方法論記事

腱における遺伝子発現量の空間的高分解能解析

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DOI：

10.3791/65852

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2024年3月8日

 , 
1Center for Regenerative Medicine, Department of Orthopedic Surgery, Massachusetts General Hospital, Harvard Medical School, 2Harvard Stem Cell Institute, 3Center Of Regeneration and Longevity (CORAL), Tel-Aviv Sourasky Medical Center

この記事について

サマリー

この記事では、腱の最適化された in situ プロトコルを実行する方法について説明します。この方法では、組織調製、切片透過化、プローブ設計、およびシグナル増幅法について説明します。

要約

近年、高分解能トランスクリプトミクスのための多くのプロトコルが、さまざまな医学・生物学分野で開発されています。しかし、マトリックスに富む組織、特に腱は、細胞数が少ない、細胞あたりのRNA量が少ない、マトリックス含有量が高いなどの理由で取り残され、解析が困難になっていました。最近の最も重要なシングルセルツールの1つは、腱の遺伝子発現レベルの空間解析です。これらのRNA空間ツールは、新規および未知の集団の特定の細胞を特定し、シングルセルRNA-seqの結果を検証し、シングルセルRNA-seqデータに組織学的コンテキストを追加するために、腱において特に非常に重要です。これらの新しい方法により、細胞内のRNAを優れた感度で解析し、単一細胞レベルでの単一分子RNA標的の検出が可能になり、腱の分子特性評価と腱研究の促進に役立ちます。

この手法論文では、新規の in situ ハイブリダイゼーションアッセイを使用して、インタクト細胞内の標的RNAを単一細胞レベルで検出することにより、組織切片上の空間的遺伝子発現レベルを解析するための利用可能な方法に焦点を当てます。まず、利用可能なさまざまなアッセイのために腱組織を調製する方法と、バックグラウンドノイズなしで高感度かつ高い特異性でターゲット特異的なシグナルを増幅する方法に焦点を当てます。次に、この論文では、特定の透過化方法、さまざまなプローブ設計、および現在利用可能な信号増幅戦略について説明します。さまざまな遺伝子の転写レベルをシングルセル分解能で解析するこれらのユニークな方法により、さまざまな動物モデルやヒト腱組織の若年集団および高齢集団における腱組織細胞の同定と特性評価が可能になります。この方法は、骨、軟骨、靭帯など、マトリックスが豊富な他の組織における遺伝子発現レベルの解析にも役立ちます。

概要

腱は、筋肉と骨の間の力の伝達を可能にする結合組織です1。発生的には、軸性腱細胞は体節の菌核内の間葉系細胞に由来します2;四肢腱は側板中胚葉に由来します。そして、頭蓋腱は脳神経堤系統3,4から生じます。腱は、強膜転写因子5の発現によって特徴付けることができますが、テノモジュリン、モヒカン刈り、初期成長応答1/2 6,7,8,9など、いくつかのマーカーも腱の発達に重要な役割を果たします。

腱の既知のマーカーは少ないにもかかわらず、一般に、腱には生体力学的特性の勾配にまたがる細胞が含まれているため、より詳細な特性評価は依然として困難です。筋腱接合部、腱中央部、およびより石灰化した腱部から、腱細胞は引張特性の範囲の細胞外マトリックスに存在します。腱は、軟組織と硬組織の間の機械的強度の違いによって課せられる引張応力に耐えなければならないため、腱内の細胞の空間的構成は、その機能にとって特に重要です。しかし、これらの腱の亜集団についてはほとんど知られていません。

多くの高分解能空間トランスクリプトームツールを使用して、単一細胞RNA Seqや in situ ハイブリダイゼーションなどの細胞亜集団の解明を開始できます。しかし、これらの空間プロファイリングアッセイは、マイクロダイセクションまたは切片化後に組織全体でのRNA発現を明らかにするのに役立ちますが、これらの方法を腱組織で実施すると困難な場合があります。腱は、乾燥質量10のコラーゲンの約86%で構成されるマトリックスに富む組織であり、シーケンシングのために細胞を抽出することは困難です。マトリックスから細胞を単離する際の合併症、腱11の低細胞性、および比較的少ないRNA数の両方のために、腱は分析が難しい組織です。

