れたままにします。マウスが落ち着いて呼吸が安定し、反射神経がなくなるまで数分待ちます。つま先のつまみに対する反応の欠如を測定することにより、麻酔の深さを確認します。
- マウスの背中を回し、加熱パッドの上に置きます(直腸温度プローブを使用したフィードバック制御加熱が最適です)。前足をテープで固定します。ここでは、測定電極が前足に簡単に挿入されるようにテープが配置されていることを確認してください。
- 直腸プローブを挿入して動物の体温を測定し、テープで固定します。目の乾燥を防ぐために目の軟膏を塗ります。
2.手術
注:麻酔をかけた動物の安定した状態、すなわち呼吸、体温、反射神経の喪失は、手順全体を通して定期的に監視する必要があります。前足の橈骨/尺骨/正中神経の直接神経H波測定手順が示されています(図3A)。測定は、修正を加えて後足(坐骨神経/脛骨神経)に適合させることもできます。
- 手術部位の全体像を把握するには、事前に別の場所にある電気かみそりまたはハサミで毛を取り除きます。より経験豊富な外科医にとって、これはオプションにすぎません。
注:これは最終実験であるため、ここでは消毒は必要ありません。動物は後で安楽死させます。 - ピンセットで皮膚を持ち上げ、前足の腹後軸(脇の下と胸部の上の領域)に沿って皮膚を細かい丸いハサミで約1 cm切開します。
- 結合組織を慎重に取り除き、その下の筋肉と神経を露出させます。露出した前胸筋を鉗子を用いて除去し、正中神経にアクセスする(図3E、F)。軟部組織で少量の血液や組織液を取り除きます。
- 次のステップでは、乳房または腋窩の筋肉を上から下に慎重に切断して、下の神経束を露出させます。約1.5 cmの長さにわたって結合組織および筋肉組織から神経束を解放します。
注:ここでは、正中神経と平行に走る血管を傷つけないように特に注意する必要があります。組織を切断するときは、神経を傷つけないように常に神経に沿って切断してください。このような場合は、漏れている液体と血液を綿棒で取り除きます。アステレオ顕微鏡は実験全体には必要ありませんが、神経の準備には役立ちます。 - 曲がったガラスピペットを使用して、前足の尺骨神経と正中神経を注意深く分離します(図3E)。2つの神経の上部は尺骨神経であり、下部は正中神経です。
注意: 神経を互いに分離するときは、下の血管が損傷していないことを確認してください。
3. 電極配置
- 刺激フック電極を0.5〜1.0mmの距離で平行に配置し、マイクロマニピュレーターを使用してダブルフックを神経のすぐ近くに配置します。
- ガラスフックをツールとして使用して、尺骨神経を刺激フック電極に持ち上げます。神経で電極を引き戻し、マイクロマニピュレーターを使用して他の神経から約1〜2 mm分離します(図3D、F)。
- 筋肉間のクロストークを減らすために、足の長軸に沿って電極を配置します。
注:電極の配置は非常に重要ですが、個々の解剖学的構造のために標準化することは困難です。電極を正しく配置するには、経験豊富な外科医が必要です。信号の振幅が不十分な場合は、ワイヤを再配置することもできます。 - 神経に取り付けられた電極フックを表面的に乾燥させ、シリンジを使用してワセリンを塗布して、隣接する組織から電気的に絶縁します。
注意: 電気絶縁を確保し、神経が乾燥するのを防ぐために、電極と2つのフックの間に十分なワセリンを塗布するように注意する必要があります。
4. 記録電極と参照電極の配置
- H反射を測定するには、EMG電極を前足の筋肉内に配置します。加えて、参照電極を後肢の皮下に配置し(例えば、微小ピンを用いて)、小型のワニ口クリップによって保持する(図3B)。
