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方法論記事

マウス由来膵癌細胞におけるオートファゴソーム動態をモニタリングするための、Microtubule-Associated Protein Light Chain 3のウェスタンブロット解析

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DOI:

10.3791/71604

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2026年9月3日

 ,  , 
1Traslational Medicine Research Unit, Center for Medical Education and Clinical Research (CEMIC), 2Programa de Estudios Pancreaticos, Hospital de Clinicas “Jose de San Martin”, Universidad de Buenos Aires, 3The Massachusetts General Hospital Cancer Center, Harvard Medical School

この記事について

サマリー

LC3免疫ブロット法は、オートファジーをモニタリングするために広く用いられている手法ですが、慎重な最適化が必要です。本プロトコルでは、KPC由来の膵癌細胞におけるLC3-IIの検出と定量を目的とした堅牢なアプローチについて、主要な技術的検討事項およびFijiを用いた密度解析の標準化されたワークフローを含めて説明します。

要約

オートファジーは膵管腺癌（PDAC）において複雑な役割を担っており、腫瘍の進展、ストレス適応、および治療耐性に寄与しています。したがって、オートファゴソームのダイナミクスを正確に評価することは、癌生物学の研究において不可欠です。利用可能な手法の中で、微小管結合タンパク質軽鎖3（LC3）の免疫ブロット法は、細胞質形態（LC3-I）と脂質化されオートファゴソームに結合した形態（LC3-II）を区別することで、オートファゴソームのダイナミクスをモニタリングする方法として広く用いられています。しかし、LC3の分子量が低いことと、これら2つのアイソフォーム間の電気泳動移動度の差がわずかであることは、慎重な最適化を必要とする技術的な課題となります。本稿では、KPC由来のマウス膵癌細胞におけるLC3-IIレベルの半定量的なウェスタンブロット解析のための再現性のあるプロトコルを提示します。本手法では、LC3アイソフォームの確実な分離と検出を保証するために、細胞溶解、電気泳動、タンパク質転写、および抗体による検出の最適化された条件を組み込んでいます。さらに、Fiji (ImageJ) を用いたLC3-IIバンドのデンシトメトリー解析のための標準化されたワークフローを提供します。本手法の感度は、オートファジー誘導条件下（ゲムシタビン処理）およびオートファジーフラックス阻害条件下（VMP1ノックダウン）におけるLC3-IIレベルの上昇の検出を通じて実証されています。また、溶解バッファーの組成や抗体の特異性など、データの解釈に影響を与える重要な技術的パラメータとともに、一般的な実験上の落とし穴についても検討します。LC3の免疫ブロット単独ではオートファジーフラックスを完全に定義するには不十分ですが、補完的なアッセイと組み合わせることで、オートファジー活性をモニタリングするための堅牢で簡便なアプローチとなります。本プロトコルは他の実験的コンテキストにも適応可能であり、癌モデルにおけるオートファジーのメカニズム研究を促進します。

概要

マクロオートファジー（以下、オートファジーと呼ぶ）は、タンパク質や機能不全に陥ったオルガネラを含む細胞質物質を分解する、制御された分解経路である。オートファジーの特徴は、オートファゴソームとして知られる二重膜構造の形成であり、これにより細胞内の貨物が隔離され、その後、分解のためにリソソームへと運ばれる1,2,3。正常な細胞において、オートファジーはタンパク質やオルガネラの制御されたターンオーバーに寄与し、それによって酸化ストレスを制限し、腫瘍発生のリスクを低減させている。しかし、がん細胞において、このプロセスは高い代謝需要、栄養飢餓、および低酸素状態の下で生存を維持するために利用されることがある。過酷な微小環境への適応を促進することで、オートファジーは、治療によって誘発される細胞損傷を軽減することなどを通じて、化学療法耐性にも寄与している4,5。

膵臓がんは、米国におけるがん関連死亡原因の第3位にランクされています。膵臓がんの約90%は、膵管腺がん（PDAC）に分類されます。早期発見や治療法の進歩により患者の生存率が向上している他の多くのがんとは異なり、PDACは80%以上の症例で進行した段階で診断されます。この診断の遅れに、攻撃的な腫瘍生物学および顕著な治療抵抗性が加わることで、5年生存率は約11%6という結果になっています。