この論文では、組織調製、透過化、およびプローブ設計の方法を提供することにより、新しい in situ ハイブリダイゼーションアッセイを最適化して腱に活用する方法を紹介します。既存のシーケンシング技術と組み合わせることで、研究者は、アッセイの感度と特異性を高めて、発達中の腱、成人腱、または損傷した腱全体の腱亜集団を空間的に特徴付けるのに役立つ可能性があります。

プロトコル

すべての動物実験は、IACUC(Institutional Animal Care and Use Committee)およびAAALACのガイドラインに従って実施されました。実験は、承認されたプロトコル #2013N000062 の下でマサチューセッツ総合病院で行われました。本研究では、C57BL/J6マウス(5週齢、P0)を用いた。このプロトコールで使用されるすべての材料、試薬、および機器に関する詳細については、 材料表 を参照してください。

1. サンプルの調製と固定

  1. マウスをCO2 チャンバーで安楽死させ、続いて安楽死の二次的方法として子宮頸部脱臼を行います。次に、ハサミを使用して、股関節12に沿ってマウスの後肢を切断します。シンチレーションバイアルに、マウスの後肢を十分な4%パラホルムアルデヒド(PFA)溶液に浸し、サンプルを完全に覆い、組織を24時間固定します。
    注:4%PFAの代わりに、10%ホルマリンを固定にも使用できます。固定後、サンプルは、さらなる処理までリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に保存できます。後肢全体を固定することで、腱の張力を維持し、腱、腱中体、または筋腱接合部を調べる機会を得ることができます。
  2. シンチレーションバイアルからPFAを取り出した後、サンプルを覆うのに十分なPBSを添加して、1x PBSで3 x 10分間サンプルを洗浄します。次に、後肢を4°Cの0.5M EDTAに浸し、1〜2週間攪拌し、2〜3日ごとに新しいEDTAと交換します。
  3. EDTAを取り出した後、サンプルを1x PBSで3 x 10分間洗浄し、サンプルを70% EtOHで脱水し、パラフィンに目的の向きで埋め込みます。従来のFFPE切片化技術を使用して、組織を3 μmの厚さで切片化し、処理した荷電顕微鏡スライドに切片を移します( 材料の表を参照)13。
    注:切片は、次の手順に進む前に4°Cで保存できます。
  4. 脱パラフィン
    1. スライドをホットプレートで60°Cで1時間焼き、スライドを室温(RT)に戻します。スライドからパラフィンワックスを取り除くには、スライドをスライドラックに置き、キシレンで満たされた染色皿にスライドを下げます。新鮮なキシレンで3 x 5分間繰り返します。
      注意: キシレンは危険です。取り扱いには注意してください。
    2. 切片を再水和するには、スライドを1回の洗浄につき5分間、すべてRTで以下に浸します:100%EtOHで2回、dH2Oで希釈した75%EtOHで1回、PBSで希釈した50%EtOHで1回、PBSで希釈した25%EtOHで1回、PBSで2回洗浄します。
      注:すべての水分補給ステップは、スライドラック上のスライドと染色皿のさまざまなEtOH溶液を使用して行われます。