- 刺激装置がオンになったら、前足の小さなけいれんとして成功した刺激を観察します。前足のM波と小さな目に見えるけいれんを引き出すための最小刺激電流は、10〜50μAの範囲である必要があります。
注意: 50μAでけいれんが見られない場合は、刺激電極を調整し、ワセリンを再塗布します。また、マウスでは、M波がH波よりも低い刺激強度で現れることも珍しくありません5。
5. 測定
- 神経の刺激をそれぞれ0.2 msの長さのパルスで15回繰り返します。刺激のセット間で2分の休止で、周波数は0.1、0.5、1.0、2.0、および5Hzに増加します。
注:これらの周波数は、後でRDDを計算する場合に必要です。すべてのEMGデータは、Spike2ソフトウェア(CED、バージョン7.19)などのソフトウェアを使用して記録、デジタル化、および分析されます。最大のH波振幅は0.1Hzで予想されます。周波数が高いほど、RDDによるH波の振幅は小さくなります。 - 実験後、研究所のIACUCプロトコルに従って動物を犠牲にします。この実験では、マウス経心灌流を、深部麻酔下でPBSおよび4%PFAを用いて行った。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
結果
刺激頻度および足当たりのn=15回の刺激試行から、分析のために少なくともn=10個の成功した記録を選択する。測定誤差(M波の欠落など)のある試験は解析から除外されます。各試行を個別に分析し、後でグループ/時間比較の平均を生成します。刺激とM波およびH波の出現との間の潜時は、各試験について記録される。私たちの経験では、M波は刺激の約2ミリ秒後に発生し、H波は脊髄を通過する時間が長いため、6〜8ミリ秒後に発生します(図1A および 図2B)。M波とH波の振幅をピークtoピークとして測定します。
脊髄損傷または脳卒中で発生する生理学的変化を評価するために、H波とM波の振幅の比(H/M比、 図2)は実験的変動を起こしにくく、これは例えば振幅差に反映されるであろう。したがって、この比率は、疾患関連の電気生理学的変化のより信頼性の高い評価を提供します。例えば、一次運動皮質と二次運動皮質に脳卒中を起こしたマウスでは、H...
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
ディスカッション
マウス6における前述の経皮的H反射測定とは対照的に、発明者らは、より直接的かつ神経特異的な測定を提供する。この新しいアプローチは、前肢と後肢の神経(それぞれ正中神経、尺骨神経、橈骨神経、脛骨神経、坐骨神経など)に適用でき、多くの疾患モデル(脳卒中、多発性硬化症、筋萎縮性側索硬化症、外傷性脳損傷、脊髄損傷など)の診断ツールとして適応できます。選択した神経に応じて、刺激強度の関数としてのH波の振幅の検証が推奨されます。振幅は、神経径および運動ニューロンの興奮性、ならびに電気的接触によって変化し得る。H/M比とRDDを測定することにより、針の位置などの実験的影響を低減することができ、得られた値の信頼性が大幅に向上します。
ここで紹介するプロトコルの主な制限は、縦断測定の可能性のない端末アプリケーションです。さらに、いくつかの方法論の詳細を考慮する必要があります。最小限の筋弛緩を伴う一定の麻酔は、信頼性の高い測定に不可欠であり、特定のモデル/アプリケーションごとに検証する必要があります。筋反射の強力な抑制を引き起こすイソフルラン麻酔とは対照的...
