IL-1β誘導のC28/I2軟骨細胞モデルにおける炎症ストレスはmiR-590-5pを増加させ、SPRY2の発現を減少させました。この軸を調節することで、Beclin-1、LC3-II、Bcl-2の発現が変化し、miR-590-5p/SPRY2調節経路が、変形性関節症におけるオートファジー関連反応や軟骨細胞生存に影響を与える可能性が示唆されました。
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研究記事
* These authors contributed equally
IL-1β誘導のC28/I2軟骨細胞モデルにおける炎症ストレスはmiR-590-5pを増加させ、SPRY2の発現を減少させました。この軸を調節することで、Beclin-1、LC3-II、Bcl-2の発現が変化し、miR-590-5p/SPRY2調節経路が、変形性関節症におけるオートファジー関連反応や軟骨細胞生存に影響を与える可能性が示唆されました。
変形性関節症(OA)は、軟骨の進行性破壊と軟骨球の恒常性喪失を特徴とする、広く見られる変性関節疾患です。調節不全のオートファジーはOAの病因に寄与しますが、軟骨細胞におけるオートファジー関連応答を支配する分子メカニズムはまだ完全には解明されていません。本研究は、IL-1β誘導のC28/I2ヒト軟骨細胞を用いて、炎症性OA微小環境におけるmiR-590-5p/SPRY2調節軸の役割を調査しました。in vitro のOAモデルは、IL-1βでC28/I2細胞を処理することで確立されました。miR-590-5pおよびSPRY2の発現は定量PCRおよびウェスタンブロッティングを用いて評価されました。機能の増減と低下アプローチを用いて、SPRY2とmiR-590-5pがオートファジー関連マーカーであるBeclin-1およびLC3-II、ならびに生存関連タンパク質であるBcl-2に与える影響を評価しました。バイオインフォマティクス解析および救助実験を用いて、miR-590-5pとSPRY2の調節関係を調査しました。IL-1β処理はmiR-590-5pの発現を有意に増加させ、SPRY2 mRNAおよびタンパク質レベルを低下させました(P < 0.05)。SPRY2の過剰発現は、ベクリン-1およびLC3-IIの発現を著しく減少させ、それぞれ約65%と77%の減少を示しました(P < 0.05)。対照的に、miR-590-5pの過剰発現はBeclin-1、LC3-II、Bcl-2の発現を増加させ、miR-590-5pの阻害はこれらの効果を逆転させ、SPRY2の発現を回復させました。機能分析により、SPRY2はmiR-590-5pの下流規制ターゲットとして推定されていることが支持されました。これらの発見は、miR-590-5p/SPRY2軸が炎症性条件下でオートファジー関連マーカーの発現および軟骨細胞生存の重要な調節因子であることを示し、OAにおける治療標的としての潜在的な関連性を示唆しています。
世界中で最も多い関節炎の形態である変形性関節症(OA)は、痛み、移動障害、身体障害の主な原因であり、医療システムや社会に大きな負担をかけています。病理学的には、OAは関節軟骨の進行性変性、滑膜炎症、軟骨下骨1の病理的再構築を特徴とします。疫学的推計によると、世界中で約3億300万人がOAの影響を受けており、人口の高齢化や肥満率の増加に伴いこの数は増加すると予想されます2。中国では、症状を伴う膝関節関節症の有病率は8.1%と推定されており、特に女性や農村部の人口で不釣り合いに高いです。3.高い有病率にもかかわらず、現在の治療選択肢は主に非ステロイド性抗炎症薬(NSAIDs)による症状管理や進行疾患に対する外科的介入に限られています。変形性関節症治療薬(DMOADs)が存在しないことは、軟骨細胞の恒常性と生存を調節する分子メカニズムの理解が不完全であることを反映しています5。
