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Research Article
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Erratum Notice
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Retraction Notice
The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice
提示されたプロトコルは、実験室ミキサーによるサンプルの均質化、マイクロ波支援湿式酸消化による68 wt% HNO3および30 wt% H2O 2の混合物を使用した食品サンプルの酸消化、および誘導結合プラズマ質量分析で実行される多元素測定について説明しています。
サンプル前処理は元素測定に不可欠であり、さまざまな手法が利用可能であり、そのうちの1つに均質化とそれに続く酸分解が含まれます。調製段階でのサンプルの取り扱いでは、潜在的な汚染や分析種の損失を排除または最小限に抑えるために、特別な注意が必要です。均質化は、粒子径の縮小とサンプル成分の均一化を同時に行うプロセスです。均質化後、サンプルは酸分解を受け、高温で酸と補助化学物質で消化され、固体サンプルが液体状態に変化します。このプロセスでは、元のサンプル中の金属が酸と反応して水溶性塩を形成します。酸分解によって調製されたサンプルは、誘導結合プラズマ質量分析法、誘導結合プラズマ発光分析法、原子吸光分析法、電気化学的方法、およびその他の分析技術などの技術を使用した元素分析に適しています。この研究では、誘導結合プラズマ質量分析を用いた多元素測定用の食品サンプルの調製について詳しく説明します。段階的な手順では、セラミックブレードを備えたラボサイズのミキサーを使用した均質化プロセスと、マイクロ波支援湿式酸分解を使用した密閉容器での酸分解が含まれます。5.0mLの68重量%HNO3および1.0mLの30重量%H2O2の混合物が補助試薬として機能する。このガイドでは、両方の段階に関連するプロセスについて説明します。
元素分析は、さまざまなサンプルの元素組成を決定するための分析プロセスです。高濃度の金属(特に重金属1)は望ましくない健康問題を引き起こす可能性があるため、人体への金属の摂取を制御するために使用できます。重金属も主要な環境汚染物質の1つであるため、環境中の重金属の存在を制御する必要があります2。さらに、元素分析は、食品の地理的原産地を決定し3、食品 や水資源の品質を管理するためにも使用できます4。さらに、土壌中の微量栄養素と多量栄養素の測定5や、 鉱物や堆積物の化学組成を調べることで、歴史を通しての地質学的プロセスへの洞察を得るために使用されます6。また、さらなる金属再生のための電気および電子廃棄物中のレアメタルの存在を決定し7、薬物治療の成功を評価し8、金属インプラントの元素組成を検証するための研究も行われています9。
誘導結合プラズマ質量分析(ICP-MS)および誘導結合プラズマ発光分光分析(ICP-OES)は、さまざまなサンプルの元素分析に一般的に使用される技術です10。検出限界(LOD)と定量限界(LOQ)がng/Lと低い複数の元素を同時に測定できます。一般に、ICP-MS は ICP-OES12 と比較して LOD 値11 が低く、線形濃度範囲が広くなっています。元素組成を決定する他の技術には、マイクロ波誘起プラズマ発光分析法13と、フレーム原子吸光分析法、電熱原子吸光分析法2、冷蒸気原子吸光法、水素化物生成原子吸光分析法14など、原子吸光分析法(AAS)のいくつかの変種がある.さらに、LODとLOQが低い元素測定は、さまざまな電気分析法、特に陽極ストリッピングボルタンメトリー15,16で可能です。もちろん、サンプルの元素組成を決定する方法は他にもありますが、上記の方法ほど頻繁には採用されていません。
固体試料の元素の直接測定は、レーザー誘起ブレークダウン分光法と蛍光X線を用いて実現可能である17。ただし、ICP-MS、ICP-OES、およびAASによる元素測定では、固体サンプルを液体状態に変換する必要があります。この目的のために、酸分解は酸および補助試薬(ほとんどの場合H2O2)を用いて行われる。酸分解は高温高圧で行われ、サンプルの有機部分を気体生成物に変換し、金属元素を水溶性塩に変換し、したがってそれらを溶液18に溶解する。
