方法論記事

マクロ藻類の炭素除去能力の定量的評価:バイオマス推定および炭素除去計算のための標準化されたプロトコル

DOI:

10.3791/70068

2026年4月3日

この記事について

サマリー

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

本研究は、大型藻類バイオマスの推定と炭素除去能力の計算のための標準化され再現可能なプロトコルを提示します。このワークフローはサンプリング、計算、報告を調和させ、研究間の比較可能性を向上させ、中国北部および南部の代表的なケルプおよびサルガッサム群落で実証されています。

要約

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マクロアルジーは青色炭素系の重要な構成要素です。しかし、フィールドサンプリング設計、バイオマス推定モデル、会計ワークフローが大きく異なるため、研究間での炭素除去効果の比較は依然として困難です。本研究は、大型藻類バイオマスの推定と炭素除去の定量化のための標準化かつ再現可能なプロトコルを提示し、大型藻類の生物学的特徴、海洋生態調査手法、炭素循環会計の原則を統合した統一ワークフローを提供します。プロトコルは、一貫したサンプリングパラメータ、調和された計算ステップ、標準化されたデータ記録と報告を規定し、研究間の比較可能性を高め、地域間の統合を促進します。私たちは、中国北部の沖合昆布群落と南中国のベイサルガッサム群落からの代表的なケーススタディを用いて、対照的な分類群と典型的な浅瀬沿岸生息地を代表的に示します。このワークフローを用いると、チーム内の相対的変動は10%未満、チーム間の相対誤差は15%未満に抑えられ、定められた変動閾値と一致しました。全体として、このプロトコルは、サイトや研究チーム間で比較可能な大型ブルーカーンデータセットを生成するための運用上透明性のある枠組みを提供し、資源調査や炭素除去評価を支援します。

概要

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ブルーカーボンとは、海洋生態系に捕捉・蓄積される炭素を指します。長期間の貯蔵と高い隔離効率が特徴であり、地球規模の炭素循環の重要な要素であり、気候変動緩和のための重要な自然メカニズムとなっています1。青色炭素系内では、マクロ藻類は沿岸、干潮帯、亜潮帯に広く分布し、光合成によって大気中のCO2 を有機炭素に固定します。この生産の一部はより深い水域や沖合の水域に輸出され、長期的な炭素貯蔵に寄与する可能性があり、もう一部はスタンディングバイオマス2として残されます。

しかし、現在の大型藻類炭素除去の可能性の評価は、依然として限定的な方法論的標準化に制約されています3.この制約は主に三つの側面に反映されています。第一に、バイオマス推定手法は研究ごとに大きく異なります。例えば、四分円の大きさやサンプリング努力は大きく異なり(例:0.25 m²から4 m²)、場合によっては再現が実施されず、面積ベースのバイオマス推定に大きな変動が生じます。第二に、ブルーカーボン(または炭素除去)計算のワークフローやパラメータ選択はしばしば一貫性がなく、同様の生態学的条件下でも会計結果が異なることがあります。第三に、データ記録と報告に統一されたプロトコルが存在せず、研究結果間の比較可能性が低下し、地域間の統合が制限されます

マクロ藻類の炭素除去経路は、マングローブや海草などの根付く沿岸植物とは異なるため、標準化されたアプローチが必要です。主に成長地での堆積物埋没に依存するのではなく、大型藻類炭素除去は急速なバイオマス蓄積や有機物の沖合輸出により密接に関連しています。このメカニズムは、高い生産性と迅速な回転と相まって、地域間のサイトや種を比較する際に方法論的な一貫性を特に重要にしています5

このギャップを埋めるために、私たちは大型藻類の生物学的特徴、海洋生態調査手法、炭素循環会計を統合した統一ワークフローを備えた完全な標準化プロトコルを開発しました。プロトコルは5つのモジュールに構成されています:(1) 設計原則と適用範囲、(2) 標準化されたバイオマス推定、(3) 標準化されたブルーカーボン計算、(4) 品質管理およびデータ管理、(5) プロトコル検証。北部の沖合昆布群集と南部のベイサルガッサム群落の代表的な事例研究を用いて適用性を検証し、種、生活史、浅瀬沿岸生息地での利用を示しました6