KPCマウスモデルは、膵臓特異的なオンコジェニックKrasの活性化と、CreリコンビナーゼによるTrp53の条件付き欠損に基づいた、膵管腺癌において最も広く利用されている遺伝子改変モデルの一つである。これらのマウスでは、膵上皮内腫瘍新生（PanIN）から浸潤癌へと進行し、ヒトの疾患に酷似した腫瘍が自然発症する。重要なことに、このモデルは密な脱プラスティック間質や免疫抑制的な腫瘍微小環境など、膵癌の主要な特徴を再現している。KPCマウスから単離された腫瘍細胞（KPC由来細胞）は、元の腫瘍の遺伝的および表現型的な特徴の多くを保持した相補的なin vitroシステムを提供し、機序研究や治療反応の制御された評価を可能にする7,8.

VMP1は、Beclin-1との相互作用およびPI3KC3複合体のリクルートを通じてオートファジーを開始させる不可欠なオートファジー関連タンパク質である9,10。開始段階に留まらず、VMP1はオートファゴソームの形成10、閉鎖11、およびミトコンドリアファジー12やジモファジー13などの選択的プロセスを含む、オートファジーの複数の段階に関与している。VMP1はオートファジーフラックス全体にわたって関与し続け、ホスホリパーゼスクランブラーとしてさらなる機能を果たす可能性がある14。膵臓において、VMP1の発現は通常低いが、膵炎や腫瘍形成などのストレス条件下では強力に誘導され、そこでは変異型KRASシグナルの下流でオートファジーを促進する15,16。VMP1は膵癌において過剰発現しており17、マウスの実験モデルにおいて、VMP1依存的なオートファジーがKRASと協調して腫瘍の開始およびPanIN形成を促進することが示されている18。さらに、ゲムシタビン19などの薬剤によるVMP1の上方制御がオートファジーを刺激し19、腫瘍細胞の生存を支持するため17、VMP1は化学療法耐性に寄与しており、その親腫瘍的な役割を浮き彫りにしている15。

オートファゴソームは、オートファジー関連タンパク質であるmicrotubule-associated protein light chain 3 (LC3)20の存在によって特徴付けられます。基底状態において、LC3は主に可溶性形態（LC3-I）として細胞質および核に分布しています。オートファジーが活性化されると、LC3はホスファチジルエタノールアミンとの抱合により脂質化され、膜結合型であるLC3-IIが生成されます1,21。この修飾により、LC3-IIはLC3-Iよりも分子量が高くなりますが、疎水性の増加により、SDS-PAGEではより速く移動します。したがって、LC3-IからLC3-IIへの変換は、タンパク質分解による処理ではなく脂質化を反映しており、通常、LC3-Iは約16 kDa、LC3-IIは約14 kDaで検出されます。LC3-IIのレベルはオートファゴソームの数と相関するため、LC3のイムノブロッティングはオートファジー活性をモニターする方法として広く利用されています22。それゆえ、オートファジーに関連する実験結果を解釈するには、LC3のダイナミクスを正確に評価することが不可欠です。

本研究では、KPC由来の膵がん細胞株における古典的なLC3免疫ブロットプロトコルの標準化および技術的最適化について詳細に述べる。LC3は低分子量タンパク質であり、LC3-I型とLC3-II型の電気泳動移動度の差がわずか~2 kDaであること、またLC3-IIが脂質修飾された種であることから、最適化は特に重要である21,22。その結果、手順のわずかな変動がLC3の検出を損ない、不十分な結果を招く可能性がある。加えて、最適な免疫反応性を得るためには、サンプルの種起源が重要な検討事項となる。最適化されたプロトコルは、化学療法剤であるgemcitabineによる処理後、およびVMP1ノックダウン後（それぞれオートファジーを刺激し、オートファジーfluxを阻害することが知られている条件）におけるLC3-IIレベルの上昇を検出するのに十分な感度を有している。最後に、データ品質と結果の解釈に与える影響を示すため、2つの潜在的な技術的ピットフォールを強調して示す。この実験ワークフローの概要を図1に示す。

