タイムラプスイメージングを用いて、 ヒドラ 球体の再生過程を完全に追跡できます。このプロトコルでは 、ヒドラ 球体の生成方法を説明し、さまざまな取り付け戦略を論じ、回転ディスク共焦点顕微鏡および光シート蛍光顕微鏡を用いた長期ライブイメージングの実施方法を詳述します。
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タイムラプスイメージングを用いて、 ヒドラ 球体の再生過程を完全に追跡できます。このプロトコルでは 、ヒドラ 球体の生成方法を説明し、さまざまな取り付け戦略を論じ、回転ディスク共焦点顕微鏡および光シート蛍光顕微鏡を用いた長期ライブイメージングの実施方法を詳述します。
ハイドラは その卓越した再生能力で知られています。驚くべきことに、 ヒドラ 組織の小さな再生断片である ヒドラ 球体は 、新たに組織化する組織体を形成することができます。確立されると、この組織は周囲の組織を適切な口腔構造へと誘導します。数日以内に球状体は小さく、しかし完全に模様のあるポリプに発達します。このプロセスの比較的短い時間スケールにより、プロセス全体の連続したタイムラプス撮影が可能となり、再生の時空間的ダイナミクスを研究するユニークな機会を提供します。ここでは、再生中の ヒドラ 球体のタイムラプスデータセットを生成するための詳細なワークフローと代表的な結果を示します。プロトコルには球状体生成の詳細な手順と、画像診断に最適なサンプル選択のガイドラインが含まれています。本研究では、生体サンプルの長期イメージングに適したマウント戦略について論じ、回転円盤コフォーカス顕微鏡とライトシート顕微鏡の両方を用いたイメージング手法を実演します。ここで述べた原理は、長期イメージングを用いて動的な形態形成過程を研究できる他のモデルシステムにも広く適用可能です。
ヒドラは小さな淡水性ポリプで、その卓越した再生能力で最もよく知られています。体の中央から切り取られた組織断片は折りたたまれ、ヒドラの二つの上皮層である外胚葉と内胚葉からなる中空の球状体になります。再生中、これらのヒドラ球体は新たなオーガナイザーを形成します。約3日以内に体の軸が伸び、頭と足の末端の細胞が分化します。この比較的短い時間枠のおかげで、再生プロセス全体をライブイメージングで記録できます。タイムラプスデータセットは、ヒドラ球体が再生2期に経験する特徴的な膨張と縮縮のサイクルを明らかにするのに重要な役割を果たしています。これらの浸透圧駆動の機械的振動によって生じる組織の伸縮は、オーガナイザー3の局在化に寄与します。
長期のライブイメージングを成功させるには、動きのアーティファクトを避けるために迅速な画像取得が必要であり、同時に試料の光損傷を防ぐために光の照射を最小限に抑える必要があります。従来の単点走査共焦点顕微鏡はこれらの要件を満たしていません。しかし、高度な技術も開発されています。本プロトコルでは、スピニングディスク共焦点顕微鏡(SDCM)とライトシート蛍光顕微鏡(LS....
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記載されたすべての手順は、スイスの動物研究に関する国家規則の倫理ガイドラインに従って実施されました。実験を始める前に、ハイドラは週3回、少なくとも2週間は正常に与えるべきです。実験に使われるヒドラは健康であるべきで、性器官もなく芽も出ない。最近芽が出たヒドラも避けるべきで、群れ内の他のヒドラに比べて体長が短いため識別されます。
1. ヒドラ 球体の調製(図1)
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回転円盤共焦点顕微鏡(SDCM)と光シート蛍光顕微鏡(LSFM)の両方を用いて 、ヒドラ 球体の再生のための長期タイムラプスデータセットを成功裏に生成しました。再生は両方の画像設定で正常に起こり、球体は対称性を破り、伸長し、触手と足を3日以内に発達させました(図5A、 図6A、 補足映像1、補足映像2)。長時間の画像撮影の後、再生した動物は動きが鈍くなり、焦点が合わず、視野から完全に外れて動くようになりました(図5A)。
蛍光マーカーを用いて、 ヒドラ の再生に不可欠な動的な細胞プロセスを可視化しました。例えば、 ヒドラ 球体はアクチン線維を急速に再編成します。アクチン組織の多くは遺伝しますが、組織の両端.......