2. RNAscope(商品化ISH)プロトコル14 適応

  1. 溶液とプローブの調製
    1. 切片化したサンプルの前処理用に、pH 8 で 25 mM の Tris-HCl、10 mM の EDTA、および 50 mM のグルコースを組み合わせて TEG 溶液を調製します。すべてのサンプルを処理するのに十分な量を作るか、過剰に調製します。フィルター滅菌し、RTで保管します。溶液を適切に混合してから使用してください。
    2. すべての洗浄に十分な量の1x Wash Buffer( 材料表を参照)を準備し、RTで保管してください。
    3. 40°Cのウォーターバスまたはインキュベーターで、目的のプローブを10分間温めます。次に、ISHプロトコル14に従ってプローブを準備します。
  2. サンプルの前処理
    1. 推奨される前処理溶液を使用するのではなく、TEGバッファーを含む染色皿にスライドを60°Cで4時間浸漬します。
      注:組織が特に密集している場合、または目的のRNA結合モチーフの抗原賦活化が困難な場合、TEGバッファーインキュベーションは最大6時間延長できます。その場合、ここにストップポイントを追加し、スライドを乾燥させて4°Cの冷蔵庫で一晩保管することができます。
    2. サンプルをバッファーから取り出し、乾燥させます。次に、疎水性バリアペンでサンプルを描き、プロテアーゼIVを含む別の染色皿に浸し、オーブンで40°Cで45分間インキュベートします。
      注:成体マウスにはプロテアーゼIVを推奨します。P0などの若いマウスを使用する場合は、プロテアーゼIIIなどの穏やかな酵素を30分間使用することをお勧めします。さまざまな年齢でトラブルシューティングを行う場合は、腱の完全性を観察し、劣化がないか確認してください。組織が解離または分解している場合は、インキュベーション時間を短縮するか、使用するプロテアーゼを変更してください。
    3. サンプルをTEGバッファーで再度30分間洗浄し、ISHプロトコル14に従ってプローブをハイブリダイズします。
    4. サンプルの上に50-100μLのマウント試薬を加えます。顕微鏡観察のためにサンプルの上にカバースリップを置きます。イメージングするときは、高倍率(40倍以上の対物レンズ)を使用して信号を表示します。

