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方法論記事

生検由来腎細胞の代謝表現型の解明

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DOI:

10.3791/65457

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2025年6月17日

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この記事について

サマリー

このプロトコルは、生検由来の腎臓細胞の代謝プロファイリングを実施するための独自の方法を説明しています。提示されたアプローチは、健康な成体雄ブタで最適化されており、腎臓同種移植片の生存率のリアルタイム評価を強化する可能性があります。この方法は、代謝に基づく複数の腎臓病にわたる新しい生物学を明らかにするのにも役立つ可能性があります。

要約

腎臓移植は、末期腎疾患の最適な治療法です。しかし、移植された腎臓は早期に失われることが多く、移植後10年で最大50%の移植片が失われます。移植片の早期喪失の主な原因の 1 つは、移植時に移植片が受ける損傷であり、虚血再灌流障害 (IRI) として知られています。移植後1週間の透析の必要性として定義される遅延移植片機能(DGF)は、急性腎障害(AKI)の機能的および組織学的特徴を示す重度のIRIの症状です。AKIを駆動するメカニズムは不明のままですが、蓄積された証拠は、同種移植片の代謝機能の変化がAKIを媒介し、DGFの原因である可能性があることを示唆しています。したがって、IRIの代謝基盤を解読し、モニタリングすることで、AKIを診断し予防する能力を向上させることができます。この記事では、針生検由来腎細胞懸濁液中のミトコンドリア呼吸(酸素消費率)、解糖(細胞外酸性化率)、および細胞内ATPレベルを評価する独自の方法について説明します。この方法論は、健康な成体雄ブタで最適化され、自家移植のブタモデルで検証されています。提示されたアプローチは、臨床における腎臓同種移植片の生存率のリアルタイム評価を強化する可能性を秘めています。患者由来の生検における代謝のプロファイリングは、他の代謝ベースの腎臓病における新しい生物学も明らかにする可能性があります。

概要

腎臓移植は、末期腎疾患の最適な治療法です1,2,3,4;しかし、移植された腎臓は時期尚早に失われることが多く、移植後10年で最大50%の移植片が失われます5。罹患した患者は、罹患率と死亡率が増加し、医療制度に大きな経済的負担をもたらしています6。移植片の早期喪失の主な原因は、移植時に移植片が受ける損傷であり、虚血再灌流障害(IRI)として知られています。IRIは、血流の減少とそれに続く再灌流7によって引き起こされる避けられない損傷です。虚血は、コハク酸組織の蓄積を特徴とし、これがミトコンドリアの呼吸鎖における逆電子の流れを促進し、スーパーオキシドの生成とその後の再灌流後の早期の損傷につながります8。移植臓器のIRIは、一次非機能、遅延グラフト機能(DGF)、拒絶反応、およびグラフト転帰の不良のリスクを高めます8,9

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プロトコル

このプロトコルは、トロント総合研究所の動物管理委員会によって承認されています(動物使用プロトコル番号:3652)。動物は、カナダのオンタリオ州にある国立衛生研究所(NIH)のNational Society of Medical Research and Guide for the Care of Laboratory Animalsに従って世話をしました。この研究では、生後3か月の雄ヨークシャー豚5頭(それぞれ体重約30kg)が使用されました。この方法論のプロトコルは、次のステップに細分化されます:(1)単一の腎生検コアの細胞懸濁液への解離。(2)生検由来腎細胞の代謝プロファイリング。(3)生検由来腎細胞におけるATP含有量の測定。代謝機能またはATP含有量の測定のために収集されたすべての生検サンプルは、バイオセーフティキャビネット内で検索から3時間以内に解離しました。この方法論のワークフローを 図 1 に示します。試薬および使用した機器は 、材料表に記載されています。

1. 単一腎生検コアの細胞懸濁液への解離

  1. 同軸針(すなわち、外側のガイド針と内側の生検針)ガンシステム38を使用して、腎皮質から組織の3つの生....