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
開示事項
著者は、競合する金銭的利益を宣言していません。
謝辞
著者らは、ダルハウジー大学のT.アカイがMGの研究室を訪問した際の支援に感謝の意を表します。この研究は、Friebe Foundation (T0498/28960/16) および Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG, German Research Foundation) - Project-ID 431549029 - SFB 1451 からの資金提供によって支援された。
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
材料
| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 吸収性アンダーパッド | VWR | 115-0684 | |
| ADコンバータ | ケンブリッジ電子設計、英国 | CED 1401micro | |
| アンプ | ワークショップ動物学研究所、UoC | - | |
| デジタル刺激装置 | ワークショップ動物学研究所、UoC | MS 501 | |
| EMG電極 | ワークショップ動物学研究所、UoC | 2本の撚り線、絶縁された銅線(50 µm外径)をオスプラグにはんだ付けし、差動アンプに接続しました。 | |
| 目の軟膏 | バイエル | Bepanthen | |
| ガラスピペット | ワークショップ動物学研究所、UoC | - | ブンゼンバーナーの炎の中で単純なガラスフックに曲げられたガラスピペットを準備します。 |
| ヒーティングボックス | MediHeat | MediHeat V1200 | |
| ヒーティングパッド | WPI | 61840 ヒーティングパッド | |
| フック電極 | ワークショップ 動物学研究所、UoC | - | 電極を製造するには、ステンレス鋼のミニチュアピンを一端のフックに曲げ、鈍いカニューレに挿入して直接機械的接触を作成します。カニューレの端を銅線(長さ約50cm)にはんだ付けし、刺激装置または記録装置に接続します。 |
| ケタミン | ファイザー | ケタベット | |
| 直腸プローブ | WPI | RET-3 | |
| 刺激装置アイソレーションユニット | ワークショップ 動物学研究所、UoC | MI 401 | |
| 滅菌器 | CellPoint Scientific | Germinator 500 | 手術器具の術前および術後の日常的な消毒は、熱滅菌によって行う必要があります。加熱されたガラスビーズバス(260°C;C)。 |
| 温度コントローラー | WPI | ATC200 | |
| ワセリン | ベイヤー | - | |
| キシラジン | バイエル | ロンプン |
参考文献
- Palmieri, R. M., Ingersoll, C. D., Hoffman, M. A. The Hoffmann reflex: methodologic considerations and applications for use in sports medicine and athletic training research. Journal of Athletic Training. 39 (3), 268-277 (2004).
- Henneman, E., Somjen, G., Carpenter, D. O. Excitability and inhibitibility of motoneurons of different sizes. Journal of Neurophysiology. 28 (3), 599-620 (1965).
- Toda, T., Ishida, K., Kiyama, H., Yamashita, T., Lee, S. Down-regulation of KCC2 expression and phosphorylation in motoneurons, and increases the number of in primary afferent projections to motoneurons in mice with post-stroke spasticity. PLoS ONE. 9 (12), 114328(2014).
- Lee, S., Toda, T., Kiyama, H., Yamashita, T. Weakened rate-dependent depression of Hoffmann’s reflex and increased motoneuron hyperactivity after motor cortical infarction in mice. Cell Death & Disease. 5 (1), 1007(2014).
- Knikou, M. The H-reflex as a probe: Pathways and pitfalls. Journal of Neuroscience Methods. 171 (1), 1-12 (2008).
- Wieters, F., et al. Introduction to spasticity and related mouse models. Experimental Neurology. 335, 113491(2020).
- Pearson, K. G., Acharya, H., Fouad, K. A new electrode configuration for recording electromyographic activity in behaving mice. Journal of Neuroscience Methods. 148 (1), 36-42 (2005).
- Akay, T. Long-term measurement of muscle denervation and locomotor behavior in individual wild-type and ALS model mice. Journal of Neurophysiology. 111 (3), 694-703 (2014).
- Haghighi, S. S., Green, D. K., Oro, J. J., Drake, R. K., Kracke, G. R. Depressive effect of isoflurane anesthesia on motor evoked potentials. Neurosurgery. 26 (6), 993(1990).
- Chang, H. -Y., Havton, L. A. Differential effects of urethane and isoflurane on external urethral sphincter electromyography and cystometry in rats. American Journal of Physiology-Renal Physiology. 295 (4), 1248-1253 (2008).
- Nolan, J. P. Section 4: Nervous system (Br. J. Pharmacol). Clinical pharmacology. , 295-310 (2012).
- Struck, M. B., Andrutis, K. A., Ramirez, H. E., Battles, A. H. Effect of a short-term fast on ketamine-xylazine anesthesia in rats. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science: JAALAS. 50 (3), 344-348 (2011).
- Zandieh, S., Hopf, R., Redl, H., Schlag, M. G. The effect of ketamine/xylazine anesthesia on sensory and motor evoked potentials in the rat. Spinal Cord. 41 (1), 16-22 (2003).
アクセスが制限されています。このコンテンツを表示するにはログインするか、トライアルを開始してください。
再版と許可
タグ