本研究では、大型藻類の炭素吸収を長期炭素隔離ではなく炭素除去と呼びます。大型藻類は一般的に硬い基質上で直接堆積物を埋めずに成長するため、>100年の貯蔵基準を必ずしも満たしません。巨大藻類由来の炭素のうち、100年規模の封留を達成できるのはごく一部だけです。

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プロトコル

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このプロトコルを使って、サイトや研究チーム間で比較可能な大型藻類バイオマスおよび炭素除去推定値を作成できます。全体のワークフローの概要は 図1に示されています。

1. プロトコル設計の基本

  1. 設計原則
    1. サンプリングとバイオマス推定を、マクロアルガルの生物学的形質や地域の生態学的文脈(例:成長形態、群集構造、栄養塩・季節の動態)に合わせ、測定が自然の変動性を反映するようにすること。
    2. 対象の大型藻類の局所的な旺盛な成長期間に合わせてサンプリングウィンドウを選択し、休眠期や腐敗期のサンプリングは避けてください。
    3. 検証済みの元素分析手法を用いて炭素含有量を測定します。試料準備、分析設定、校正手順を記録し、すべての試料に対して一貫した方法を適用すること
    4. あらかじめ定義された計算フレームワークを用いて炭素除去率を推定します。光合成に関連する用語を、局所に適した環境入力(例:光の持続時間や水温)や、該当する場合は生理学的データソースを用いてパラメータ化します。
    5. 各ステップを明確な運用指示として作成し、現場および検査室測定の受容基準(QC閾値)を指定して地域やチーム間の再現性を確保します8。
    6. 一般的に利用可能な実験室や現場機器(例:バランス、乾燥オーブン、元素分析装置、メジャー)を使用し、主要仕様(例えばバランスの分解能、乾燥温度)を報告してください。
    7. QC要件を撤廃せずに手順を効率化し、バイオマス、炭素含有量、計算出力に実質的な影響を与えるステップを優先順位付けします。
  2. 適用範囲
    1. このプロトコルは、付着した大型藻類や浮遊する大型藻類(例:ケルプやサルガッサム)に適用します。
    2. このプロトコルは微小藻類やプランクトン藻類には適用しないでください。
    3. サンプリングが運用可能な浅い沿岸水域(例:沿岸沖合、湾、干潮帯)に適用を限定すること。通常のサンプリング作業のために目標深度制限を<20mに設定してください。
    4. このプロトコルは、サンプリング条件や機器要件が従来の調査能力を超える深海大型藻類群落には適用しないでください。