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結果

ワークフローは、健康な生後3か月の雄ヨークシャー豚の生検由来腎臓細胞でテストされました。組織解離および細胞プレーティングのプロトコルは、上記で概説したとおりに従った。細胞を16時間接着させた後、ミトコンドリア呼吸と解糖のマーカーとして、代謝機能アナライザーを使用して、生検由来のブタ腎臓細胞でOCRとECARをそれぞれリアルタイムで測定しました。

最初の実験は、生検由来の腎臓細胞におけるOCRおよびECAR値と代謝ストレスに対する予想される応答を自信を持って測定するための最適な播種密度を決定することを目的としていました。15,000細胞、30,000細胞、60,000細胞、1,20,000細胞の4つの異なる播種密度を試験しました。細胞は、標準製剤(5.5 mMグルコース、2 mMグルタミン、および1 mMピルビン酸)を含む代謝機能アッセイ培地に曝露されました。代謝ストレスは、以前に報告された一連の薬物を次の用量で注射することによって誘発されました:1μMオリゴマイシン、0.3μMのFCCP、100mMの2-DG、および1μMのRot + AA。.これらの用量は、ヒト腎臓細胞

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ディスカッション

この記事では、生検から得られた腎臓細胞の代謝機能を評価するための独自の方法について説明します。フレッシュコア腎生検から単一細胞懸濁液を得るためのプロトコルを、代謝機能および細胞内ATPレベルの分析と組み合わせた。解糖系はECARを測定することで評価され、ミトコンドリア呼吸はOCRを測定することで評価されます。ポリーン腎生検を使用して、方法論を最適化しました。

腎生検を代謝機能分析装置で解離して得られた細胞の生体エネルギー機能を効果的に研究するには、まず播種する生細胞の密度を最適化し、使用するストレッサー化合物の用量を滴定し(該当する場合)、期待される結果を反映した臨床的に関連性のある実験グループで方法論を検証することが重要です。最適化は、異なる細胞密度とストレッサー化合物濃度で行いました。1,00,000細胞/ウェルを播種し、1 μMオリゴマイシン、0.3 μM FCCP、50 mM 2-DG、および1 μM Rot/AAへの曝露後に、予想されるOCRおよびECARベースライン値と曲線形状が得られ.......

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開示事項

共著者のいずれも、開示すべき競合する金銭的利益またはその他の利益相反を持っていません。

謝辞

AKは、University Health Network Foundation(579067450776、579072310776、579068260776の賞)の支援を受けました。SC-Fは、腎臓研究科学者コア教育およびナショナルトレーニング(KRESCENT)プログラム(2019KPPDF637713および24KNIA-1291062)の支援を受けました。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
2-デオキシ-D-グルコースシグマD6134解糖の競合阻害剤
5mL丸底ポリスチレン
試験管、セルストレーナースナップキャップ
ファルコン352235解離チューブアンチ
マイシンAから ストレプトマイセス sp.SigmaA8674呼吸鎖の複合体IIIの阻害剤
AOF BP ProteaseVitaCyte003-1000解離酵素
シアン化カルボニル 4-(トリフルオロメトキシ)
フェニルヒドラゾン(FCCP)
SigmaC2920酸化的リン酸化のアンカプラー
CellTiter-Glo 2.0 Assay, 100mLPromegaG9242細胞内ATPの測定
コラゲナーゼ MAVitaCyte001-2030解離酵素
CyQUANT 細胞増殖アッセイ、培養細胞用InvitrogenC7026細胞内DNA
、D-グルコース、無水、試薬グレードのBioshopGLU501代謝基質
DNase IStemcell07469解離酵素
ウシ胎児血清、プレミアム、
米国産、熱不活化、500 mL
Wisent080-450解離培地サプリメント
L-Glutamine-200 mM (100x) 液体 (100 mL)Gibco25030081代謝基質
オリゴマイシン ASigma75351ATP シンターゼ
阻害剤 PBS、-/-、500 mLWisent311-010-CLCell wash
rATP, 10 mM, 0?5 mLPromegaP1132細胞内ATPの測定
ロテノンシグマR8875呼吸鎖の複合体Iの阻害剤
RPMI 1640Gibco11875119解離メディア
タツノオトシゴ ウェーブコントローラーソフトウェア 2.6アジレントN/A代謝機能測定のセットアップ
シーホースウェーブ デスクトップソフトウェア 2.6アジレントN/A代謝機能データの分析
タツノオトシゴ XF ベース培地、  フェノールレッドなし、500 mLアジレント103335-100代謝機能の測定
タツノオトシゴ XFe96 FluxPak (プレート20枚、カートリッジ18個、
、キャリブラント液500mL)
Agilent102416-100代謝機能の測定
タツノオトシゴ XFe96 代謝機能分析装置Agilent101991-100代謝機能の測定
ピルビン酸ナトリウム 溶液 100 mM (100X)、液体 100mLGibco11360070代謝基質
測定

参考文献

  1. Tonelli, M., Wiebe, N., Knoll, G. Systematic review: Kidney transplantation compared with dialysis in clinically relevant outcomes. Am J Transplant. 11 (10), 2093-2109 (2011).
  2. Rana, A., Gruessner, A., Agopian, V. G. Survival benefit of solid-organ transpla....

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