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方法論記事

ピールブロット法:多層または濃縮された生物学的サンプルから単層を分離するクライオEMサンプル調製法

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DOI:

10.3791/64099

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2022年6月29日

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この記事について

サマリー

ピールブロット法は、多層および濃縮された生物学的サンプルを単層に分離して、厚さを減らし、サンプル濃度を高め、画像処理を容易にするクライオEMグリッド調製法です。

要約

ピールブロットクライオEMグリッド調製技術は、多層サンプルの層の削減を達成することを目的として、大幅に変更されたバックインジェクション法です。急落凍結の前にこのように層を除去することで、クライオEMデータ収集に適したレベルまでサンプルの厚さを薄くし、サンプルの平坦性を改善し、画像処理を容易にすることができます。ピールブロット法により、多層膜を単層に、層状2D結晶を個々の結晶に分離し、可溶性タンパク質の積層シート状構造を同様に単層に分離することができます。これらのタイプのサンプルの厚さが高いと、特にデータ収集のために顕微鏡ステージを傾ける必要がある場合、クライオEMデータ収集およびクライオEM画像処理に克服できない問題が発生することがよくあります。さらに、グリッド調製前のサンプル濃度を高め、ピールブロット技術で単層サンプルの密な分布をもたらすように調整できるため、これらのサンプルのいずれかの高濃度のグリッドを調製して効率的なデータ収集を行うことができます。

概要

ピールブロット法は、膜タンパク質の積層2次元結晶を単層に分離し、クライオEM 2Dおよび3Dデータ収集に適した薄いサンプルを取得し、画像処理を容易にするために開発されました1。このプロトコルは、他のタイプの多層サンプルにも同様に適しており、Zの厚さを増やすことなく、グリッド上のいずれかのサンプルタイプの高濃度を達成するのにも適しています。

サンプル層を1層に減らすことは、毛細管圧とせん断力の組み合わせを、バックインジェクション法2に実質的に拡張して変更するプロトコルに適用することによって達成されます。最初のブロッティングステップでは、バックインジェクション法の20〜25μmのろ紙の孔径ではなく、サブミクロンでのブロッティング中に、多層サンプルの両側にあるカーボンフィルムとグリッドバーにしっかりと挟まれ、接着されます。個々の層の分離または剥離は、グリッドがトレハロースドロップに垂直に押し付けられ、炭素膜がグリッドバーから強制的に離れると、挟まれた層を強制的に分離したときに発生します(図1)。グリッドバーとの元の接触点から離れたカーボンフィルムの再配置は、グリッドがサブミクロン濾紙上で再び吸い取られる次のステップで発生します。これらのステップの反復回数は、特定のサンプルに対して最適化できます。さらに、このプロトコルは、Zでの凝....

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プロトコル

1. ピールブロット法の準備手順

注:準備には、次のアイテムを互いに隣接して配置する必要があります。

  1. 20〜25μmの孔径ろ紙を2枚積み重ねます( 材料表を参照)。
  2. ~8 cm x 10 cmの長さのパラフィンフィルムを、紙を上に向けてろ紙の隣に置きます。
  3. サブミクロンのろ紙を、さらに2枚の#4ろ紙の上に置きます(図1-1)。
  4. 曲がった脚を上に向けてまっすぐな脚を下に向けて、毛細血管防止鉗子を配置します。次に、滑らかな/光沢のある面を上にして600メッシュのグリッドを選択します。きれいなグリッドが他のアイテムと接触しないように、鉗子をペトリ皿または他の隆起した面に置きます。
  5. パラフィンフィルムから紙を取り除き、側面(~5 mm)を引っ張って小さなリムを作成します。パラフィンフィルムの片方の短辺から~1-2 cm、パラフィンフィルム上に~1 cm離して、4%トレハロース溶液の150 μLを2滴滴ピペットでピペットします。
  6. 別のベンチまたは床に、小さな発泡スチロール容器に液体窒素を注ぎます(材料の表を参照)。
    注意: 凍傷を避けるために、手袋とフェイスシールドを使....