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図1: KPC由来細胞におけるLC3免疫ブロットプロトコルの概略図。免疫ブロット法を用いてLC3-IIレベルを検出および定量するために使用されるプロトコルの概略的な概要。KPC由来の膵癌細胞を培養して実験的処置を施した後、細胞溶解、タンパク質定量、SDS-PAGE、膜への転写、抗体によるLC3の検出、化学発光シグナルの取得、およびローディングコントロールで標準化したLC3-IIバンドのデンシトメトリー解析を行う。このワークフローは、LC3ダイナミクスの信頼性の高い評価に必要な主要な手順上のステップと重要な段階を示している。BioRender.comを用いて作成。 こちらのリンクをクリックして、この図の拡大版を表示してください。

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プロトコル

動物を用いるすべての手順は、機関のガイドラインに従って実施され、マサチューセッツ総合病院の機関動物ケアおよび使用委員会（IACUC）によってプロトコル#2019N000111に基づき承認されました。本研究で使用したKPC由来の膵がん細胞株は、この承認済みプロトコルの下で、以前にMostoslavsky研究室において樹立されたものです。試薬、化学物質、および機器の情報の一覧は、材料表に記載されています。

1. 細胞の調製

  1. 低継代のKrasG12D; Trp53f/+; p48-Cre（以下、KPCと表記）由来の膵臓腫瘍細胞を、10%胎児牛血清、100 U/mLペニシリン、および100 µg/mLストレプトマイシンを含むRoswell Park Memorial Institute培地（RPMI 1640）を用いて6ウェルプレートに播種する。溶解当日に70%〜90%のコンフルエンスになるように播種密度を調整する。
    注意： 1ウェルあたり3.5 × 105 cellsの播種密度では、72時間後に約80%のコンフルエンスとなった。研究室やKPCモデルによって増殖速度が異なる場合があるため、実験前に最適な播種密度を経験的に決定すること。
    注意： 安定的なVMP1ノックダウン細胞株を構築するには、ポリエチレンイミン（PEI）を用いて、パッケージングプラスミドおよび対応するレンチウイルスベクターをHEK293T細胞に共導入し、レンチウイルス粒子を産生する。導入から72時間後にレンチウイルス含有上清を回収し、4 °Cで300 × gで10分間遠心分離して細胞残 debris を除去し、0.45 µmシリンジフィルターでろ過する。回収したウイルス上清を用いて、KPC細胞に1回のトランスダクションを行う。2.5 µg/mLピューロマイシン（10 mg/mLストック溶液を1:4,000で希釈）で72時間処理し、安定的に導入された細胞を選択する。
  2. 細胞を、5%二酸化炭素（CO₂）含有の加湿インキュベーター内、37 °Cで培養する。
  3. 培地を新鮮な培地と交換し、同一条件下で培養を継続する。

2. 20 µM ゲムシタビンによる処理

  1. 溶解の前日に、RPMI培地を用いて10 mMのgemcitabine溶液を調製する。各ウェルにこの10 mM溶液を4 µL添加し、最終濃度を20 µMにする。
  2. 5%二酸化炭素（CO₂）濃度の加湿インキュベーター内にて、37 °Cで24時間、細胞をインキュベートする。

3. 細胞溶解物

  1. プレートを氷上に置き、冷PBS（リン酸緩衝生理食塩水；137 mM NaCl, 2.7 mM KCl, 8 mM Na₂HPO₄, 2 mM KH₂PO₄）で3回洗浄する。
  2. プロテアーゼ阻害剤を添加したライシスバッファー（50 mM Tris-HCl, pH 8.0, 150 mM NaCl, 1% Triton X-100, 0.1% SDS）を80 µL加える。
    注意： ウェル間でコンフルエンスレベルに差がある場合は、タンパク質濃度が同等になるようにライシスバッファーの量を調整する。目安として、コンフルエンス10%あたり約10 µLのライシスバッファーを使用する（例：コンフルエンス70%で70 µL、90%で90 µL）。
  3. P200ピペットチップの幅広な（近位）端を用いて、各ウェルの表面全体を十分に掻き出し、ライシスバッファー中で細胞を剥離・回収する。
  4. ライセートをマイクロ遠心チューブに回収し、氷上で15分間保持する。
  5. サンプルを4 °C、16,900 × gで10分間遠心分離する。
  6. 上清を新しいマイクロ遠心チューブに移す。
  7. タンパク質定量用に分注し、分析まで氷上で保持する。
    注意： タンパク質定量には、2.5 µLのライセートを7.5 µLのライシスバッファーで希釈し、200 µLのBCA試薬（bicinchoninic acid reagent）と混合する。代替のタンパク質定量法を使用することも可能である。
  8. 4× Laemmliサンプルバッファー（250 mM Tris-HCl, pH 6.8, 8% SDS, 40% glycerol, 0.04% bromophenol blue, 20% β-mercaptoethanol）をライセートに加え、十分に混合する。77.5 µLのライセートに対し、25.8 µLのLaemmliサンプルバッファーを加える。
  9. サンプルを−80 °Cで保存する。
    注意： このステップでプロトコルを一時中断できる。サンプルはSDS-PAGEを行うまで、−80 °Cで最大2週間保存可能である。