3. HCR ISHプロトコル15 適応

  1. 後固定
    1. 4% PFA(PBS中)、PBT溶液(0.1% Tween-20 in PBS)、およびPBS中のプロテイナーゼK(ストック濃度10 mg/mL、最終濃度5 μg/mL)を調製します。
    2. 最初のポストフィックスステップを開始するには、スライドを4% PFAを含む染色皿に5分間浸します。次に、4% PFA 溶液を取り出し、後のステップで使用するために保管します。スライドをPBT溶液で2 x 5分間すすぎ、PBT溶液を取り除きます。スライドをプロテイナーゼK溶液(5 μg/mL)を含む染色皿に5分間入れ、PBT溶液で2 x 5分間すすぎます。
    3. 2番目のポストフィックスステップを開始し、スライドを4%PFAに5分間浸します。
      注:これは、ステップ3.1.2で節約した4%PFAと同じです。
    4. スライドをPBT溶液で3 x 5分間すすぎます。
      注:すべての後固定ステップは、スライドラック上のスライドと、それぞれの溶液を含む染色皿で行われます。
  2. アセチル化
    1. 625 μLの無水酢酸、3.3 mLの1 Mトリエタノールアミン(TEA)緩衝液、および246 mLのddH2Oを含むアセチル化溶液を調製します。
    2. スライドをアセチル化溶液に10分間入れた後、PBT溶液で3 x 5分間すすぎます。スライドをddH2Oですすぎ、30分間自然乾燥させます。次に、疎水性バリアペンでサンプルの周りを描きます。
      注:すべてのアセチル化ステップは、スライドラック上のスライドと、それぞれの溶液を含む染色皿で行われます
  3. 雑種形成
    1. ハイブリダイゼーションバッファーを37°Cに予熱し、加湿チャンバーを37°Cに予温します。
      注意: バッファーには、危険物であるホルムアミドが含まれています。スライドが十分に乾いていない場合は、ラボラトリーワイプで端を拭き取り、余分なdH2Oを取り除きます。
    2. 各プローブ混合物の0.4 pmolを100 μLのハイブリダイゼーションバッファーに加えて、プローブ溶液を調製します。
      注:dHCRイメージングを使用する場合は、プローブハイブリダイゼーション効率を向上させるために、高濃度のプローブを使用してください。
    3. 3 M NaCl (最終容量 4 L で 701.1 g の NaCl) と 0.3 M の Na3CH6H5O7•2H2O (352.8 g) を組み合わせ、HCl または 10 N NaOH を添加して最終 pH を 7 に調整して、4 L の塩化ナトリウムクエン酸ナトリウムバッファー (20x SSC) を調製します。20xSSCを5倍に希釈し、10% Tween 20を全体積の0.1%になるように添加して、5x SSCTを調製します。
    4. 200 μLのハイブリダイゼーションバッファーをサンプルに加え、スライドを加湿チャンバーに入れ、スライドを10分間インキュベートします。ハイブリダイゼーション溶液を取り出し、ラボラトリーワイプで端を吸い取ってスライド上の余分なバッファーを排出します。
    5. 調製したプローブ溶液100μLをサンプルの上に加え、サンプルにカバースリップを置きます。オーブンで一晩または約12〜16時間、5x SSCと50%ホルムアミドを含有する溶液で加湿したチャンバー内でインキュベートします。温度を37°Cに設定します。
      注:インキュベーションは一晩中行われるため、カバースリップの追加は蒸発を最小限に抑えるためです。
    6. 5x SSCT溶液のアリコートを37°Cのウォーターバスに置き、2番目のアリコートをRTに置き、サンプル数と次のステップでの洗浄回数に基づいて、これらのアリコートの量を予測します。
  4. 洗浄
    1. 予熱した5x SSCT溶液を使用して、75%洗浄バッファー/25%5x SSCT、50%洗浄バッファー/50%5x SSCT、および25%洗浄バッファー/75% 5x SSCT溶液を調製します。
    2. 余分なプローブを除去するには、スライドを75%洗浄バッファー/25% 5x SSCT、50%洗浄バッファー/50% 5x SSCT、および25%洗浄バッファー/75% 5x SSCTに37°Cで15分間直列に沈めます。カバーガラスをサンプルから浮かせます。
    3. スライドを100% 5x SSCTで2 x 15分間インキュベートし、次にRTで5x SSCTに5分間浸漬します。
      注:洗浄手順は、スライドラック上のスライドを使用して、それぞれの溶液を含む汚れた皿、または液滴として溶液を添加した状態で行うことができます。
  5. 増幅
    1. 3 μM ストックの 2 μL をスナップ冷却して、ヘアピン h1 の 6 pmol とヘアピン h2 の 6 pmol を準備します (95 °C で 90 秒間加熱し、RT まで冷却します)。このプロセス中は、ヘアピンを光から保護します。
      注:HCRヘアピンh1およびh2は、ヘアピンストレージバッファで提供され、スナップ冷却の準備ができています。クールなh1ヘアピンとh2ヘアピンを別々のチューブにスナップします。
    2. スライドの端を実験室のワイプで吸い取り、スライドを乾かします。次に、サンプルの上に200 μLの増幅バッファーを加え、RTで30分間加湿チャンバーに入れます。RTで100 μLの増幅バッファーにスナップ冷却されたh1ヘアピンとスナップ冷却されたh2ヘアピンを追加して、ヘアピン混合物を準備します。
    3. 増幅バッファーを取り外し、ラボラトリーワイプで端を吸い取ってスライド上の余分な液体を排出します。あらかじめ調製したヘアピン混合物100μLを加え、サンプルの上にパラフィルムを敷きます。スライドをRTの暗い加湿チャンバーで最低4時間または一晩インキュベートします。
    4. 余分なヘアピンを除去するには、スライドを染色皿に5x SSCTに浸し、室温で30分間インキュベートします。新しい5x SSCTで30分間、3回目で5分間洗浄を繰り返します。
    5. ラボラトリーワイプで端を吸い取り、スライドを乾燥させ、サンプルの上に50〜100μLの封入試薬を加えます。顕微鏡観察のためにサンプルの上にカバースリップを置きます。イメージングするときは、高倍率(40倍以上の対物レンズ)を使用して信号を表示します。