2. バイオマス推定の標準化プロセス

  1. 予備準備
    1. サンプリング期間は、暦月ではなく、地域の環境条件や種ごとの物候に基づいて決定してください。
    2. 「活発な成長期間」を、地域の観察や地域的な証拠に基づき、最大のバイオマス蓄積と光合成活動の期間と定義してください。
    3. 低緯度および高緯度のシステムにおいて、サイト特異的なフェノロジー情報を用いてサンプリングタイミングを選択します。タイミング選択の根拠(例:地域のモニタリング記録や地域調査)を文書化する10.
  2. クアドラット設定とサンプリング
    1. 各サンプリングポイントで四角フレームを基板上に安定的に配置します(図2)。フレーム内の垂直高さ差を<5cmにしてください(定規や固定基準で確認)。
    2. 研究区域内の大型藻類群集の空間的多様性を示すためにサンプリングサイトを選択してください。干潮帯では、干潮後1時間以内に四角形を設置し、乾燥や大気曝露によるバイオマスおよび炭素測定への影響を最小限に抑えます。
    3. 生息地の範囲や異質性に応じて、研究区域ごとに少なくとも3〜5か所のサイト(またはブロック)を設置してください。各サイトで3つの複製クアドラットをサンプル(最低総計:各研究エリアあたり9〜15クアドラット)。
    4. 種の形態や成長形態に応じて四辺形面積を設定し(例:ケルプ優勢群落は1 m²、浮遊またはまばらに分布する大型藻類は2 m²) 11.
    5. 各サイトの最初の3クアドレートを用いて初期の変動性チェックを実施します。単位面積あたりの乾燥バイオマスの変動係数(CV)が10%を超える場合は、CVが≤10%まで下がるまで四分差を加算します。主要な標準化サンプリングパラメータと受理閾値は 表1にまとめられています。
    6. 採取したサンプルは収穫直後に氷に置きましょう。輸送温度を5〜10°Cに保ち、熱劣化を抑えましょう。
    7. 採取後24時間以内に検査室にサンプルを届けてください。輸送が24時間を超える場合は、塩分濃度に合わせた海水中でサンプルを保管し、定期的にサンプルの状態を監視してください。
  3. バイオマスパラメータ測定
    1. 新鮮な重量測定
      1. サンプルを袋から取り出し、脱イオン水で2〜3回優しくすすぎて、付着した沈殿物や塩分を取り除きます。組織の水分損失を減らすために、洗い流す時間を30秒≤に制限してください。各クアドラットから一貫してバイオマスを収集してください(研究デザインで特に指定されていない限り、ホールドファスト、スティプ、ブレードも含む)。
      2. 吸収性の紙を使って表面の水分を吸い取る。試料表面に目に見える水が残らなくなるまで2〜3回紙を交換します。
      3. サンプルをあらかじめ計量された容器(例:ビーカーやペトリ皿)に入れます。電子天秤で≥0.01gの精度で計量します。安定化後の総質量を記録し、容器質量を差し引いて純生水重量(g)を計算します。
      4. 各サンプルを3回連続で計量してください。平均値を最終的な新鮮な重さとして使います。もし2つの測定値が>2%差があれば、試料の状態(例:水滴や不安定な位置)を確認し、基準を満たすまで繰り返し計量します。
    2. 乾重測定
      1. 新鮮な重み測定後、各四分円サンプルから代表的なサブサンプルを3つランダムに選びます。各サブサンプルの重さが>10gであることを確認しましょう。60°Cで乾燥したサブサンプルを採取。 各乾燥間隔の後、サブサンプルを乾燥器で室温まで冷却してから計量します。
      2. 残った材料を炭素含有量分析のために保存してください。分析が24時間以内に行われた場合は、密封されたラベル付き容器で4〜10°Cで冷蔵し、サンプルを暗闇に保管してください。より長時間保存する場合は、−20°Cで冷凍してください。
      3. 一定の重さになるまで乾燥を続けます。一定重量を、連続した2回の測定間で≤0.05 gの差と定義します。サブサンプルの乾燥重量(g)を記録します。