酸分解には大きく分けて、開放型消化と閉鎖型消化の2種類があります。開放型容器分解は費用対効果が高い14 が、最高分解温度が大気圧での酸の沸騰温度と一致するなどの制限がある。試料は、ホットプレート、加熱ブロック、水浴、砂浴2、およびマイクロ波19で加熱することができる。このように試料を加熱することにより、発生した熱の多くが周囲20に失われ、消化時間14が延びる。開放容器消化の他の欠点には、化学薬品の消費量が多いこと、周囲の環境からの汚染の可能性が高くなること、および揮発性成分の形成および反応混合物からのそれらの蒸発による分析物の損失の可能性が含まれる21。
密閉容器システムは、開放容器システムと比較して、有機および無機サンプルの分解に便利です。密閉容器システムは、伝導加熱やマイクロ波22など、サンプルを加熱するために様々なエネルギー源を利用する。マイクロ波を使用する分解方法には、マイクロ波誘起燃焼23、単反応チャンバーシステム24、および一般的に使用されるマイクロ波アシスト湿式酸分解(MAWD)25,26が含まれます。MAWDは、機器の作業条件に応じて、220°C〜260°Cの範囲のより高い動作温度と最大200barの最大圧力での分解を可能にします27。
MAWDの効率と速度は、サンプルの化学組成、最高温度、温度勾配、反応容器内の圧力、添加される酸の量、使用される酸の濃度など、いくつかの要因に依存します28。MAWDでは、開放容器系での長時間の消化と比較して反応条件が高いため、数分で完全な酸分解を達成できます。MAWDでは、より低い量と濃度の酸が必要であり、これは現在のグリーンケミストリーガイドライン29に沿っています。MAWDでは、酸分解を行うために必要なサンプル量は、通常500mgまでのサンプルで十分です30,31,32。大量のサンプルを消化できますが、より多くの化学物質が必要になります。
MAWD用装置は反応条件を自動的に制御し、加熱中に人が化学物質に直接接触しないため、MAWDはオープンベッセル消化よりも安全に操作できます。ただし、反応容器に化学物質を添加するときは、反応容器が体に接触して害を及ぼすのを防ぐために、常に注意して進める必要があります。また、反応容器は、酸分解中に内部に圧力がかかるため、ゆっくりと開く必要があります。
酸分解は元素測定用のサンプルを調製するための有用な技術ですが、それを実行する人は、その可能な限界に注意する必要があります。酸分解は、すべてのサンプル、特に複雑なマトリックスを含むサンプルや、反応性の高いサンプルや爆発的に反応する可能性のあるサンプルに適しているとは限りません。したがって、サンプル組成を常に評価して、溶液中のすべての必要な元素を溶解する完全分解のための適切な化学物質と反応条件を選択する必要があります。ユーザーが考慮し、対処しなければならないその他の懸念事項は、サンプル調製のすべてのステップでの不純物と分析種の損失です。酸消化は、常に特定の規則に従って、またはプロトコルを使用して実行する必要があります。
以下に説明するプロトコルは、ラボサイズのミキサーでの食品サンプルの均質化、ミキサーのコンポーネントの洗浄、サンプルの適切な計量、化学物質の添加、MAWDによる酸分解の実行、分解完了後の反応容器の洗浄、元素測定のためのサンプルの調製、およびICP-MSによる定量的多元素測定の実行の手順を提供します。以下の指示に従うことで、元素測定に適したサンプルを調製し、消化されたサンプルの測定を実行できるはずです。
1. サンプルの均質化
2.ミキサーの洗浄
3. サンプル計量
4.酸の付加
5. マイクロ波支援湿潤酸分解
6. 反応容器洗浄
7. ICP-MSによる多元素測定
均一化
すべてのサンプルを実験室の乾燥機で一定の質量に乾燥させ、水分を除去しました。サンプルをデシケーターに移すことで、周囲の環境からの水分を結合することなく、サンプルを室温まで冷却することができました。次に、食品サンプルをラボラトリーミキサーを使用して均質化し、微粉末を得ました。得られた均質化された粒子は、サイズが均一で均一に分布していたため、酸分解に使用されたサブサンプル(より大きなサンプルから採取されたサンプル)が代表的なものであることが保証されました。サンプルは、プラスチック製のヘラを使用してミキサービーカーから簡単に取り外すことができましたが、乾燥肉のサンプルは脂肪含有量が高いため、取り除くのがより困難でした。脂肪含有量が高いと、サンプルがミキサービーカーのガラス壁に部分的に付着しました。新鮮なサンプル、乾燥したサンプル、ホモジナイズしたサンプルの比較を 図 2 に示します。
