方法論記事

薬用植物同定のためのDNAバーコードの応用

2.7K 閲覧数

DOI:

10.3791/66925

2024年11月1日

この記事について

サマリー

本プロトコルでは、DNAバーコーディング技術を使用して植物由来の薬用材料を認証し、薬用植物 Angelica sinensis (Oliv.)ディールズは例として挙げられました。

要約

薬用植物は世界的に貴重な資源であり、健康を維持し、病気を治療するために世界中で使用されています。しかし、不純物の存在はそれらの発達を妨げます。DNAバーコーディングは、標準的なDNA領域による種同定技術であり、従来の薬用植物の迅速かつ正確な同定を容易にします。DNAバーコーディングのプロセスは、6つの基本的なステップを伴います:1)薬用植物の処理、2)遠心カラム法を使用して薬用植物から高品質の総DNAを抽出する、3)植物のユニバーサルプライマーで標的DNA領域内部転写スペーサー2(ITS2)を増幅し、サンガーシーケンシングを実行する、4)スプライシングとアラインメントシーケンスを使用してターゲット配列を取得し、 5)バーコード配列をバーコードライブラリと照合して識別し、6)配列を整列させ、種内および種間変異を比較し、系統発生的な隣接結合ツリーを構築します。結果に示されているように、ユニバーサルプライマーは標的領域を増幅することができます。Basic Local Alignment Search Tool (BLAST) は、特定されたパーセンテージが 100% であることを示し、隣接結合ツリーは、スプライシング シーケンスが A. sinensis OR879715.1 クレードでクラスター化され、クレード支持値が 100 であることを示しています。このプロトコルは、薬用植物や不純物を同定する効果的な方法としてDNAバーコーディング技術を適用するための参考資料を提供します。

概要

薬用植物は幅広い薬理作用を持ち、病気の治療や予防に重要な物質です。漢方薬や医薬品の薬用植物に対する市場の需要は膨大で、現在も成長しています。薬用植物の市場が拡大するにつれて、偽和の問題は薬用植物の開発を妨げてきました。現在、薬用植物の偽和物はこれらの理由に苦しんでいます:1)薬用植物の類似した形態は、それらを正しく識別して使用することを困難にします1,2,3,4,5、2)薬用植物の需要の増加により、市場での供給が不十分になっています6,7、3)薬用植物は高価で価格が変動し、経済的に価値のある材料の代わりに安価なハーブを使用することは、不純物混入と市場不当利得につながっています8,9。薬用植物の適切な同定と使用の問題を解決するためには、非専門家が発生源10を特定できる技術が必要である。

薬用植物を外観と匂いだけで適切に識別し、使用するには限界があります11。より正確な同定と品質管理のために、物理化学的方法が採用されています12。例えば、薄層クロマトグラフィー(TLC)は、薬草を迅速に同定する方法であり、中国薬局方に含まれています。それにもかかわらず、植物13を特定するための参照標準が必要です。高速液体クロマトグラフィー(HPLC)は、定性試験と定量試験の両方を実行できるため、医薬品の品質試験に適しています。ただし、この機器は高価であり、14,15を操作するには専門知識が必要です。DNAバーコード技術は、安定したDNA配列を用いて類似した形態の植物を区別することで、迅速かつ正確な種同定技術です。Hebertらは、ゲノム16内の認識された比較的短いDNA配列を使用する種を同定するためのDNAバーコード技術を提案し、Chenらは、薬用植物の分子同定のための普遍的な配列としてITS2を提案し、6600以上の植物を同定し、高い同定能力を発見した17。ITS2および葉緑体遺伝子断片に基づく薬用植物の研究は、資源保護、市場規制、および国際貿易の分野での応用により、種レベルで種を区別する能力を実証している17,18,19。DNAバーコードの適用は、従来の同定方法の限界を克服することができ、これは薬用植物の品質と安全性を確保し、資源の乱用と混乱を防ぐのに役立つ20。これは、薬用植物の研究、持続可能な方法でハーブ産業の成長のサポート、および消費者が正しい薬を使用することの保証を提供するのに有益であることが証明されています21,22,23,24。