      4. 各サブサンプルごとに乾燥重量(乾燥重量)÷(新鮮重量)として乾燥と新鮮の比率(Rdf)を計算します。Rdf の CV が≤5%の場合、平均R df を使ってそのクアドラットの総新鮮重量を総乾燥重量に変換します。CVが5%を超える場合は、サブサンプル数を5に増やし、Rdfを再推定します。
    3. 植物の高さと被覆の測定
      1. 各象限に10体の代表的な個体(胞子体/葉)をランダムに選びます。ホールドファストアタッチメントポイントから最上部の完全な生きた組織(破損・侵食した先端を除く)までの高さ(cm)を測定します。個々の身長を記録し、四分の一の平均身長(Havg)を計算します。
      2. クラスター状藻類の場合は3〜5個のクラスターを選び、クラスタごとの平均高さを測定し、全体のHavgを計算します。
      3. グリッド法でカバレッジを測定します。四分円を100個の等しいグリッド(10 cm×10 cm)に分割します。
      4. 標的藻類の被覆率が50%を超えるグリッドの数を数えます。カバレッジをC(%) = (N/100) ×100として計算し、小数点以下1桁の21まで報告してください。ここでNは100個中グリッドの数です。
  4. バイオマス計算モデル
    1. 単位面積あたりのバイオマス計算:バイオマス計算ワークフローで使用されるすべての方程式、変数、報告単位は 表2にまとめられています。
      1. 新鮮な量の単位面積あたりの重量(FWper g/m2)を計算してください: figure-protocol-1(1)
      2. 単位面積あたりの乾燥重量(DWあたり、g/m2)を計算してください: figure-protocol-2(2)
        ここでAは四分面面積(m2)、FWtot は四分面(g)の総新鮮重量です。
        注:あるサンプリングポイントに複数の複製が存在する場合は、各レプリケートごとにFWとDWを計算し、平均値をサンプリングポイント値として報告します
    2. 個体群バイオマス推定
      1. 個体群分布域(S, m2)を決定します。リモートセンシング画像が利用可能であれば、フィールドサーベイとリモートセンシング画像を組み合わせて境界座標を取得し、GISソフトウェアで集団境界を区画し、それに応じてSを計算します。リモートセンシング画像が利用できない場合は、巻尺で集団の長さと幅を測定します。長方形面積の式を用いてSを推定し、不規則な面積を複数の長方形に分割して別々に計算し、合計Sを得ます。
      2. 総個体数バイオマス(B, t)を計算してください: figure-protocol-3(3)
        ここで106 はグラムをメートルトンに換算します。(t; 1 t = 103 kg)
      3. バイオマスが人口サブリージョン間(例:限界地域とコアエリア)で異なる場合は、各区画ごとにDW/1 を別々に計算し、各区画の面積を掛けて合計してBを得ます。
    3. バイオマスの動的計算
      1. 成長率を計算してください(r、1日目): figure-protocol-4(4)
        ここで、DWの終わり は期間終了時の単位面積あたり乾燥重量(g/m²)、DW開始 は周期開始時の単位面積あたり乾燥重量(g/m²)、tは成長時間(日数)です。
      2. 年間平均バイオマス(DWavg_year, g/m 2)を、1年内のすべてのサンプリングイベントからのDWi の平均として計算します。
        figure-protocol-5(5)
        ここで、nは1年あたりのサンプル数(無次元)で、1年以内に実施された独立したサンプリングイベントの総数(例:季節調査や月次調査)を指し、iは年間平均バイオマスを計算するために用いられる各サンプリング時間を表す指標、DWi は第i回サンプリングイベントの単位面積あたりの乾燥重量(g/m²)を表します。