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SDCMとLSFMはどちらも再生中のヒドラ球体の長期タイムラプスデータセットを生成するのに適しています。各技術の光学原理は異なり、それぞれ独自の利点と制約があります(表2)。サンプルの完全かつ高解像度の表示が不要な場合、SDCMが好まれます。複数のサンプルを1つの実験で画像化できるため、薬物治療など様々な条件の試験に特に有用です。さらに、SDCMデータセットは処理・解析が容易であり、この手法がより高速でアクセスしやすいものです。しかし、包括的な空間的概要が不可欠な場合、LSFMが好まれるアプローチです。また、LSFMは高光感度の試料のイメージングにも有利です。SDCMは単点走査共焦点顕微鏡に比べて光毒性を大幅に低減しますが、試料全体を繰り返し照射します。LSFMは薄い光学面のみを励起し、光の露光と光損傷を最小限に抑えます13,14。しかし、LSFMは学習曲線が急です。マルチビューレジストレーションや融合.......
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著者たちは利益相反がないと宣言しています。
FMI先端イメージング・顕微鏡施設のローレ・プランタールさんの貴重なご意見に感謝申し上げます。この研究はノバルティス研究財団の支援を受けました。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| 20×/0.8 Plan-Apochromat objective | Zeiss | 440640-9903-000 | スピンディスク共焦点顕微鏡用 |
| 20x/1.0 W Plan-Apochromat water dipping objective | Zeiss | 421452-9700-000 | Zeiss Lightsheet 7の検出レンズとして使用 |
| 3DプリントされたFEPチャンバー用ホルダー | カスタムメイド | ||
| 4ウェルガラス底イメージングプレート(#1.5H) | Ibidi | 80427 | |
| アガロース | Carl Roth | 3810.4 | |
| FEPチャンバー用アルミニウムモールド | カスタムメイド | ||
| 塩化カルシウム | Sigma-Aldrich | C4901 | |
| 缶入りエア | Durable | POWERCLEAN STANDARD 400 | |
| 細胞培養プレート(6cm) | Thermo Fisher Scientific | 150288 | |
| D-(+)-グルコース | Sigma-Aldrich | G8769 | |
| FEPフォイル(127μm厚) | Adtech Polymer Engineering | ||
| FluoSpheres カルボキシレート改質(0.2μm、ダークレッド) | Thermo Fisher Scientific | F8807 | |
| ガラスキャピラリー | Brand | 701904 | |
| ガラス製パスツールピペット(150mm) | VWR | 612-1701 | |
| Hydra vulgaris | |||
| イメージングソフトウェア | Visitron | VisiView | スピンディスク共焦点顕微鏡用 |
| 倒立光学顕微鏡 | Zeiss | Axio observer 7 | スピンディスク共焦点顕微鏡用 |
| ライトシート顕微鏡 | Leica | Viventis Deep LS2 | |
| ライトシート顕微鏡 | Zeiss | Lightsheet 7 | |
| 低融点アガロース | Thermo Fisher Scientific | R0801 | |
| 塩化マグネシウム | Sigma-Aldrich | M8266 | |
| 硫酸マグネシウム | Sigma-Aldrich | M2643 | |
| マイクロスカルペル | pfm medical | 200300745 | |
| ピペットバルブ | |||
| ピストンロッドトランスファーペット | Brand | 701932 | |
| 塩化カリウム | Sigma-Aldrich | P9333 | |
| 安全バーンナー | INTEGRA Biosciences | FIREBOY plus | |
| sCMOSカメラ | Photometrics | Prime 95B | スピンディスク共焦点顕微鏡用 |
| 重炭酸ナトリウム | Fluka Analytical, Sigma-Aldrich | 71630 | |
| クエン酸ナトリウム二水和物 | Sigma-Aldrich | W302600 | |
| ピルビン酸ナトリウム | Sigma-Aldrich | P2256 | |
| スピンディスク共焦点スキャンユニット(50μmのピンホール) | Yokogawa | CSU-W1 | スピンディスク共焦点顕微鏡用 |
| ステレオスコープ | Leica | M80 | |
| TES | Sigma-Aldrich | T1375 | |
| 熱成形機 | Yuyao Jintai Machine Factory | Jintai JT-18 | |
| 組織培養皿(10cm) | VWR | 734-2321 | |
| Tris-HClバッファー | Roche Diagnostics | 10812846001 |
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