4. SDS–PAGEおよびウェスタンブロッティング

  1. サンプルを96 °Cで5分間加熱する。
  2. 各サンプル70 µgを15% SDS–PAGEゲル（厚さ1.5 mm）にロードし、色素前線が分離ゲルに入るまで90 Vで電気泳動を行う。15% アクリルアミド/ビス-アクリルアミド、375 mM Tris-HCl (pH 8.8)、および0.1% SDSを含む自作の15% ポリアクリルアミド分離ゲルを使用する。
  3. 電圧を120 Vに上げ、色素前線がゲルの底部に到達するか、底部を抜けるまで電気泳動を継続する。分子量マーカーの10 kDaバンドがゲルから流出する前に泳動を停止させる。
  4. ゲルを約25 kDaの位置で切断し、上部と下部に分ける。
  5. 転写バッファー（25 mM Tris base、192 mM glycine、および20% [v/v] メタノール）を用いてメタノールで事前活性化した0.2 µm PVDFメンブレンに、200 mAでタンパク質を転写する。転写時間は、ゲルの下部（<25 kDa）で1時間、上部（>25 kDa）で2.5時間とする。
  6. ブロッキングバッファー中で、緩やかに攪拌しながら1時間メンブレンをブロッキングする。
  7. 0.1% Tween-20を含むブロッキングバッファーで、anti-LC3一次抗体を1:1,000に希釈して調製する。
    注意：anti-LC3一次抗体は1:1,000の希釈率で、ローディングコントロール用のanti-actin抗体は1:4,000の希釈率で使用した。
  8. anti-LC3一次抗体とともに、緩やかに攪拌しながら4 °Cで一晩メンブレンをインキュベートする。
  9. TBS-T（TBS中の0.1% Tween-20；20 mM Tris-HCl, pH 7.6, および150 mM NaCl）で、5分間、計4回メンブレンを洗浄する。
  10. ブロッキングバッファーで、西洋わさびペルオキシダーゼ（HRP）標識抗ウサギ二次抗体を1:2,000に希釈して調製する。
  11. 二次抗体とともに、緩やかに攪拌しながら室温で1時間メンブレンをインキュベートする。
  12. TBS-Tで5分間、計4回メンブレンを洗浄する。
  13. TBSで2回メンブレンを洗浄する。

5. 化学発光検出

  1. 使用直前に、試薬A（ルミノール/エンハンサー溶液）と試薬B（過酸化水素溶液）を等量ずつ混合し、2液性の化学発光増強基質を調製する。
  2. ラボワイプを用いて、メンブレン上の余分な液体を静かに吸い取る。
  3. メンブレンを遮光ボックスに入れる。
  4. 化学発光増強溶液をメンブレンに加え、ボックスを閉じて5分間インキュベートする。
  5. メンブレンから余剰な溶液を切り出し、信号検出のためにメンブレンをイメージングシステムに設置する。
  6. イメージングシステムの製造元の指示に従って画像を撮影する。

6. Fijiを用いたデンシトメトリー分析

  1. 画像ファイルをFijiウィンドウにドラッグ＆ドロップして開きます。
  2. 画像を8ビットグレースケールに変換します（Image → Type → 8-bit）。
  3. 必要に応じて、画像を回転させてバンドを水平に合わせます（Image → Transform → Rotate）。
    1. Previewを有効にし、グリッドを適切な本数（例：20本）に設定します。
    2. バンドが正しく整列するまで回転角度を調整します。
  4. 長方形選択ツールを使用して、LC3-IIに対応するバンドのみを含むように、最初のレーンの周囲に関心領域（ROI）を定義します。
    注： 選択範囲の幅は高さの2倍を超えないようにしてください。解析に含めるすべてのバンドに対して、同一のROI寸法を使用してください。
  5. Analyze → Gels → Select First Laneを選択します。
  6. 同一のROIを次のレーンに移動し、対応するバンドの周囲に配置します。
  7. Analyze → Gels → Select Next Laneを選択します。
  8. 最後のレーンが選択されるまで、ステップ6.6および6.7を繰り返します。
  9. インテンシティプロファイルを生成します（Analyze → Gels → Plot Lanes）。
  10. 直線ツールを使用して各ピークのベースラインを定義し、magic wandツールを使用してバンド強度を定量化します。
  11. 値をローディングコントロールで標準化します。