3. ブルーカーボン計算の標準化プロセス

  1. 炭素含有量の測定
    1. すでに一定重量に達した乾燥サンプル(すなわち炭素含有量分析用に取っておいた材料)をクラッシャーに入れ、2〜3分間粉砕して均質化します。機械式粉砕機やモルタル・ペッスルを使って、炭素分析に適した均一な粒子を得ます。
    2. 均質化した材料を100メッシュのふるい(開口サイズ≈150μm)でふるいにかけます。アンダーシーブの分率を集め、あらかじめ番号が付けられた乾燥済みのバイアルに移します。
    3. 水分の吸収を最小限に抑えるために、前処理済みのサンプルを乾燥機で保存してください。炭素含有量の測定は7日以内に完了してください。
    4. 保管中に水分の吸収をチェックし、必要に応じて乾燥質量補正を行いましょう。保存済みの事前処理サンプルのアリコートをmと共に計量し、その後60°Cでオーブン乾燥させて重量を一定にし、その後mとして計ります。
    5. 水分の取り込み率(MR, %)は次のように計算します: figure-protocol-6(6)
      炭素含有量を報告する際は、水分吸収が無視できない場合にMRを用いて真の乾燥質量ベースで値を表現します。
  2. ベンチマーク手法:元素解析
    1. 試料決定前に認証された基準物質を用いて元素分析装置を校正してください。キャリブレーション誤差を<0.5%にしてください。
    2. 動作条件を設定します:燃焼温度950°C、減温650°C、キャリアガス流量200 mL/min。
    3. 事前処理済みのサンプル5〜10mgをあらかじめ計量されたスズカプセルに重り込み、カプセルを折りたたんで圧縮して燃焼時の漏れを防ぎます。
    4. カプセルを元素分析装置に搭載し、装置が自動的に燃焼、還元、分離、検出を完了できるようにします。
    5. 各サンプルごとにこの決定を3回繰り返します。平均値を最終的な炭素含有量(C, %) として用いてください
      figure-protocol-7(7)
      ここで、mC は試料中の炭素の質量(mg)、m試料 は分析された試料の総質量(mg)です。
    6. 3つの測定値のうち相対標準偏差(RSD)が1%を超えた場合は、受け入れ基準を満たすまで再測定します。RSDは次のように計算します:
      figure-protocol-8(8)
      ここでSDは3つのC測定値の標準偏差、C̄はそれらの平均です。
  3. 代替方法:燃焼(点火時の損失)
    1. この方法は元素解析装置が利用できない場合のみ使用してください。報告書にこの方法を明確に示し、3.3.5で説明された訂正手順を適用してください。
    2. 5〜10gの乾燥済み予処理サンプルを坩堝に入れます。60°Cで一定重量まで乾燥させ、その後550°Cのマフル炉で4〜6時間燃焼します。乾燥機で冷やし、残留物の重さを量ります。
    3. C(%)を次のように計算してください: figure-protocol-9(9)
      ここでm0は燃焼前の試料の乾燥質量(mg)、m は燃焼後の残渣の質量(mg)です。
    4. 各バッチに対して、元素分析を用いて3〜5個の代表サンプルに対してCを決定します。燃焼導出Cと元素分析Cの間に補正方程式を当てはめ、同じバッチのすべての燃焼導出結果に補正方程式を適用します。

4. 炭素除去率の計算

  1. 成長速度に基づく炭素除去率
    1. 炭素除去率(CR, g C m-2 d-1): figure-protocol-10(10)
      ここで、ΔDWは単位面積あたりのバイオマス成長(DW−DW開始、g m⁻²)を表します。Cは炭素含有量(小数点で35.2% = 0.352)、tは成長時間(日数)です。
      注意:DWの開始終了 に使われる同じ開始・終了時刻ノードを用いてtを定義し、再現性のためにサンプリング日と区間長を記録してください。
  2. 一次生産性に基づく炭素除去率(明暗ボトル法)
    1. ペアの培養ボトル(明るいと暗いもの)を用意します。ボトルをサイト用の海水で3回洗い、その後サイト用の海水で満たし、ヘッドスペースを最小限に抑え、事前にボトルのラベルを貼ってください。
    2. 各ボトルに代表的な大型藻類の材料を入れます。混雑を避け、孵化中に藻類が自然な向きを保てるバイオマス量を使いましょう。
    3. 空気飽和水を基準に、メーカーの指示に従って溶存酸素(DO)メーターを校正します。測定誤差が≤0.1 mg L⁻¹であることを確認してください。
    4. 明るいボトルと暗いボトルの初期DOを測定し、DO₀、DO₀、黒、mg L⁻¹の値を記録します。
    5. サンプリング場で、ほぼ自然の温度と光の下で24時間孵化します。孵化中はボトルを乱さず、直射日光や日陰による過熱を防ぎましょう。
    6. 明るいボトルと暗いボトル(DO₁、DO1、mg L⁻¹)で最終DOを測定します。
    7. DOの変化を次のように計算してください: figure-protocol-11(11)
      figure-protocol-12(12)
    8. 純酸素生産量を次のように計算してください: figure-protocol-13(13)
      ここでVは海水の体積(L)です。
    9. 酸素生成を炭素固定に変換する(Cフィックス、mgC: figure-protocol-14(14)
      ここでO純は 純酸素生産量(mg O2)、0.375は係数(1 mg O2 は固定時の0.375 mg Cに相当)
    10. 一次生産性(CR生産性、g C m⁻² d⁻¹)に基づいて炭素除去率を計算します。
      figure-protocol-15(15)
      ここで1000はmgをgに変換し、Aはサンプル(予測)面積(m²)、tは培養時間(日数)です。
      注意:抱卵中は藻類を自然な状態に保ち、物理的な乱れを避けるようにしてください。一貫性を報告するために、孵化中の海水温度とおおよその光の状態を記録してください。
  3. 両手法の統合と補正
    1. 平均CRを次のように計算してください: figure-protocol-16(16)
    2. 相対誤差(RE)を次のように計算します: figure-protocol-17(17)
      注意:REが10%<場合は、最終CRavgを使いましょう。REが10%≥の場合は、時間ノードや操作の整合性(例:成長間隔の定義一致、潜伏時間、サンプル面積推定)を確認し、不一致に最も寄与する測定や計算手順を繰り返します。
    3. 補正CR(CRcorr、g C m⁻² d⁻¹)を次のように計算します: figure-protocol-18 (18)
      ここでCRmeas は測定された炭素除去率(g C m⁻² d⁻¹)、T は測定された光持続時間(h)です。Tlight_stand は標準的な光持続時間(h)です。