この論文では、A. sinensisを例に、DNAバーコーディングを適用して薬用植物を同定する方法のプロトコルを概説しています。DNAバーコードは、生物のDNAに含まれる1つ以上の標準化された短い遺伝子マーカーを利用して、特定の種に属するものとして認識します。現在の薬用植物の同定方法には一定の限界があります。従来の形態学的同定は、専門家の広範な経験に大きく依存しており、これは人的要因の影響を受ける可能性がありますが、化学的同定は主要な化合物の不純物混入などの問題を引き起こしやすい傾向があります。対照的に、DNAバーコードは、より正確な種同定手段を提供し、速度、高い再現性、安定性などの利点を提供します。さらに、この技術により、インターネットや情報プラットフォームを通じて既存の種配列データを一元的に管理・共有することが可能になり、種の同定の効率と信頼性が大幅に向上します11,12。それらの類似した形態と薬用部分のために、A. sinensisはしばしば他の種と混同され、市場で頻繁に誤用されたり、意図的に置き換えられたりします25。Yangらは、DNAバーコードを使用してA.anomalaを偽の薬物と区別するためにA.anomalaを同定しました26。Yuanらは、アンジェリカの23種を収集し、DNAバーコードを使用してさまざまな種を区別しました27。このプロトコルに記載されている手順に従うことで、ユーザーは前処理からバーコード配列とバーコードデータベースとの最終的な照合まで、植物由来の医薬品材料を認証することができます(図1)。

プロトコル

1. サンプル調製

  1. 本研究では、甘粛省ミン県の標高2800mの地点で低温で日照時間が長い2歳の A. sinensis を実験材料として利用しました。3つの植物が選択され、その中から3つ以上の根が実験のために選択されました。最初に滅菌水で根をすすぎ、次にアルコール噴霧器またはアルコール綿棒で根を洗浄して、実験結果の精度に影響を与える可能性のある汚染を防ぎます。滅菌したメスを使用して根を5mm未満に切り、さらに分析するために混合します。(図2)。
    注意: または、根を液体窒素に入れてカリカリにすると、根が折れやすくなります。薬用植物の形や硬さなどの特性に応じて、器具を使って対処してください。
  2. 並行実験用の実験サンプルを3本用意します。各サンプルにAS-1、AS-2、AS-3のラベルを付けます。約100 mgの新鮮な組織または20 mgの乾燥重量組織(風乾)を取り、2 mLの遠心分離チューブに入れます。.
  3. 2つの5 mmステンレス鋼ビーズを2 mL遠心分離チューブに入れます。チューブを60Hzで60秒間動作するハイスループットティッシュグラインダーに移します。

2 サンプルからのDNA抽出

注:この研究では、CTAB法に基づく植物ゲノムDNA抽出キットを使用しています。DNA抽出は、取扱説明書に従って行われますが、独自のNuclear Isolation Buffer(NIB)を追加するなど、いくつかの変更を加えています。このプロトコルは、最初に組織から汚染物質を分離し、次に最初の核単離ステップ28,29,30を追加することにより、DNAの純度を向上させます。

  1. 予冷したNIBを800 μL加え、サンプルをボルテックスミキサーに置き、5分間振動させます。
  2. 遠心分離機に入れ、13,780 x g で10分間処理します。上清を取り除きます。
  3. 手順2.1〜2.2をさらに3ラウンド繰り返します。
    注:NIBは高品質のDNAを抽出し、その製剤にはドラフトで取り扱わなければならないいくつかの危険な化学物質が含まれているため、初心者が取り扱うのがより困難になります。ただし、この手順は必須ではありません。ユーザーは、この推奨事項に従うか、これらの手順をスキップするかを選択できます。その詳細な定式化を 表1に示します。
  4. バッファーP1 600 μL と RNase A (10 mg/mL) 5 μL を添加します。サンプルをボルテックスミキサーに置き、ボルテックスして混合します。サンプルを65°Cのウォーターバスで1.5時間インキュベートし、インキュベーション中にチューブを2〜3回反転させます。
  5. 200 μLのBuffer P2を加えて十分に混合し、氷上に15分間置いてから、13,780 x g で10分間遠心分離します。
  6. 上清をフィルターカラムAFに慎重に吸引し、13,780 x g で2分間遠心分離し、収集チューブに収集した下部濾液を新しい1.5 mL遠心チューブに移します。
  7. 濾液の体積を計算し、P3の体積の1.5倍を加え、すぐに振とうして混合溶液を得ます。
  8. 調製した混合物650μLを吸着剤カラム吸着カラム(AC)に加え、5分間インキュベートした後、13,780 x g で30〜60秒間遠心分離します。
  9. 手順2.8で得られたろ液を再度ACに加え、遠心分離機にかけ、廃液を捨てます。ステップ2.7の残りの混合溶液で手順を繰り返します。
  10. 600 μLのリンス溶液WBを添加し、13,780 x g で30秒間遠心分離し、廃液を廃棄して、手順を1回繰り返します。
  11. ACカラムを空の収集チューブに戻し、13,780 x g で2分間遠心分離し、室温で放置して残留エタノールを除去します。
  12. 吸着剤カラムACを取り出し、清潔な1.5 mL遠心分離チューブに入れます。65°Cに加熱した吸着膜の中央に、滅菌した脱イオン水45μL(ddH2O)を加えます。 室温で5分間放置します。13,780 x g で2分間遠心分離します。
  13. 得られた溶液をカラムに戻し、13,780 x g で室温で2分間遠心分離します。
  14. ろ過した溶液を収集します。分光光度計を使用してDNA濃度を測定します。OD260は核酸の吸光度を表します。DNA品質決定基準には、OD260 / OD280 = 1.80-2.00、正常範囲。OD260/OD280>2.00;大量のRNA汚染があります。OD260 / OD280<1.80、タンパク質、フェノール、およびその他の汚染物質があります。