結果

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図1:RNAScopeを使用した成体マウスアキレス腱のポリA RNA発現。 市販のISHアッセイを用いたマウスアキレス腱(左パネル)のPoly A標識成功の代表画像。DAPIとの共局在化により、プローブ(中央パネルと右パネル)の特異性が確認され、バックグラウンドノイズの制御が可能になります。画像は、ライカSPE共焦点顕微鏡で63倍で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:ISH =その場のハイブリダイゼーション;DAPI=4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

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図2:RNAScopeを使用したP0マウスアキレス腱のポリA RNA発現。 商品化されたISHアッセイを用いたP0マウス踵骨のPoly A標識成功例(左パネル)。DAPIとの共局在化と最小限のバックグラウンドノイズにより、プローブ(中央パネルと右パネル)の特異性が確認されます。腱は破線でマークされています。画像はZEISS Axio Imager顕微鏡で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:ISH =その場のハイブリダイゼーション;DAPI=4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

このプロトコルは、研究者が市販の in situ ハイブリダイゼーションツールを利用し、それらを成体腱組織での使用に適応させるのに役立ちます。これにより、最終的には、空間情報に基づいた単一細胞の解像度で、さまざまな遺伝子の転写レベルを解析することができます。ISHアッセイを成功裏に実施すると、目的のターゲットに対する特異性が高く、バックグラウンドノイズが最小限に抑えられます。このプロトコルは、成人と新生児の両方のアキレス腱に使用できます(図1、 図2、 図3、および 図4)。Poly Aは、サンプル中に予想されるレベルのRNAがあることを定性的に確認することにより、成功した分析を検証するためのコントロールとして使用できます。

ただし、ISH プロトコルのトラブルシューティングが必要になる場合がいくつかあります。例えば、 図5 は、腱内のPoly Aのプローブハイブリダイゼーションが不十分であることを示しています。これにより、DAPI対比染色が細胞が実際に存在していることを示しているにもかかわらず、腱のいくつかの領域にPoly Aシグナルがありませんでした。さらに、HCRのポストフィックスステップでプロテイナーゼKのインキュベーション時間を延長して組織を過剰に消化したり(図6)、RNAScopeの前処理ステップでプロテアーゼIVのインキュベーションを延長して過剰に消化したりすると、組織の形態が乱れる可能性があります。最後に、 図7 は、RNAハイブリダイゼーションプローブを添加せず、核対比染色が引き続き利用された場合のネガティブコントロールの例です。

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図3:HCRを使用した成体マウスアキレス腱の強膜RNA発現。 HCRを使用した成体マウスアキレス腱(左パネル)の強膜RNA標識の成功の代表画像。DAPIは核対比染色として使用されます(中央パネル)。DAPIとの共局在により、プローブの特異性が確認されます(右パネル)。画像は、ライカSPE共焦点顕微鏡で63倍で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:HCR =ハイブリダイゼーション連鎖反応;DAPI=4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

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図4:HCRを使用したP0マウスアキレス腱のポリA RNA発現。 HCRを用いたP0マウスアキレス腱のPoly A RNA標識の代表画像。DAPIとPoly Aは、骨と踵骨のアキレス腱の両方にラベルを付けます(それぞれ左パネルと右パネル)。DAPIプローブとPoly Aプローブの両方を組織間で共局在させ、バックグラウンドノイズを最小限に抑えていることから、HCRランが成功したことが確認されています(右パネル)。画像はZEISS Axio Imager顕微鏡で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:HCR =ハイブリダイゼーション連鎖反応;DAPI=4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

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図5:P0マウスアキレス腱のPoly A RNAプローブを用いたHCRランの失敗。 HCRを使用したP0マウスアキレス腱のPoly A RNA標識の失敗の代表画像。DAPIは踵骨の骨と腱の核を標識しました(左パネル)が、Poly A HCRプローブは腱全体に浸透しませんでした(中央と右のパネル、白い矢印を参照)。しかし、Poly Aはほとんどのボーンにラベルを付けることに成功しました。画像はZEISS Axio Imager顕微鏡で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:HCR =ハイブリダイゼーション連鎖反応;DAPI=4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