5. 炭素貯蔵および炭素フラックスの変換

  1. 炭素貯蔵(C貯蔵、t C)を計算する: figure-protocol-19(19)
    ここでBavg_year は年間平均個体群バイオマス(t)、Cは炭素含有量(小数点)です
  2. 年間炭素フラックス(Fc, t C yr-1)を補正長期炭素シンク(CSlong_corr)として定義します:
    figure-protocol-20(20)
  3. FcをCO2 相当に換算: figure-protocol-21(21)
    ここで 1 t C = 3.67 t CO2。このプロトコルで用いられる炭素貯留、炭素除去率、炭素吸収指標、フラックス換算の関係は 図3にまとめられています。

6. 品質管理システム

  1. サンプリング段階での品質管理
    1. サンプリング担当者に統一訓練を提供し、クアドラット設定、サンプル採取、パラメータ記録の標準化された作業を確保すること(表 1参照)。
    2. 研修後に評価を実施してください。クアドラットのレイアウト誤差は<5%、新重量測定誤差は<2%にすること。評価に合格した後のみ、現場サンプリングに参加できるよう許可してください。
    3. 各サンプリングセッションの前に、標準重り(例:100gまたは500g)を使って電子天秤を校正します。校正結果を計測器校正表に記録してください。サンプリング中にバランスが動いた場合は再調整してください。
    4. サンプリング前に、既知の座標のある場所でGPSロケーターを校正します。位置誤差を<5mにしてください。陰影や信号不良条件下で測定を行う場合は、データ処理中に偏差を記録し、座標を修正してください。
    5. 標準溶液を使って毎日水温計と塩分計を校正します。水温の校正誤差を<0.2°C、塩分校正誤差を<0.2にしてください。
    6. 採集時に各サンプリング地点の海水の水温と塩分を測定し、データベースに値を記録します。
    7. 各サンプリングポイントごとに3つの複製クアドラットを設定します。3つの四分方位にまたがるDW 変分係数が10%を超える場合は、さらに2つの重複四分方位数を加え、変異係数が<10%になるまで繰り返します。
    8. 収集されたすべてのサンプルは、実験室処理が完了するまで冷蔵(5〜10°C)で保管し、必要に応じて追加の再現決定が可能になります。
    9. 各クアドラットサンプルごとに、新鮮重量、乾燥重量、炭素含有量の3つの並行測定を設定します。相対標準偏差を<5%にし、基準が満たされない場合は再決定を行います。
  2. 実験分析段階での品質管理
    1. ほこりや有機試薬による汚染を最小限に抑えるため、クリーンな実験室環境でサンプルの前処理と分析を行います。
    2. 実験用表面は毎日アルコールで拭き取り消毒し、再利用可能な機器は事前に乾燥・滅菌してください。
    3. 使用前に元素分析装置のキャリアガス圧力を確認し、0.5MPaを超えていることを確認してください。燃焼炉の温度変動が<5°Cに達した時点で測定を開始します。
    4. 各測定バッチ終了後、炉が安全な運転温度まで冷却された後、燃焼管を清掃し、クロスサンプル汚染を最小限に抑えましょう。
    5. 使用前に電子バランスは一切使わないでください。新鮮な重さと乾重を3回測定します。生日重量は相対標準偏差を≤2%、乾燥重量は≤5%とします。サンプルごとに少なくとも3回炭素含有量を測定し、第3節(炭素含有量測定)で定められた受け入れ基準を適用してください。
    6. 一次生産性インキュベーションは各サイトごとに少なくとも重複し、測定誤差の閾値を超えた場合は再インキュベーションを行う。
  3. データレビュー
    1. 実験データの監査に2人のレビュアーを割り当てます。最初のレビュアーに、元の記録(サンプリングメタデータ、計測器パラメータ、測定結果)の完全性を確認することを義務付けます。
    2. 2人目のレビュアーに計算精度(例:Rdf、DWper、CR、およびその後の変換)を確認させること。
    3. 監査時に特定された問題を記録し、必要に応じて再測定や再計算を実施します。
    4. 機器の校正ログ、並列判定の相対標準偏差、異常データ処理のメモをQC証拠として記録し、これらのQCレコードをデータベース内の各サンプリングバッチにリンクします。