3 ターゲットフラグメントの増幅と検出

注:植物の提案されたDNAバーコード領域に基づいて適切な増幅プライマーを選択してください。反応条件を 表2に示します。

  1. プライマー増幅に対応した反応条件を設定します。9.5 μL の ddH2O、12.5 μL の 2x PCR Master Mix、およびフォワードプライマー、リバースプライマー、テンプレート DNA をそれぞれ 1 μL 充填した 0.2 mL の遠心分離チューブを使用して、合計容量 25 μL にします。ネガティブコントロールを調製し、テンプレートを水で置き換えます。
  2. 1x Tris Acetate-EDTA(TEA)バッファー20 mLとアガロース0.2 gを加えて加熱し、1%アガロースゲルを調製した後、2 μLの核酸ゲル染色剤(10,000倍)を加えて十分に混合します。混合物をゲルキャスティングトレイに注ぎ、固化させてアガロースゲルを得る。3 μL の PCR 産物と 2 μL の DNA マーカー 5000 bp をゲルに加えます。
  3. 電圧を120V、電流を400mA、電気泳動を40分間行います。汎用性の高いゲル画像解析システムを使用して、ゲルを表示し、結果を確認します。

4. データの収集と分析

注:さまざまなシーケンスアセンブリおよび分析ソフトウェアがあります。例として、Codon code Aligner V11.0.1とMEGA11を使用しています。

  1. アライナーを使用してシーケンシングファイルを開き、ピークマップを観察し、双方向シーケンシングピークマップファイルをスプライスします。
    1. [新しいプロジェクトの作成] を選択し、[OK] をクリックしてソフトウェアのホームページに移動します。FileメニューのAdd Samplesを選択し、シーケンストレース形式で処理するファイルを選択し、Unassembled Samplesでインポートしたファイルとしてソフトウェアに直接インポートします。
    2. [Contig] を選択し、セクションで [Advanced Assembly] を選択し、[Assemble in Groups] を選択します。初めてのユーザーは、[グループで組み立てる] を選択した後、[名前の定義] というダイアログが表示されます。ファイル名に従ってサンプル名パーツを定義し、アセンブルをクリックします。整列されたシーケンスが表示されます。
    3. 隠れマルコフモデル(HMM)ベースのモデル解析に従って、完全なITS2配列を取得します。5.8s (CGAGGGCACGCCTGCCTGGGCGTCA) と 28s (CGACCCCAGGTCAGGCGGGGCCACC) の配列31 を使用して、5.8s と 28s の領域を削除するために、最初から整列した配列を検索します。
    4. 「Go」を選択し、セクションで「Search Sequence」を選択し、「OK」をクリックして一致するシーケンスを取得します。[Contig] を選択し、セクションで [Delete] を選択して 5.8s と 28s の領域と低品質のシーケンスを削除すると、ソフトウェアはマッチングのためにスプライシング シーケンスを出力します。
  2. 3つの並行実験ステップで得られたスプライシング配列を同定に用いるほか、国立バイオテクノロジー情報センター(NCBI)のヌクレオチドデータベースを用いた BLAST検索 を選択し、Global Pharmacopoeia Genome Database(GPGD)データベースに対応する Species Identification ToolSpecific Primer ITS2 を選択してください。
    注:NCBI32 およびGPGD33 には、薬用植物および動物の塩基配列が含まれており、それらは権威あるデータベースとして認識されています。それらの主要な同定方法は、配列比較34 (BLAST)に基づく方法である。同一性の結果からの同一性の割合は、類似性が最も高い種が対象属であるかどうかを判断するために使用されます。
  3. 配列のアラインメントにMEGA11を使用し、種内および種間配列の変動を解析および比較し、系統発生的な隣接結合木を構築します。
    1. NCBIからAngelicaの3種とPeucedanum praeruptorumの1種の配列をアウトグループとしてダウンロードしてください。これらの配列を、得られた結果配列とともに解析します。
    2. [ファイル] をクリックし、[ファイル/セッションを開く] を選択してファイルをインポートすると、ダイアログが表示されます。Align > DNAを選択し、配列比較のためにAlign by ClustalWを選択します。「データ」で「系統解析」を選択し、ホームページに戻ります。Construct/Test Neighbor-Joining Tree in PHYLOGENYをクリックします。ソフトウェアは系統樹を生成します。