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図6:過剰消化された成体マウスアキレス腱におけるHCR Poly-A標識の例。 HCRを用いた過剰消化された成体マウスアキレス腱におけるPoly A RNA標識の代表画像。このサンプルでは、ポリAとDAPIは正しく共局在していますが(右パネル)、腱の典型的な一軸形態は崩れています(白い矢印)。画像はZEISS Axio Imager顕微鏡で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:HCR =ハイブリダイゼーション連鎖反応;DAPI=4',6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

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図7:成体マウスのアキレス腱におけるPoly A RNAscopeのネガティブコントロール。 Poly A RNA標識のネガティブコントロールの代表的な画像で、Poly Aプローブは添加されず、増幅プローブは添加されています。予想通り、DAPIは核の標識に成功しましたが(左パネル)、Poly A(中央パネル)には信号が存在しませんでした。画像はZEISS Axio Imager顕微鏡で撮影しました。スケールバー = 20 μm。略語:DAPI= 4'、6-ジアミジノ-2-フェニルインドール。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

ディスカッション

この論文では、既存のISHツールを活用して、高度な特異性と感度で腱組織に使用できるようにするために行われた変更について説明します。腱は非常にマトリックス密度の高い組織であるため、プローブの浸透性と特異性を同程度にするためには、多くの場合、プロトコールの調整を行う必要があります。これらの特定の透過化方法と腱組織のシグナル増幅戦略は、議論されたISHプロトコルの有効性を改善するために不可欠です。これらのステップを踏まなければ、プローブが腱内のRNAと強く特異的な相互作用を持つことは困難です。

RNAscope14では、プロトコルが腱組織でより効果的に機能するように、使用する前処理バッファーを調整する必要があります。具体的には、TEG Bufferを前処理として使用することで、プローブの標的RNAへのアクセスが向上します。TEG Bufferに加えて、プロテアーゼIV治療は標準時間を超えて延長され、長さは45分から1時間になります。HCR15では、洗浄の長さが長くなり、RNA-FISHアッセイの開始前にポストフィックスステップが追加されました。ポストフィックスステップには、4% PFA、PBT、プロテイナーゼK、およびアセチル化溶液へのインキュベーションステップの追加が含まれていました。まとめると、これらの修飾は、プローブの腱RNAへのアクセスを改善し、バックグラウンドノイズを低減するのに役立ちます16,17。しかし、これらのプロトコルの変更は、使用する前処理溶液を変更し、RNAへのプローブ結合のアクセシビリティを高めるための後固置ステップを追加することで、ISHで使用されるプローブの特異性と感度を向上させるのに役立ちますが、プローブ設計には限界があります。

プローブのRNAアクセシビリティによってもたらされる課題を改善するために、ISHアッセイを最適化するための追加の変更を加えることができます。mRNA15のデジタル絶対定量法であるdHCRイメージングを使用する場合は、プローブのハイブリダイゼーション効率を向上させるために、プローブの濃度を上げることをお勧めします。さらに、増幅ステップでより短い期間を使用することで、単一分子ドットの回折が制限されます。インキュベーション期間が長いと、イメージング時の筋肉からの自家蛍光が高くなる可能性があります。選択した腱が成体マウスのアキレス腱よりも密度が高いおよび/または大きい場合は、4% PFA 固定ステップの期間を長くすることをお勧めします。