装置の部品は、ミキサーに残った食品粒子をすべて除去するために、超純水で複数回洗浄する必要がありました。
サンプルの計量質量が反応容器で許容される最大値を超えないようにすることが不可欠です。計量は一定温度の分析天びんを使用して行い、金属ヘラから発生する可能性のある金属による汚染を避けるためにプラスチックヘラを使用しました。
酸消化
プロトコルで使用されたすべてのサンプルは、さまざまな量の炭水化物、タンパク質、および脂肪を含む食品サンプルでした。HNO3は、 H2O 2と組み合わせて、 これらの分子の消化に適しており、他の化学物質は必要ありません。化学物質は、HNO3 が煙を形成するため、ドラフトで処理しました。化学物質をTFM-PTFE反応容器に添加した後、反応容器の上部に蓋を取り付け、汚染や分析対象物の損失を防ぐためにしっかりと密閉しました。反応容器は、マイクロ波システム内で均一にマイクロ波照射が行われるように、ラック内に対称的に配置されました。
酸消化中、マイクロ波システムのドアは閉じられ、プロトコルが終了するまでドアを開けることができませんでした。酸分解の全プロセスは、デバイスの画面上で監視でき、時間の経過に伴う温度変化を示すことができます(図7)。
酸分解が完了し、消化したサンプルの溶液が室温まで冷却された後、反応容器をドラフト内で開きました。それらはできるだけゆっくりと開かれました。圧力の解放が速すぎると、反応混合物の小さな液滴でも逃げ出し、分析種が失われる可能性があります。反応容器を開けると、黄色または黄橙色のガスが放出されました(図8)。煙の着色は、高温でオレンジ色の煙を形成するNO2に起因する可能性があります。反応容器内の圧力上昇は、HNO3による食品サンプルの酸化によるものであり、その結果、CO2、H2O、NOなどのガスが形成された。反応容器を脱気した後、反応容器内には淡黄色または無色の溶液が残存しており、MAWDによる全酸消化が達成されたことが示された。このことは、溶液中に目に見える粒子が残っていないことによってさらに確認されました。
サンプル調製の最終ステップでは、分解したサンプルを超純水で希釈して、残留酸性度(RA)を下げました。RA値が高いと、バックグラウンド信号が増加し、測定が妨げられます。希釈はまた、液体試料26中の金属イオンの濃度を低下させる。消化したサンプルの溶液をメスフラスコに移すときは、反応容器の成分を超純水で十分にすすぎ、分析対象物を完全に移しました。発生する問題の1つは、目的の分析種を含む可能性のある超純水の小さな滴が反応容器の壁に付着することです。超純水で25mLまで希釈すると、すべてのサンプルが無色になりました。消化されたサンプルの最終溶液には水溶性塩が含まれており、サンプル中に存在する金属元素がHNO3 と反応して溶解性の高い硝酸塩を形成します。元素分析技術により、水溶性塩を形成する金属イオンを決定できます。希釈した溶液をろ過するときは、粒子や汚染物質を確実に除去するために、最初の数滴を廃棄することが重要です。濾過後、溶液は漏れを防ぐためにしっかりと密封され、冷蔵庫に保管されました。
酸分解手順の主な制限は、サンプルスループットです。MAWD システムは、一度に限られた数のサンプルしか分解できません。さらに、各分解とその後のサンプル前処理ステップは、完了するまでに数時間かかる場合があります。さらに、反応容器の洗浄にも時間がかかりますが、サンプル間のクロスコンタミネーションのリスクを最小限に抑えることが重要です。
ICP-MSによる多元素測定
各元素について、検量線を作成しました。これらは、分析種濃度の関数として強度をプロットすることによって得られました(図 9)。すべての測定元素の線形濃度範囲は、1.0 μg/L から 50.0 μg/L の範囲でした。
各要素のLODとLOQは、それぞれ式1と式2を使用して計算しました。どちらの式でも、sブランクはキャリブレーションブランク(10回繰り返し)38,39のいくつかの測定値の標準偏差を表し、b1は検量線の傾きを表します。
(1)
(2)