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結果

ピールブロット実験が成功すると、多くの場合、高濃度のサンプルの単層が得られます。ほとんどのグリッド正方形の一部の領域には、特にピールブロットステップの反復回数が少ない場合、依然として複数の層が含まれることが予想されます。ただし、グリッドの正方形の大部分は、ヒトロイコトリエンC4シンターゼ(図2)とリポソーム(ステップ3.2、 図3で追加)の2D結晶で観察されたように、単層の広範な領域を含みます。追加のピールブロットステップは、層に望ましい減少を示さないサンプルについてテストする必要がある場合があります。

ピールブロット実験の成功を示す最も重要な指標は、高解像度のクライオEMデータ収集と画像処理の後に観察されたデータ品質と生物学的完全性です。データの解釈には、レイヤー間の接触領域への潜在的な損傷または歪みを慎重に考慮する必要があります。

剥離ブロッティングが発生したEMグリッドの領域は、通.......

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ディスカッション

ピールブロットは、クライオ電子顕微鏡データ収集と画像処理のための多層2D結晶および類似サンプルのスタッキングと厚さを克服するための強力な方法です。ピールブロットの使用に関する決定は、サンプルの生物学的パラメータに基づいて行われ、3DクライオEMモデルが利用可能になったら評価も必要になります。接触の生物学的重要性と接触領域の潜在的な柔軟性は、この評価で特に重要になります。

ピールブロットの数は、標準的なネガティブステイングリッド調製後の観察によって最初に確立され、過剰な層または厚さには、標準的なクライオEMグリッド調製に代わる戦略が必要になります。レジスターに積層された薄い多層結晶は、microED3に直接使用してもよいし、より厚い結晶4の場合はFIBミル化してもよい。ピールブロットは、層がレジスター5にある場合、層を個別にまたは一緒に処理できるため、通常、2層構造の2D結晶には必要ありません。膜タンパク質の2D結晶の両側を.......

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開示事項

著者は、競合する金銭的利益やその他の利益相反を持っていません。

謝辞

この作業の一部は、NIH助成金HL090630(ISK)によってサポートされました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
600メッシュグリッドSPI2060-C-XA
アンチキャピラリー鉗子テッド・ペラ510-5
カーボン・トゥ・コーティング・マイカ
クライオ・EMクライオ・エム・グリッドは、120kVまたは200kVでスクリーニングすることができます。高分解能データは300kVで収集されます。
Dumpont #5 鉗子Ted Pella5622
クライオ電子顕微鏡保存用グリッドボックスTed Pella160-40
Kim Wipes
液体窒素
マイカTed Pella56マイカはカーボンコーティングされており、TEM グリッドよりもわずかに大きい正方形にカットされています。 カーボンの厚さは、薄いカーボンが複数のピールブロットで簡単に壊れるのを避けるために最適化が必要な場合があります。
ネガティブステイン1-2%酢酸ウラニルは、多くのサンプルに適しています。リンタングステン酸などの他の染色物を代用することができる。
パラフィルム
ポリスチレン容器ピールブロットグリッドのガラス化に使用されます。ポリスチレン製の輸送用コンテナは、この目的のためにリサイクルし、アルミホイルで裏打ちすることができます。
サブミクロンフィルターペーパーミリポアシグマDAWP04700
透過型電子顕微鏡JEOLJEM-1400加速電圧80-120kVで動作するTEMは、ネガティブステンデッドグリッドのスクリーニングに適しています。
トレハロース4%トレハロース溶液を調製します。
Whatman #4 濾紙MilliporeSigmaWHA1004150これは 20-25 μm孔径の濾紙をプロトコールで使用します。

参考文献

  1. Johnson, M. C., Uddin, Y. M., Neselu, K., Schmidt-Krey, I. 2D crystallography of membrane protein single-, double- and multi-layered ordered arrays. Methods in Molecular Biology. 2215, 227-245 (2021).
  2. Kühlbrandt, W., Downing, K. H. Two-dimensional structure of plant light harvesting complex at 3.7 Å resolution by electron crystallography. Journal .of Molecular Biology. 207 (4), 823-828 (1989).
  3. Nannenga, B. L., Gonen, T. MicroED: a versatile cryoEM method for structure determination. Emerging Topics in Life Sciences. 2 (1), 1-8 (2018).
  4. Martynowycz, M. W., ....

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