結果

サンプルDNAの品質

OD260/OD280の吸光度比の範囲は1.80〜1.84であった。分光光度計で測定した各サンプルのDNA量は100 ng/μLを超えており(表3)、サンプルDNA抽出の品質が良好であることを示しています。これは、抽出プロセス中にサンプルがタンパク質、RNA、または試薬によって汚染されておらず、サンプルの品質が良好で、ダウンストリームのPCR増幅に適していることを示しています。

PCR解析

ゲル電気泳動は、3つの並行実験サンプルのPCR産物に対して行った。セットアップは、 図3に示すように、マーカー、サンプル1〜3(AS-1、AS-2、AS-3)、およびネガティブコントロール(0)でした。AS-1、AS-2、AS-3のサイズはいずれも500 bpで、1つの明るく明確なバンドがあり、0にはバンドはなく、抽出されたDNAがITS2プライマーを使用して500 bpに増幅されたことを示しています。

シーケンシング結果のデータベース比較

シークエンシングの結果は、GPGDデータベースの種同定結果と同じNCBIデータベースのBLAST同定結果を組み合わせることで、100%の配列類似性を持つ A. sinensis を同定しました(表4)。BLAST の結果は、最も高いパーセント ID スコアと最も低い e 値を使用して決定されました。種の同定は、最も高い最大同定率に単一の種が含まれ、>99%のスコアを獲得した場合に成功したと見なされました。スコアが99%≤場合は、シーケンシングファイルの品質、またはPCR産物が汚染されていないかを確認してください。

系統樹に基づく種同定の解析

その結果、構築されたニュージャージー州の系統樹では、4種すべてが別々のクレードに集まっており、アウトグループとしての P.praeruptorumAngelica クレードから分離されていることが示されました。スプライシング配列は A. sinensis OR879715.1 クレードでクラスター化され、クレード支持値 (ブートストラップ) は 100 であり、他の 2 種、 A. dahurica と A. cartilaginomarginata はそれぞれ別々のクレードにクラスター化され、スプライシング配列が A. sinensis であることが証明されました (図 4)。

figure-results-1
図1:薬用植物種の識別フローチャート。 (A)植物の処理、DNAの抽出、薬用植物のシーケンシング、(B)データベースを使用した種配列の比較、および(C)種間の系統関係を確認するための分類学的検証のための系統樹の使用。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

figure-results-2
図2:薬用植物のDNA抽出ワークフロー。 (A)薬用植物からDNAを抽出するには、合計6つのステップが含まれます。(B)PCR機器の増幅およびPCRサイクリングプロセス。(C)電気泳動。(D)サンガーシーケンシングおよびシーケンシングクロマトグラム。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

figure-results-3
図3: Angelica sinensis (Oliv.)のゲル電気泳動ディールズ。 DL5000のDNAマーカーを分子マーカーとして、AS-1、AS-2、AS-3をサンプルとし、0を対照群とします。ゲル電気泳動を行ったところ、AS-1、AS-2、AS-3の全てのサンプルに500 bpのバンドがあり、コントロールではバンドが見られませんでした。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

figure-results-4
図4:13の配列から作成された隣接結合系統樹。 NCBIデータベースから4つの植物種から合計10の配列をダウンロードし、スプライシング配列を比較して、種内および種間配列の変動を解析および比較し、系統発生的に隣接する結合木を構築しました。 この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。

材料・設備名用量
ポリビニルピロリドン10グラム
トリス-HCl1 M 50 mL
エチレンジアミン四酢酸0.5 M 20 mL
NaClの20.45 グラム
β-メルカプトエタノール10ミリリットル
滅菌脱イオン水500ミリリットル