得られたLODは、Mn、Cu、Fe、Znでそれぞれ0.5 ng/L、2.8 ng/L、2.8 ng/L、3.2 ng/Lであった。得られたLOQは、Mn、Cu、Fe、Znでそれぞれ1.6 ng/L、9.2 ng/L、9.5 ng/L、10.8 ng/Lであった。
各サンプルの分解を 6 回繰り返し行いました。各サンプルの 3 回繰り返し消化を標準溶液でサンプルをスパイクせずに行い、既知量の分析種標準試料の溶液を添加して 3 回の繰り返し消化を行い、分析法全体の正確性(スパイク回収率試験40)および精度をテストしました。分解手順の前に精度を測定するために、37.5 μL の 100 mg/L ICP 多元素標準溶液をサンプルを含む反応容器にピペットで移したところ、10 倍に希釈したスパイクサンプルの濃度が 15.0 μg/L 増加しました。これは、測定された金属イオンごとにサンプル1グラムあたり15.0μgの増加にも相当しました。精度と精度は、それぞれRecと相対標準偏差(RSD)を使用して決定しました。
分析法の精度は、スパイク回収試験によって評価できます。この目的のために、既知の量の分析物標準の溶液を試料に添加し、次いで、スパイクされていない試料と同じ反応条件下で消化する41。Rec は式 3 を使用して計算され、γi は分解後のスパイクしたサンプルの測定濃度、 γt は分析種標準試料の添加溶液の増加を考慮して測定されたスパイクしていないサンプルの濃度を表します。γi と γt は、3 つの反復の平均です。分析方法は、Recが80.00%〜120.00%の範囲にある場合に正確であると見なされます42。
(3)
分析法の精度は RSD で評価されます。これは、いくつかの反復測定によって得られた独立した結果間の一致の近さを表します。RSD は式 4 を使用して計算され、 sm は濃度測定の反復測定値の標準偏差を表し、
は測定された濃度の平均値を表します。RSD 値が 20.00%43 より低い場合、分析方法は正確であると見なされます。
(4)
すべてのサンプルは、ICP-MS測定の前に超純水で10倍に希釈されました(最初の測定セットの場合)。希釈により、分析装置に導入されたマトリックス成分の濃度が低下しました。また、試料を希釈することにより、RAが低下します。RAが高いと、プラズマイオン化効率が低下したり、マトリックス干渉の問題が発生したりする可能性があります。最初の測定セット後の分析種の濃度が LOQ よりも低い場合、希釈係数は 10 未満にする必要があります。なお、金属イオンの定量は検量線を用いて行った。計算結果の値は、校正に使用した標準物質の解と同じ精度(有効数字の数)でなければなりません。サンプル中の金属イオンの含有量は、重量グラムあたりのμg(μg/g)で表しました。これは、分析したサンプルの測定質量濃度に希釈係数を掛けて、元の消化サンプルの濃度を取得することによって達成されました。次に、この質量濃度に消化サンプルの容量(25 mL)を掛け、次に均質化したサンプルの初期秤量質量で除算しました(初期加重質量は、MAWD の反応容器に加重されたサンプルの質量です)。すべての値は、3回の反復の平均として報告されます。
以下の元素の報告内容は、±smで
表されます。ブロッコリーサンプル中のCu、Mn、Znの含有量は、それぞれ5.9±0.5μg/g、32.5±2.7μg/g、42.8±0.2μg/gでした。ブロッコリーサンプル中の Fe の測定質量濃度は、検量線の線形濃度範囲の上限(50.0 μg/L)を超えていました。そこで、試料の溶液を超純水で2倍に希釈し、この溶液のICP-MS測定を行った。その結果、ブロッコリーには63.0±1.9μg/gのFeが含まれていることが分かりました。
キノコの含有量は、Zn、Fe、Cu、Mnの含有量は、それぞれ35.6 ± 1.4 μg/g、30.4 ± 1.3 μg/g、18.5 ± 1.0 μg/g、5.4 ± 0.3 μg/gであった。ソーセージには、42.2 ± 0.9 μg/g の Fe、25.1 ± 2.6 μg/g の Zn、1.0 ± 0.1 μg/g の Cu が含まれていました。10倍に希釈した消化液をICP-MSで多元素測定したところ、Mnの濃度が直線濃度範囲の下限(1.0μg/L)よりも低いことが分かりました。したがって、ソーセージサンプルの元の溶液を5倍に希釈し、ICP-MSによる多元素測定を繰り返しました。ソーセージサンプル中のMnの含有量は、0.9±0.3μg/gと決定されました。麺類にはZnが5.4±2.8μg/g、Feが10.3±1.2μg/g、Cuが1.6±0.3μg/g、Mnが7.5±0.2μg/gが含まれていた。