関節軟骨の構造的および機能的完全性は、同化作用と分解活性のバランスを通じて細胞外マトリックス(ECM)の回転を維持する常駐軟骨細胞に依存しています6。OAの進行過程で、軟骨球は異常な機械的ストレスや炎症促進メディエーター、特にインターロイキン1β(IL-1β)や腫瘍壊死因子α(TNF-α)にさらされ、これらはマトリックス合成からマトリックス分解へのシフトを促進します。IL-1βマトリックスメタロプロテイナーゼ(MMP)および凝集酵素の産生を刺激し、タイプIIコラーゲンおよびプロテオグリカンの合成を抑制することで軟骨破壊に寄与します7。さらに、IL-1βは酸化ストレスやミトコンドリア機能障害を誘発し、軟骨細胞のアポトーシスや老化を引き起こします。したがって、炎症状態下で軟骨細胞の生存を調節する細胞内シグナル伝達経路の特定は、OA研究の優先事項であり続けています。
オートファジーは、損傷した小器官やタンパク質集合体の除去とリサイクルを通じて細胞の恒常性を維持する進化的に保存されたリソソーム分解経路です。基礎オートファジーは細胞の生存とエネルギーバランスに不可欠です。しかし、調節不全のオートファジーは疾患の進行に寄与することがあります。OAにおいて、オートファジーは一般的に軟骨細胞が細胞ストレスに適応しアポトーシスに抵抗する保護反応と考えられています10。過去の研究では、特に進行期疾患において、OA進行中にオートファジ活性が低下し、細胞の質管理が損なわれ、軟骨細胞の喪失が増加することが示唆されています11。オートファジー関連活性の指標として一般的に用いられるタンパク質はいくつかあります。ベクリン-1はオートファゴソーム開始に関与し、微小管関連タンパク質1のライトチェーン3(LC3-IからLC3-IIへの変換)は自己食体形成のマーカーとして広く用いられています。対照的に、B細胞リンパ腫2(Bcl-2)はベクリン1依存性オートファジーを阻害しつつ、抗アポトーシス効果も発揮します13。しかしながら、LC3-IIおよびベクリン-1の静的測定では、自己ファゴソーム形成の強化とリソソーム分解の障害を独立して区別できないため、オートファジアム関連マーカーの解釈には注意が必要です。これらの限界にもかかわらず、オートファジー関連経路の調節はOAに対する有望な治療戦略として残っています。
マイクロRNA(miRNA)は、標的メッセンジャーRNAの3′非翻訳領域(3′-UTR)内の補完配列に結合することで転写後に遺伝子発現を調節する短い非コードRNAであり、mRNAの分解や翻訳抑制を引き起こす14。異常なmiRNA発現は、炎症、アポトーシス、ECM再構築への影響を通じてOAの病因に関与していることが示されています15。これらの分子の中で、miR-590-5pは骨代謝やその他の病理学的過程における調節役割から注目を集めています。過去の研究では、miR-590-5pが間葉幹細胞における骨形成分化を促進し、脂肪形成を抑制することが示されています16。がんモデルにおいて、miR-590-5pは文脈依存的な機能を示し、がん原性または腫瘍抑制調節因子として機能します17。さらに、miR-590ファミリーを含む微小RNA発現プロファイルの変化が、OA18中の関節組織の病理的再構築に関与していることが示唆されています。しかし、幹細胞やがんモデルから得られた証拠は、成熟した関節軟骨細胞に直接外挿することはできません。したがって、miR-590-5pが炎症性OA微小環境下で軟骨細胞応答を調節する役割は、まだ完全には解明されていません。
OAにおけるmiR-590-5pの潜在的な下流メカニズムを調査するため、 インシリコ ターゲット予測解析を行い、Sprouty2(SPRY2)を推定下流ターゲットとして特定しました。SPRY2はSproutyファミリーのタンパク質に属し、受容体チロシンキナーゼシグナル伝達を負の方向性で調節し、RAS/MAPK/ERK 経路の活性化を抑制します19。MAPKシグナル伝達は軟骨細胞の分化、炎症反応、オートファジーに影響を与えるため、SPRY2はOA病態生理における重要な調節ノードとなる可能性があります。過去の研究では、SPRY2はリウマチ性関節炎モデルにおける炎症反応を抑制し、上皮系のアポトーシス関連調節に関与し、虚血性損傷モデルではオートファジー関連の応答とも関連していることが示されています。これらの観察はSPRY2がアポトーシスとオートファジーの両方の調節に関与していることを示唆していますが、関節軟骨細胞におけるその役割は依然として十分に解明されていません。したがって、miR-590-5pとSPRY2が炎症ストレス下の軟骨細胞生存に影響を与える調節軸を形成すると仮説が立てられました。