表1:核分離バッファー製剤試薬。

バーコード入門プライマー配列 (5'-3')PCR増幅シーケンシング
ITS2のR:3RGACGCTTCTCCAGACTACAAT94°C5分間
94°C30代40サイクル
56°C30代
F:2階ATGCGATACTTGGTGTGAAT72°C45秒
72°C10minの

表2:DNAバーコードプライマーとPCR反応条件。

サンプルDNA抽出(ng/μL)OD260/OD280
AS-11241.84
AS-21841.81
AS-31641.82

表3: アンジェリカシネンシス (Oliv。DielsはDNA品質を抽出しました。

サンプルアラインメントされた配列の長さ(bp)スプライシングシーケンスの長さ(bp)GC(%)NCBI:BLASTの割合(%)GPGD:種の識別率(%)
AS-1500bpの229bpの55.50%100%100%
AS-2504bpの229bpの55.50%100%100%
AS-3499bpの229bpの55.50%100%100%

表4:シーケンシング結果のデータベース比較。

ディスカッション

分子同定技術は、従来の同定方法よりも習得が容易です。それは、植物の成長段階に影響されず、主観的な判断や専門的な専門知識の蓄積に依存しないため、伝統的な薬草の同定の限界を克服する35。他の種は、その類似した形態と薬用部分のために A. sinensis と混同されるが、DNAバーコードを使用することで、それは決定的に識別することができる36

このプロトコルの主要なステップには、いくつかの重要な考慮事項が含まれます。まず、ハーブの取り扱いやDNA抽出の際の汚染を避けることは、外来DNAや不純物が結果を損なうのを防ぐために不可欠です。外部の汚染物質を除去するには、サンプルの適切な洗浄が必要であり、徹底的な粉砕は試薬相互作用の表面積を増やすことでDNA抽出を強化します。また、試薬との効率的な混合を確保し、より良い細胞溶解とDNAの放出を可能にするために、適切な量のサンプルを使用することも重要です。最後に、過度の加熱はDNAの劣化につながり、抽出されたDNAの品質に影響を与える可能性があるため、ウォーターバス時間の制御は非常に重要です。これらのステップを組み合わせることで、分析用の高品質なDNAの抽出を確実に行うことができます。

薬用植物には、DNAの抽出と増幅に影響を与える多糖類とポリフェノールが含まれています。Nuclear Isolation Bufferを使用すると、これらの物質の影響が軽減され、核溶解が可能になり、高純度gDNA 28,29,30の抽出が向上します。現在、DNA抽出法には、遠心カラム法、CTAB法、SDS法の3つの主要な方法があります。しかし、この研究では、その安定性、簡便性、効率性、および高濃度のDNAを抽出する能力37、および溶出バッファーを加熱することで、より高品質でDNAを溶出するのに役立つため、実験に遠心カラム法を選択しました。ここで、この研究では、ITS2特異的プライマー17,38を選択し、短いITS2配列は、高い種間変動と同定の範囲が広い他のプライマー39と比較して、効率的な分類学的配列タグとして機能する。増幅の失敗の考えられる理由は、一部のサンプルのDNA分解です。別の可能性は、使用されるITS2ユニバーサルプライマーのペアが特定の種に対して機能しないか、またはユニバーサルプライマー40の代替セットを使用する可能性があることである。BLAST の結果は、最も高いパーセント ID スコアと最も低い e 値を使用して決定されました。種の同定は、最も高い最大パーセント同定が単一の種を含み、スコアが >99%40,41 の場合、成功したと見なされました。スコア ≤99% の場合、シーケンシング ファイルの品質を確認するか、PCR 産物が汚染されているかどうかを確認してください。

要約すると、DNAバーコードは、伝統的な漢方薬の品質管理と国際的なハーブ取引において重要な役割を果たすべきです。このホワイトペーパーでは、植物DNAの抽出に関するいくつかの洞察と、薬用植物の同定にDNAバーコード技術を使用するための詳細なガイドを提供します。実験プロセス中に注意すべき重要なポイントを強調しています。したがって、この論文は基本的なハーブの識別のための参照を提供し、より多くの人々が技術を迅速に習得するのに役立ちます。ただし、単一軌跡バーコード識別の効率が不十分な特殊なケースでは、参照ライブラリに依存します。高い種被覆率を持つ参照ライブラリーを構築することは、DNAバーコード42を使用して種を特定するための大きな一歩であり、多くの研究者は、マルチローカスバーコード技術が効率を向上させることができると提案している43,44。さらに、分子技術の発展に伴い、ZhengらはDNAバーコード技術を等温DNA増幅技術およびRPA-LFD検出と組み合わせて、有毒植物45を迅速に認証し、いくつかの既製キット46も開発している。DNAバーコードデータベースは絶えず改善されており、漢方薬の同定方法の一般化、標準化、国際化を促進する上で重要な役割を果たしています。

