ヒト末梢リンパ球におけるγH2AXと53BP1の二重免疫蛍光法

サマリー

このプロトコルは、ブレオマイシン処理されたヒト末梢リンパ球の間期核におけるγH2AXおよび53BP1病巣の同時検出を通じて、DNA二本鎖切断の形成および修復を評価する方法を提示する。

要約

二本鎖切断(DSB)は、細胞核に発生する可能性のある最も重篤な病変の1つであり、修復されない場合、癌を含む重篤な結果につながる可能性があります。したがって、細胞はDSBを修復するための複雑なメカニズムを備えており、これらの経路には、Ser-139(すなわちγH2AX)およびp53結合タンパク質1(53BP1)のリン酸化形態のヒストンH2AXが含まれます。両方のタンパク質はDSBの部位で病巣を形成する可能性があるため、これらのマーカーの同定は、DSBとその修復速度論の両方を研究するのに適した方法と考えられています。γH2AXと53BP1病巣の形成につながる分子プロセスによると、2つのDNA損傷マーカーを同時に検出することによってDSBを定量できる代替アプローチを設定するために、DSB付近でのそれらの共局在を調べることがより有用である可能性があります。したがって、このプロトコルは、二重免疫蛍光におけるγH2AXおよび53BP1病巣の存在を介して、放射線模倣剤ブレオマイシンによってヒトリンパ球に誘導されるゲノム損傷を評価することを目的としています。この方法論を用いて、ブレオマイシン誘発性DSBの修復動態を研究する予備的な試みとして、γH2AXと53BP1病巣の数の経時的な変化も明らかにしました。

概要

DNA損傷は、細胞の酸化的代謝によって生成されるROSなどの内因性、または化学物質と物理的の両方の外因性の薬剤によって継続的に誘発されます¹。最も有害な病変の中で、二本鎖切断(DSB)は、染色体異常を引き起こし、それが発がんプロセスを開始する可能性があるため、ゲノム不安定性に寄与する上で基本的な役割を果たします。したがって、細胞はDSBを修復する複雑で効率的なメカニズムを備えている²。

DSBが発生すると、細胞はDNA損傷応答(DDR)をトリガーし、MRE11 / RAD50 / NBS1複合体とともに、ATMまたはATRキナーゼが動員され、細胞周期を遅くしたり停止したりする他のタンパク質を活性化します³。これらのキナーゼの必須標的はヒストンH2AXであり、これはDSBから数メガ塩基以内のSer-139上でリン酸化され(すなわちγH2AX)、それによってBRCA1およびp53結合タンパク質1(53BP1)³などのいくつかの修復因子の動員を可能にする。その後、相同組換え(HR)、非相同末端結合(NHEJ)、または一本鎖アニーリング(SSA)の間の1つの経路がトリガーされ、DSBが修復されます^4,5

プロトコル

研究はピサ大学の倫理委員会によって承認され、各ドナーから情報を得て署名された同意が得られました。

1. γH2AXおよび53BP1病巣の形成

1. サンプルの調製と変異原性治療
   1. 抗凝固剤としてリチウムヘパリンを含む採血(例えば、Vacutainer)チューブ内の健康な成人から静脈穿刺によって全血サンプルを収集する。
   2. 適切な血液サンプルの保存を保証するために、サンプリングから24時間以内に手順を開始してください。
   3. 300 μLのサンプルを、4.7 mLの完全培地(0.5%ペニシリン-ストレプトマイシン、0.75%フィトヘマグルチニン、10%FBS以前に不活性化、88.75%RPMI 1640)を含むチューブに加えます。
   4. 次に、硫酸ブレオマイシンを最終濃度5 μg/mLまで添加します。
      注意:硫酸ブレオマイシンは変異原です。皮膚への接触や吸入を避けてください。溶液を調製し、フードの下にサンプルを追加します。
   5. 各サンプルについて、ネガティブコントロール(変異原の非存在)を設定します。
   6. チューブを37°Cのサーモスタットに2時間入れます。
2. 固定
   1. サンプルを540 x g で室温で5分間遠心分離します。
   ....

結果

末梢リンパ球の蛍光顕微鏡分析によって得られたデータは、3つの主要な側面を評価することを可能にします:その変異原性効果によるγH2AXおよび53BP1病巣(したがってDSB)の数の増加におけるブレオマイシン治療の有効性、DSBの部位で両方の病巣がどの程度共局在しているか、およびブレオマイシン誘発性DSBの修復動態を描写するためのγH2AXおよび53BP1病巣の時間経過。予想通り、未処理細胞と未処理細胞の間でγH2AXと53BP1病巣の両方の非常に高い頻度が観察され、ブレオマイシンが末梢リンパ球でDSBの形成を誘導することが確認されました(図2)。

2つのマーカーの病巣の数に大きな違いが観察されました。特に、γH2AX病巣は53BP1病巣よりも多く、共局在が常に起こるとは限らず、複数の要因に依存する可能性があることを示しています(図3)。

DSBの修復速度論に関しては、まず、病巣の実際の修復が最初に選択された時点.......

ディスカッション

γH2AXおよび53BP1病巣の免疫蛍光分析は、細胞系の間期核におけるゲノム損傷を評価するのに適した方法です。この手順には、実験の結果に影響を与える可能性のあるいくつかの重要なポイント、主に固定および透過処理に使用される薬剤、抗体の種類とその希釈因子、および変異原の濃度があります。

免疫蛍光法は、主にタンパク質である抗原を同定することが期待されているため、タンパク質の完全性の維持は基本です。このプロトコルでは、メタノールを使用してリンパ球を固定します。アルコールは水を置換して可溶性タンパク質の沈殿を引き起こすことによって作用し、一方、固定されていない他の細胞成分はPBS¹³などの生理食塩水緩衝溶液で洗浄することによって除去できるため、このステップは特に重要です。

別の重要な通過は、ブロッキング溶液を介して行われる透過処理であり、この場合、透過処理とブロッキングの両方を可能にします。ブロッキングは、FBSを溶液に添加することによって実行されます:FBSと抗体の特異的ターゲットとの.......

材料

この記事で使用された材料の一覧

名前	会社	カタログ番号	コメント
AlexaFluor 568ヤギ抗マウスIgG(&γ;1)	Invitrogen	A21124	53BP1二次抗体
Bleoprim	Sanofi		bleomycin sulfate (mutagen)
ペニシリン-ストレプトマイシン溶液 100X	Euroclone	ECB3001D	抗生物質
培地用 PBS 10X	Termofisher	14200075	リン酸緩衝生理食塩水
FBS	Euroclone	EC20180L	Fetal Bovine Serum免疫蛍光法
ヤギ抗ウサギ IgG (H+L) DyLight 488 Coniugated	Termofisher	#35552	γH2AX 二次抗体
マウス 抗53BP1 モノクローナル抗体	メルク	MAB 3802	53BP1 一次抗体
Labophot 2	ニコン		蛍光顕微鏡
P-ヒストン H2AX (Ser139) ウサギ抗体	Cell Signaling	#2577	γH2AX 一次抗体
Phytohemoagglutinin	Termofisher	培地の	R30852801成分
Prolong gold antifade reagent with DAPI	Cell Signaling	#8961	Antifade solution with DAPI for counterstaining
RPMI 1640	Euroclone	ECB9006L	Culture medium
Triton-X100	Sigma	T9284	Nonionic detergent for透過化

培養