前述の市販のISHプロトコルに対するこれらの変更は、成体マウス組織またはより長い前処理または固定ステップを必要とするより密度の高い組織に最も役立ちます。既存のプロトコルに対するこれらの変更は、プローブのRNAへのアクセシビリティを向上させるのに役立ちますが、一部のプローブは、異なる年齢コホートでプローブが結合する標的RNAモチーフのアクセシビリティに応じて、高齢マウスで若いマウスや新生児よりも高い濃度またはより長いインキュベーション時間を必要とする場合があります。RNAscopeの前処理ステップでのプロテアーゼの使用に関しては、成体マウス腱にはプロテアーゼIVを45分間、新生児腱にはプロテアーゼIIIを30分間使用することをお勧めします。アッセイの有効性を評価するため、プロトコルの調整を評価するため、またはサンプル間での発現を一般的に比較するために、いくつかのコントロールを使用してもよい。例えば、Poly Aプローブを核対比染色と比較することで、ランの特異性を評価したり、サンプル中のRNAの分布/分解を評価したり、RNAがプローブにアクセス可能であったことを確認したりすることができます。同様に、ハウスキーピング遺伝子のプローブも、RNAアクセシビリティにアクセスするための制御として機能することができます。既知の発現パターンを持つターゲットを持つポジティブコントロールは特異性の確認に役立ち、ネガティブコントロールは潜在的な非特異的結合の評価に役立ちます。

全体として、組織の空間的遺伝子発現プロファイルをよりよく理解するためにいくつかの技術が開発されているため、結果を検証するためにはさらに多くの方法が必要です。特に、シングルセルRNA Seqなどのアッセイは、遺伝子発現を評価するための一般的なツールとして浮上していますが、その結果をより高い分解能で空間的に調べる必要があります。これを支援するために、ISHアッセイを使用して、より定量的なアッセイによって生成されたトランスクリプトームデータの空間的文脈をよりよく理解し、検証することができます。腱では、このようなアッセイを組み合わせると、固有の細胞集団に特異的なマーカーを空間的に検証することにより、腱、腱中部、および筋腱接合部に存在する細胞をさらに特徴付けるのに役立ちます。

開示事項

著者には、開示すべき利益相反はありません。

謝辞

著者は、これらのプロトコルの開発とトラブルシューティングにおける支援と励ましについて、Jenna GallowayとGalloway Labのメンバーに感謝します。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
1 M トリエタノールアミン緩衝液
10% ホルマリン溶液
10% Tween-20
20x 生理食塩水クエン酸ナトリウム緩衝液
4% PFA
ACD RNAscope 蛍光マルチプレックス蛍光試薬キット V2ACD323100
酢酸無水物
Axio イメージャー顕微鏡ZEISS
C57BL/J6 マウス JAX識別子: 000664
カバースリップフィッシャー 12-541-042
ddH2O
ETDAサーモフィッシャーAM9262
EtOH
グルコースVWR ケミカルズ BDHBDH9230-500G
HCR RNA-FISH BUNDLEモレキュラー・インスツルメンツ・インク
HybEZ II ハイブリダイゼーションシステムACD
Immedge Barrier PenVector LaboratoriesH4000
Leica SPE 共焦点顕微鏡Leica
ParafilmFisher
リン酸緩衝生理食塩水 (PBS, 1x)InvitrogenAM962510x PBS を milli-Q 水で希釈して 1x 溶液を得る
プロテアーゼIV
プロテイアーゼKロシュ3115836001
RNAscope H2O2およびプロテアーゼ試薬ACDPN 322381ACD RNAscope蛍光マルチプレックス蛍光試薬キットに含まれています V3
RNAscopeマルチプレックス蛍光検出キットACDPN 323110ACD RNAscope蛍光マルチプレックス蛍光試薬キットV2
に含まれる RNAscopeターゲット検索試薬ACD322000ACD RNAscopeに含まれる蛍光マルチプレックス蛍光試薬キットV4
RNAscopeウォッシュバッファーACDPN 310091ACD RNAscope蛍光マルチプレックス蛍光試薬キットV5
 プローブ希釈剤ACD300041
スライドホルダーStatLab4465A
蓋付き染色皿StatLabLWS20WH
Superfrost Plus 顕微鏡スライドフィッシャー1255015処理、帯電スライド
Tris-HCl
キシレンSigma-Aldrich534056-4L
に含まれる

参考文献

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