開示事項

著者らは、この研究は、潜在的な利益相反と解釈される可能性のある商業的または金銭的関係がない状態で実施されたと宣言します。

謝辞

この仕事は、才能のある人、科学研究開始、中国伝統医学大学(030040015)の資金助成プロジェクトを紹介することによって支援されました。

材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
CTABラピッドプラントゲノムDNA抽出キット上海恵陵バイオテクノロジー株式会社NG411M広範囲の植物の異なる組織から高品質のゲノムDNAを迅速に抽出するのに適しています
DL5000 DNAマーカー南京バザイムバイオテクノロジー株式会社MD102-02Ready-to-use製品、ゲルを泳動する際には、本製品を直接電気泳動に適量摂取してください。
電気泳動北京Liuyiバイオテクノロジー株式会社DYY-6Cは、タッチスクリーンのデザインを採用し、設定電圧を表示し、同時に電流を設定し、並列出力
エチレンジアミン四酢酸BeijingpsaitongBiotechnologyCo.、LtdE70015-100G核分離緩衝製剤試薬を表示することができます。
Goldview 核酸ゲル染色剤(10,000回)Yisheng Biotechnology(Shanghai)Co.、Ltd10201ES03ガロースゲル電気泳動を使用してDNAを検出すると、DNAに結合し、強力な蛍光シグナルを生成します。
高速卓上遠心分離機長沙ハイテク産業開発区 Xiangyi Centrifuge Instrument Co.H1650サンプルの迅速かつ効率的な分離のために、このコンパクトで軽量な遠心分離機は信頼性の高い安全性を提供します
ハイスループットティッシュグラインダーShanghai Jingxin Industrial Development Co.Tiss-48サンプルを粉砕するための高周波振動装置
http://www.gpgenome.com/Institute of Chinese Materia Medica, China Academy of Chinese Medicalデータベースには、ゲノム配列、遺伝子セット、オルガネラゲノム、低カバレッジのゲノムデータ、DNAバーコード配列が含まれています。
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/米国国立医学図書館-国立バイオテクノロジー情報センターは、生物医学およびゲノム情報へのアクセスを提供することにより、科学と健康を進歩させます。
Kylin-BellHaimen Qilinbel Instrument Manufacturing Co. (キリンベル海門 Qilinbel Instrument Manufacturing Co.)VORTEX-5高速渦の形での急速な混合、混合速度、均一性、徹底性
LifeTouchHangzhou BORI Technology Co.TC-96/G/H(b)B先進の熱電冷凍技術と新開発のTAS技術の採用により、総合性能の向上を実現
多機能ゲル画像解析システム上海天寧生命科学有限公司南西オペレーションセンターTanon-Mini Space 2000条件をマッピングするためのグラジエント機能と最大30°Cのグラジエント温度範囲で、迅速な遺伝子増幅実験を行います。C
NaCl北京ソーラーバイオサイエンス&テクノロジー株式会社S8210-100核分離バッファー製剤試薬。
ナノドロップ OneGenes Ltd.ND ONEDNA、RNA、タンパク質のサンプルをわずか1-2 & microで数秒で定量化します。サンプル
ポリビニルピロリドンShanghai yuanye Bio-Technology Co.、LtdS30268-500g核分離緩衝剤製剤試薬のL。
スノーフレーク製氷機上海Zhixin実験機器技術有限公司ZX-60Xは、ロータリー押出製氷方法を採用し、製氷速度が速く、製氷効率が速く、
ティッシュホモジナイザー用ステンレス鋼ビーズBeyotime Biotechnologyに採用しています。F6623振動による組織やその他のサンプルの粉砕および混合のための装置
トリスアセテート-EDTAバッファーBeyotime Biotech IncST716TAEは、アガロースゲル電気泳動で頻繁に使用されるDNA電気泳動用の一般的に使用されるバッファーです。
Tris-HCl北京ソーラーバイオサイエンス&テクノロジー株式会社T8230Nuclear Isolation Buffer formulation 試薬。
ウォーターバスケトル上海Senxin実験器有限公司DK-8D精密なサーモスタットおよび温度調節、正確で信頼できる温度制御
β-メルカプトエタノール上海Eon化学技術Co.R054186-100ml  Nuclear Isolation Buffer製剤試薬。
ア Sciences-HerbGenomics 増幅を