7. データ管理

  1. フィールドワーク前に標準化されたデータベーステンプレートを作成し、同じテンプレートを各拠点やチームで使用しましょう。
  2. 調査エリア名、ブロック番号、サンプリングポイントのGPS座標、サンプリング日、サンプリング担当者、天候条件などのサンプリング情報を記録します。
  3. 水温、塩分、水深、光持続時間(T光)、溶存酸素濃度(利用可能な場合)などの環境パラメータを記録します。
  4. 四分の面積(A)、四分の一の新鮮な重量(FWtot)、四分の一つの乾燥重量(DWtot)、乾燥生水比(Rdf)、単位面積あたりのバイオマス(DWあたり)、個体群分布面積(S)、および総個体群バイオマス(B)を記録します。
  5. 炭素含有量(C)、炭素除去率(CR)、短期炭素吸収源(CSショート)、修正済み長期炭素吸収源(CSlong_corr)、炭素貯蔵量(C貯蔵)、炭素フラックス(Fc)など、ブルーカーボン指標を記録しています。
  6. 機器の校正記録、並列判定の相対標準偏差、異常データ処理指示を含む品質管理データを記録する16
  7. 成長段階のラベル(例:旺盛な成長期間と非成長期間)を一貫して記録し、各サンプリングキャンペーンの月・年を記録します。

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結果

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ケース 1:北部沖合ケルプ個体群の炭素除去能力の評価

調査区域およびサンプリング期間:現地サンプリングは山東省青島市の沖合昆布養殖地域(水深5〜8m)で実施されました。測定値は、成長期(2022年5月)と成長が少ない期間(2022年11月)に収集されました。

サンプリング配置:養殖エリア内では、昆布の空間的多様性を捉えるために養殖線に沿って1m×1mの四角尺が配置されました。複製クアドラットは農業区域全体に分散され、独立した測定と個体群の代表的なカバーを確保しました。サンプリング地域の地理的範囲は4に示されています。

バイオマス指標:

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ディスカッション

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このプロトコルの核心的な強みは、既存の大型藻類炭素除去能力評価における方法論的変動に直接対応している点にあります。実際には、象限仕様、測定手法、計算モデルの違いにより、同じ沿岸システム内でも炭素シンク推定値が2倍から3倍に及ぶことがあります17。運用順序、パラメータ定義、計算ロジックを標準化することで、プロトコルはサイト間の比較性を向上させ、報告される差異が真の生態学的変動ではなく一貫性のない方法によって引き起こされるリスクを制限します。このような評価が通常行われる代表的な沿岸生息地タイプは5に示されています

プロトコルを適用するには、種の形質や成長動態との明確な整合性が必要です。マクロ藻類は生活史や物候に著しく異なり、系統的バイアスを避けるためにサンプリング設計はこれらの違いを反映すべきです。ケルプのような一年生分類群では、旺盛な成長期と非活力な成長期を分けるこ...