4 つのサンプルすべてで測定されたすべての分析種の Rec は 80.00% から 120.00% の範囲であり、分析法の精度を示しました。計算の結果、麺類中のZnのRSDを除けば、RSD値は20.00%以下であり、分析法は正確であることが示された。その結果を 表2に報告する。

図1:食品サンプルの均質化に使用されるラボラトリーミキサー。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図2:生サンプル、乾燥サンプル、ホモジナイズサンプルの比較。 (A-D)ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺類の新鮮なサンプル。(E-H)ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、麺類の乾燥サンプル。(I-L)ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、および麺の均質化サンプル。この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図3:分析天びんでのサンプルの計量。 これは、上部フラップを開いて上から行います。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図4:マイクロ波システム。 反応条件を選択し、酸分解のプロセスを監視するためのサイドタッチスクリーンを備えた酸分解用マイクロ波システム。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図5:マイクロ波アシスト酸分解に使用される成分。 (A)電子レンジチャンバー内の酸分解用の反応容器を14個備えたラック。(B)TFM-PTFE反応容器は3つの部分で構成されています。容器を蓋で閉めると、サンプルもガスも反応容器から逃げたり入ったりすることはできません。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図6:ドラフト内で開封したときの反応容器の内部。 (A)ヒュームの黄橙色は、酸分解中に生成されるNO2 によるものです。(B)ほとんどのガスが反応容器から脱出した後の消化サンプルの溶液の黄色の着色。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図7:温度の経時変化 MAWDによる酸消化中の温度変化を時間の関数として示すプロット。T2は、反応容器内の反応混合物の温度を表します。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図8:黄橙色のガスが放出されるドラフトの下の反応容器を開ける。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図9:Mnの検量線の例。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。

図10:多元素測定に使用したICP-MS装置。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
表1:ICP-MS装置の動作条件。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
表2:ブロッコリー、マッシュルーム、ソーセージ、ヌードルのRec値とRSD値。この表をダウンロードするには、ここをクリックしてください。
著者は何も開示していません。
提示されたプロトコルは、実験室ミキサーによるサンプルの均質化、マイクロ波支援湿式酸消化による68 wt% HNO3および30 wt% H2O 2の混合物を使用した食品サンプルの酸消化、および誘導結合プラズマ質量分析で実行される多元素測定について説明しています。
著者らは、スロベニア研究機関の財政的支援(助成金番号P2-0414、P2-0118、J1-2470、NK-0001、およびJ1-4416)に感謝の意を表します。
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