参考文献

  1. Chen, S. L., et al. Conservation and sustainable use of medicinal plants: Problems, progress, and prospects. Chin Med. 11, 37(2016).
  2. Han, J., et al. An authenticity survey of herbal medicines from markets in China using DNA barcoding. Sci Rep. 6, 18723(2016).
  3. Zhang, W., et al. Integration of high-throughput omics technologies in medicinal plant research: The new era of natural drug discovery. Front Plant Sci. 14, 1073848(2023).
  4. Ji, C., et al. Determination of the authenticity and origin of panax notoginseng: A review. J AOAC Int. 105 (6), 1708-1718 (2022).
  5. Parveen, I., Techen, N., Khan, I. A. Identification of species in the aromatic spice family apiaceae using DNA mini-barcodes. Planta Med. 85 (2), 139-144 (2019).
  6. Techen, N., Parveen, I., Pan, Z., Khan, I. A. DNA barcoding of medicinal plant material for identification. Curr Opin Biotechnol. 25, 103-110 (2014).
  7. Xiong, Y., et al. Market access for Chinese herbal medicinal products in Europe-a ten-year review of relevant products, policies, and challenges. Phytomedicine. 103, 154237(2022).
  8. Virk, J. K., Gupta, V., Kumar, S., Singh, R., Bansal, P. Ashtawarga plants - suffering a triple standardization syndrome. J Tradit Complement Med. 7 (4), 392-399 (2017).
  9. An, Y. L., Wei, W. L., Guo, D. A. Application of analytical technologies in the discrimination and authentication of herbs from fritillaria: A review. Crit Rev Anal Chem. 54 (6), 1775-1796 (2024).
  10. Li, M., Cao, H., But, P. P. H., Shaw, P. C. Identification of herbal medicinal materials using DNA barcodes. J Systemat Evolut. 49 (3), 271-283 (2011).
  11. Khan, A., et al. Herbal spices as food and medicine: Microscopic authentication of commercial herbal spices. Plants (Basel). 13 (8), 1067(2024).
  12. Techen, N., Crockett, S. L., Khan, I. A., Scheffler, B. E. Authentication of medicinal plants using molecular biology techniques to compliment conventional methods. Curr Med Chem. 11 (11), 1391-1401 (2004).
  13. Sasidharan, S., Chen, Y., Saravanan, D., Sundram, K. M., Yoga Latha, L. Extraction, isolation and characterization of bioactive compounds from plants' extracts. Afr J Tradit Complement Altern Med. 8 (1), 1-10 (2011).
  14. Wei, Y., et al. Identification techniques and detection methods of edible fungi species. Food Chem. 374, 131803(2022).
  15. Mehle, N., Trdan, S. Traditional and modern methods for the identification of thrips (thysanoptera) species. J Pest Sci. 85 (2), 179-190 (2012).
  16. Hebert, P. D., Cywinska, A., Ball, S. L., Dewaard, J. R. Biological identifications through DNA barcodes. Proc Biol Sci. 270 (1512), 313-321 (2003).
  17. Chen, S., et al. Validation of the its2 region as a novel DNA barcode for identifying medicinal plant species. PLoS One. 5 (1), e8613(2010).
  18. Li, D. Z., et al. Comparative analysis of a large dataset indicates that internal transcribed spacer (its) should be incorporated into the core barcode for seed plants. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (49), 19641-19646 (2011).
  19. Raskoti, B. B., Ale, R. DNA barcoding of medicinal orchids in asia. Sci Rep. 11 (1), 23651(2021).
  20. Chen, S., et al. DNA barcoding in herbal medicine: Retrospective and prospective. J Pharm Anal. 13 (5), 431-441 (2023).
  21. Pei, Y., et al. Whole-genome sequencing in medicinal plants: Current progress and prospect. Sci China Life Sci. 67 (2), 258-273 (2024).
  22. Zhu, S., Liu, Q., Qiu, S., Dai, J., Gao, X. DNA barcoding: An efficient technology to authenticate plant species of traditional chinese medicine and recent advances. Chin Med. 17 (1), 112(2022).
  23. Pang, X., Shi, L., Song, J., Chen, X., Chen, S. Use of the potential DNA barcode its2 to identify herbal materials. J Nat Med. 67 (3), 571-575 (2013).
  24. Ajmal Ali, M., et al. The changing epitome of species identification - DNA barcoding. Saudi J Biol Sci. 21 (3), 204-231 (2014).