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開示事項

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著者には利益相反を主張するものはありません。

謝辞

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この研究は、広東省現代海洋牧畜産業イノベーション技術研究(2024-MRI-001)、広東省汕頭市科学技術プロジェクト(STKJ2025010、STKJ2025037)、広東省海洋バイオテクノロジー重点研究所基金(GPKLMB201901)によって支援されました。珠海海洋センターと汕頭大学に研究施設を提供していただき感謝申し上げます。青島と厦門の現地チームのデータ収集と、炭素含有量測定のための検査室分析者の皆様に特別な感謝を申し上げます。また、リモートセンシングデータやGIS技術サポートの貢献者にも感謝いたします。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
電子天秤メトラー・トレドML204T試料の計量用
元素解析器サーモ・フィッシャーフラッシュスマート炭素含有量解析のために
オーブンメマートUN55試料の乾燥用
GPSデバイスガーミンGPSMAP 65s録音場所について
溶存酸素計YSIですProODODOレベルの測定のために

参考文献

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  2. Stauber, J. L., Adams, M. S., Batley, G. E., Golding, L. A., Hargreaves, I., Peeters, L., Reichelt-Brushett, A. J., Simpson, S. L. A generic environmental risk assessment framework for deep-sea tailings placement. Sci. Total Environ. 845, 157311(2022).
  3. Xiang, C., Zhong, Y., Li, G., Song, X., Huang, Y. Planktonic carbon metabolism of an underwater coral atoll in the oligotrophic sea: a case study of Zhongsha Atoll, Central South China. Front. Mar. Sci. 10, 100123(2023).
  4. Xu, H., Pang, T., Zhang, L., Liu, J. Photosynthetic performance of the red algae Gracilariopsis lemaneiformis under high seawater pH: Excess reactive oxygen production due to carbon limitation. Photochem. Photobiol. 101 (2), 254-262 (2025).
  5. Zhang, D., Sun, J. Z., Fu, M. H., Li, C. J. Photosynthetic performance and antioxidant activity of Gracilariopsis lemaneiformis under phosphorus deficiency at elevated temperatures. Front. Mar. Sci. 11, 999999(2024).
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  7. Liu, B., Wang, L., Wang, R., Zhou, Z., Peng, C. Effects of desiccation-rewetting cycles on the carbon sequestration capacity of Ulva pertusa. J. Ocean Univ. China. 24 (1), 45-55 (2025).
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  18. Tao, X. Photosynthetic carbon sequestration capacity of macroalgae and their physiological responses to coupled acidification and temperature. [Master's thesis]. , Shanghai Ocean University. (2024).
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  20. Ying, M., Quan, W., Wang, T., Zhang, P., Kang, H. Research and application of carbon sequestration enhancement technology for large phytoplankton in Zhejiang's shallow seas. [Master's thesis]. , Wenzhou Vocational College of Science and Technology. (2022).
  21. Wernberg, T., Filbee-Dexter, K., de Bettignies, T., Leclerc, J. C., Davoult, D., et al. Smaller plants in warmer water could have implications for future kelp forests. Sci. Rep. 15, 9300(2025).
  22. Pedersen, M. F., Filbee-Dexter, K., Frisk, N. L., Sárossy, Z., Wernberg, T. Carbon sequestration potential increased by incomplete anaerobic decomposition of kelp detritus. Mar. Ecol. Prog. Ser. 663, 143-156 (2021).
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