これらの観察に基づき、miR-590-5pは軟骨細胞におけるSPRY2発現を調節することでオートファジー関連応答を調節することが提案されました。miR-590-5pおよびSPRY2は他の生物学的文脈で個別に研究されていますが、OA軟骨細胞における機能的関係はまだ確立されていません。本研究では、C28/I2ヒト軟骨細胞におけるIL-1β誘導OAモデルを用いてmiR-590-5pおよびSPRY2の発現パターンを調べ、Beclin-1、LC3-II、Bcl-2の発現に与える影響を評価しました。miR-590-5p/SPRY2の調節軸を調査することで、軟骨細胞生存のエピジェネティックメカニズムを明らかにし、OAの治療対象となる可能性のある標的を特定します。
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本研究は市販のヒト軟骨細胞株C28/I2のみを用いて実施されました。この研究には人間の参加者、人間の組織サンプル、患者由来の材料、または生きた動物は関与していません。したがって、機関および国のガイドラインに従い、機関審査委員会(IRB)および施設動物ケア・利用委員会(IACUC)の承認は必要ありませんでした。プロトコルで使用される工具、化学薬品、キット、試薬は 材料表に記載されています。
1. 細胞培養とOAモデル構築
ヒト軟骨細胞株C28/I2(詳細は材料表に記載)は商業供給者から入手されました。実験的再現性を確保するため、細胞はショートタンデムリピート(STR)プロファイリングで認証され、マイコプラズマ汚染の有無を確認するために定期的に検査されました。3番から8番の間の細胞がすべての実験で使用されました。細胞はDMEMで、胎児用牛血清(FBS)10%とペニシリン-ストレプトマイシン1%(すべての培養試薬は材料表に詳細記載)を37°Cで5%CO2を含む加湿大気で維持しました。
in vitro変形性関節症(OA)モデルを確立するために、C28/I2細胞に組換えヒトIL-1βを刺激しました。確立された文献6,7に基づき、過剰な即時細胞毒性を伴わずに強靭な異化状態を誘導するための予備的線量応答最適化実験を用いて、細胞は24時間にわたり20 ng/mLのIL-1βで処理されました。
2. 実験的グルーピングとトランスフェクション
メカニズム的経路を明らかにするために、研究は3つの主要な実験モジュールに分けられ、それぞれに最低3つの独立した生物学的複製が設けられました。
3. qPCR検出
全RNAとmiRNAは、製造元のプロトコルに従い専用のmiRNA抽出キットで単離されました。RNA純度と濃度はUV-Vis分光光度計で評価され、A260/A280比が1.8–2.0のサンプルを下流解析に使用しました。市販の逆転写試薬を用いてcDNAを合成しました。qPCRのサイクル手順は以下の通りです:95°Cで10分間;95°Cで10秒、58°Cで30秒、72°Cで30秒の40サイクル。続いて、プライマー特異性とプライマー二量体の不在を確認するための融解曲線解析を行います。βアクチンとU6はそれぞれmRNAとmiRNAの内部対照として機能しました。相対的な遺伝子発現は2-ΔΔCt法を用いて計算されました。Col-II、SPRY2、Beclin-1、LC3、Bcl-2、miR-590-5p、および参照遺伝子を含むすべてのプライマー配列は表1に記載されています。
| プライマーネーム | 前方プライマー(5′-3′) | 逆プライマー(5′-3′) |
| U6 | ATTGGAACGATAGAGAGAGATの | GGAACGCTTCACGAATTTG |
| miR-590-5p | GCGTAAGGCACGCGGTG | AGTGCAGGGTCCGAGGTATT |
| βアクチン | TGGCACCCAGCACAATGAA | CTAAGTCATAGTCCGCCTAGAAGCA |
| SPRY2 | TAAGCCACTGAGCAAGGAAGATの | TGGAAGGTAACACCATAAACAAG |
| Bcl-2 | TGGGATTCCTGGAGGATTGAC | TCAGTCTACTCTCTCTGTGATGTGTG |