  25. Peng, H., Chen, G., Ou, L. L., Luo, M., Zhang, C. Development of a new efficient scar marker for authentication of Angelica sinensis, an important traditional Chinese medicine. Scienceasia. 47 (6), 751-757 (2021).
  26. He, Y., et al. Authentication of Angelica anomala avé-lall cultivars through DNA barcodes. Mitochondrial DNA. 23 (2), 100-105 (2012).
  27. Yuan, Q. J., et al. Identification of species and materia medica within Angelica l. (umbelliferae) based on phylogeny inferred from DNA barcodes. Mol Ecol Resour. 15 (2), 358-371 (2015).
  28. Xie, P. J., Ke, Y. T., Kuo, L. Y. Modified ctab protocols for high-molecular-weight DNA extractions from ferns. Appl Plant Sci. 11 (3), e11526(2023).
  29. Stefanova, P., Taseva, M., Georgieva, T., Gotcheva, V., Angelov, A. A modified ctab method for DNA extraction from soybean and meat products. Biotech Biotechnol Equipment. 27 (3), 3803-3810 (2013).
  30. Li, Z., Parris, S., Saski, C. A. A simple plant high-molecular-weight DNA extraction method suitable for single-molecule technologies. Plant Meth. 16, 38(2020).
  31. Keller, A., et al. 5.8s-28s rrna interaction and hmm-based its2 annotation. Gene. 430 (1-2), 50-57 (2009).
  32. Morgulis, A., et al. Database indexing for production megablast searches. Bioinformatics. 24 (16), 1757-1764 (2008).
  33. Liao, B., et al. Global pharmacopoeia genome database is an integrated and mineable genomic database for traditional medicines derived from eight international pharmacopoeias. Sci China Life Sci. 65 (4), 809-817 (2022).
  34. Ghahramanlu, A., Rezaei, M., Heidari, P., Balandari, A. Species survey of iranian barberry genotypes using ITS2 sequences and basic local alignment search tools. Erwerbs-Obstbau. 65, 2491-2499 (2023).
  35. Han, K., Wang, M., Zhang, L., Wang, C. Application of molecular methods in the identification of ingredients in Chinese herbal medicines. Molecules. 23 (10), 2728(2018).
  36. Wang, X., Liu, Y., Wang, L., Han, J., Chen, S. A nucleotide signature for the identification of Angelicae sinensis radix (danggui) and its products. Sci Rep. 6, 34940(2016).
  37. Chen, R., et al. DNA based identification of medicinal materials in Chinese patent medicines. Sci Rep. 2, 958(2012).
  38. Hou, D. Y., et al. Molecular identification of corni fructus and its adulterants by ITS/ITS2 sequences. Chin J Nat Med. 11 (2), 121-127 (2013).
  39. Han, J., et al. The short ITS2 sequence serves as an efficient taxonomic sequence tag in comparison with the full-length its. Biomed Res Int. 2013, 741476(2013).
  40. Trujillo-Argueta, S., Del Castillo, R. F., Velasco-Murguía, A. Testing the effectiveness of rbcla DNA-barcoding for species discrimination in tropical montane cloud forest vascular plants (oaxaca, mexico) using blast, genetic distance, and tree-based methods. PeerJ. 10, e13771(2022).
  41. Marizzi, C., et al. DNA barcoding brooklyn (new york): A first assessment of biodiversity in marine park by citizen scientists. PLoS One. 13 (7), e0199015(2018).
  42. Antil, S., et al. DNA barcoding, an effective tool for species identification: A review. Mol Biol Rep. 50 (1), 761-775 (2023).
  43. Pang, X., et al. Utility of the trnh-psba intergenic spacer region and its combinations as plant DNA barcodes: A meta-analysis. PLoS One. 7 (11), e48833(2012).
  44. Tripathi, A. M., et al. The internal transcribed spacer (its) region and trnh-psba [corrected] are suitable candidate loci for DNA barcoding of tropical tree species of India. PLoS One. 8 (2), e57934(2013).
  45. Zheng, X. S., An, W. L., Yao, H., Xu, J., Chen, S. L. Rapid authentication of the poisonous plant Gelsemium elegans by combining filter-paper-based DNA extraction and rpa-lfd detection. Engineering. 7 (1), 14-16 (2021).
  46. Jiang, C., et al. Barcoding melting curve analysis for rapid, sensitive, and discriminating authentication of saffron (Crocus sativus l.) from its adulterants. Biomed Res Int. 2014, 809037(2014).

再版と許可

このJoVE記事のテキストまたは図の再利用許可をリクエスト

許可をリクエスト

タグ

DNA ITS2 BLAST

関連記事