| ベクリン-1 | TCCCGTGTGGAATGAGAG | GTAAGGAACAAGTCGGTATCTCTG |
| LC3-II | カッカアッカグト | GAGCTGTAAGCGCCTTCTTAA |
表1:定量PCR(qPCR)解析に使用されるプライマー配列。 qPCRによる標的転写本および内部参照対照の増幅および定量に用いられる順方向および逆プライマー配列。
特に指定がない限り、データは平均±標準偏差(SD)として表されます。統計的有意性は一方向ANOVAを用いて、その後S-N-K事後検定を行った。記号は以下の通りです:*P 0.05 対 コントロール<;#P < 0.05 と示されたモデルまたは陰性対照群の比較;そしてPはOA+阻害剤NCに対して0.05<。
4. ウエスタンブロット検出
細胞は、確立されたタンパク質抽出および免疫ブロッティング手順の後に、プロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤カクテルを補足したRIPAバッファーを使用して細胞を収集・溶解しました。細胞の残骸を除去するために14,000 × g で15分間遠心分離した後、上清液を採取し、BCAタンパク質アッセイキットを用いてタンパク質濃度を定量しました。同量のタンパク質溶解液(30μg)を変性させ、SDS-PAGで1.5時間分解消し、300 mAのPVDF膜に1.5時間26分移送しました。膜は、0.1%Tween 20(TBST)を含むTrisバッファード生理食塩水に5%無脂肪ミルクを室温で1時間ブロックし、その後4°Cで16時間、特異的一次抗体(例:anti-SPRY2、1:1000希釈)を用いて16時間潜伏しました。TBSTで3回洗浄した後、室温で適切なHRP結合二次抗体とともに膜を2時間インキュベートしました。タンパク質バンドはECL検出システムで可視化され、ImageJソフトウェアで定量化されました。
5. 統計分析
データは統計解析ソフトウェアを用いて分析されました。すべての実験は少なくとも3つの独立した生物学的複製(n≥3)で行われ、定量データは平均±標準偏差(SD)として示されています。パラメトリック検定の前は、データの正規性をシャピロ・ウィルク検定を用いて評価し、分散の均一性を評価しました。複数グループ間の統計的有意性は一方向分散分析(ANOVA)を用いて評価し、その後、Student-Newman-Keuls(S-N-K)の事後検定で複数比較を行いました。P < 0.05は統計的に有意とされました。
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in vitro軟骨球炎症モデルの確立
変形性関節症病理の分子メカニズムを調査するため、IL-1βで刺激されたC28/I2ヒト軟骨細胞を用いた in vitro 炎症モデルが確立されました。このモデルの妥当性は、ヒアリン軟骨細胞外マトリックスの主要成分であり、健康な軟骨細胞の特徴であるコラーゲンタイプIIアルファ1鎖(Col-II)の発現評価によって確認されました。定量解析により、IL-1βへの曝露は対照群に比べてCol-II mRNA発現が統計的に有意に減少していることが明らかになりました。この表現型の変化は、変形性関節症微小環境に似た異化的状態への初期シフトを示し、後の機構的研究の基礎モデルを提供します(図1)。
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過去の研究では、miRNAが開始、小胞伸長、成熟を含む複数の段階でオートファジーを調節することが示されています27。miRNAのOA病因への関与は、炎症、アポトーシス、細胞外マトリックスリモデリング、オートファジー関連経路への影響を通じてますます記録されています。miR-590-5pは細胞の恒常性およびがん関連プロセスと関連しています 28,29,30。骨格および軟骨関連の文脈では、miR-590-5pはヒト間葉幹細胞の軟骨形成分化を促進することが報告されています16。一方、OA軟骨細胞モデルでは、FGFを標的とすることで増殖、アポトーシス、炎症反応を調節できます。18,24。しかし、miR-590-5pがOA軟骨細胞にお...
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著者たちは競合する利害関係を一切認めていない。
著者らは、広西中国医薬大学瑞康病院老年医学科に、本研究のために実験施設と技術的支援を提供してくれたことに感謝します。著者らはまた、データ収集と解析に協力してくれた研究室スタッフや同僚に感謝の意を表します。この研究は広西中医薬大学自然科学研究プロジェクト(助成金番号2022MS039)の支援を受けました。LncRNA-GAS5はマウス膝関節軟骨細胞におけるSPRY2発現を媒介し、オートファジーを阻害する:華雨曲石処方薬のメカニズム研究および早期介入効果)および中国国家自然科学基金(地域財団)(助成金番号82160912;Skp2のユビキチン化分解、FoxO1の降解、膝のOA軟骨細胞オートファジーの阻害、華雨曲石処方の早期介入効果に関するメカニズム議論)。
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| 名前 | 会社 | カタログ番号 | コメント |
|---|---|---|---|
| Anti-β-actin抗体 | Proteintech | 66009-1-Ig ; RRID: AB_2687938 | ウェスタンブロット分析の内部ローディングコントロール |
| Anti-SPRY2抗体 | Proteintech | 11383-1-AP ; RRID: AB_2196324 | SPRY2タンパク質発現の検出 |
| BCAタンパク質アッセイキット | Thermo Fisher Scientific | 23225 | 総タンパク質濃度の測定 |
| C28/I2ヒト軟骨細胞株 | Punocel | CP-H107 | 変形性関節症研究用in vitro軟骨細胞モデル |
| 完全DMEM | KeyGen Biotec | KGM12800S | 日常的な細胞培養用基礎培地 |
| CWBIO超純miRNA抽出キット | CWBIO | CW0627S | 総RNAとmiRNAの分離 |
| ECL検出システム | Thermo Fisher Scientific | 32106 | タンパク質バンドの化学発光による可視化 |
| 胎児ウシ血清 (FBS) | Gibco | 1891605 | 細胞培養増殖サプリメント |
| GraphPad Prismバージョン9.0 | GraphPad Software | N/A | 統計解析とグラフ生成 |
| HiScript II Q RT SuperMix | Vazyme | R223-01 | mRNAからcDNAへの逆転写 |
| ImageJソフトウェア | 米国国立衛生研究所 | N/A | ウェスタンブロットバンド強度の定量 |
| Lipofectamine 3000 | Invitrogen | L3000015 | プラスミドとオリゴヌクレオチドのトランスフェクション |
| miR-590-5pミミック、阻害剤、およびNC | RiboBio | カスタム合成 | miR-590-5p発現の調節 |
| miRNA 1st ストランドcDNA合成キット | Vazyme | MR101-02 | miRNAからcDNAへの逆転写 |
| Opti-MEM培地 | Gibco | 31985-062 | トランスフェクション錯体の調製 |
| ペニシリン-ストレプトマイシン | Gibco | 15140122 | 細胞培養における細菌汚染の防止 |
| プロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤カクテル | MedChemExpress | HY-K0010 | 抽出中のタンパク質の保護 |
| PVDFメンブレン | Millipore Sigma | ISEQ00010 | 免疫ブロッティング用タンパク質転写メンブレン |
| 組換えヒトIL-1β | MedChemExpress | HY-P78459 | OA様炎症条件の誘導 |
| RIPAバッファー | Beyotime | P0013B | 細胞溶解とタンパク質抽出 |
| si-SPRY2コンストラクトとsi-NC | GenePharma | カスタム合成 | SPRY2発現のノックダウン |
| SPRY2過剰発現プラスミド (OE) と空ベクター (NC) | GeneChem | カスタム構築 | SPRY2過剰発現効果の評価 |
| UV-VIS分光光度計 (NanoDrop 2000) | Thermo Fisher Scientific | ND-2000 | RNA濃度と純度の測定 |
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