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結果

このプロトコルでは、異なる実験条件下におけるKPC由来膵がん細胞株のLC3ダイナミクスをモニタリングするためのウェスタンブロッティングについて説明します。このプロトコルにより、LC3およびローディングコントロールの化学発光イメージを生成します。本研究では、ローディングコントロールとしてactinを使用しました。

本プロトコルの2つの代表的な応用例を示す。まず、対照群のKPC細胞とゲムシタビン処理したKPC細胞を比較した。ゲムシタビンは、膵がん細胞においてオートファジーを誘導することが previously reported されている化学療法剤である19。図2Aに、ローディングコントロールとしてアクチンを用いたLC3免疫ブロットの代表例を示す。Fijiによる密度解析から得られた定量結果を図2Bに示す。LC3-IIレベルはアクチンで標準化した。ゲムシタビン処理細胞においてLC3-IIレベルが59%有意に増加しており、こ...

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ディスカッション

本記事では、KPC由来の膵癌細胞における古典的なLC3免疫ブロット法プロトコルの技術的最適化および標準化について説明します。膵癌の発症および進行におけるオートファジーおよびオートファジー関連タンパク質の役割がますます認識されていることを踏まえ23、この標準化されたワークフローは、LC3ダイナミクスをモニタリングするための信頼性の高いアプローチを提供します。本プロトコルは、化学療法、酸化ストレス、低酸素、小胞体ストレス、および遺伝子過剰発現、ノックダウン、ノックアウト、変異などの遺伝子操作を含む、さまざまな実験条件下でオートファゴソームプールを評価するために適用できます。また、LC3ダイナミクスの評価に加えて、本プロトコルを適応させることで、LC3と目的タンパク質との直接的または間接的な相互作用を調査することも可能です。例えば、本ワークフローを用いて、標的タンパク質の免疫共沈降後、溶出液中のLC3検出を行うことができます。さらに、LC3免疫ブロット法は、膵管腺癌において重要性が高まっている新興分野である分泌オートファジーの文脈における細胞外小胞の解析にも適用できます

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開示事項

著者は、利益相反がないことを宣言します。

謝辞

本研究は、国立科学技術研究会議（CONICET）[PIP 2021–2023 GI-11220200101549CO]、国家研究推進・技術開発・革新庁（Agencia I+D+i）[PICT-2021-I-A-00328]、ブエノスアイレス大学（Universidad de Buenos Aires）[UBACyT 2023–2025, 20020220300232BA]、およびブエノスアイレス市ノルベルト・キルノ財団（Fundación Norberto Quirno, Ciudad de Buenos Aires）からの助成金によって支援された。

著者らは、『ディスアース・モデルズ＆メカニズムズ』誌が授与するトラベリング・フェローシップを通じて、バイオロジスト社から提供された財政的支援に対して深く感謝する。この支援は、資金提供された訪問から生じた研究に貢献した。この慈善団体に関するさらなる情報は、https://www.biologists.com/ で利用可能である。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
C-DiGit Blot ScannerLI-COR BioScience3600ステップ5.6の化学発光検出に使用
10x リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)Corning46-013-CMステップ1.1の細胞継代前の洗浄用1x PBSの調製に使用
2-メルカプトエタノール (β-メルカプトエタノール)Sigma-Aldrich (Merck)M3148ステップ3.8のSDS-PAGEサンプル調製用4× Laemmliサンプルバッファーの調製に使用
3DシェーカーDLABSK-D1807-Eブロッキング、一次抗体、二次抗体溶液でのメンブレンのインキュベーションおよび洗浄ステップ（ステップ4.6、4.8、4.9、4.11、4.12、4.13）に使用
6ウェル細胞培養プレートSORFASCP-11-006ステップ1.1の細胞播種に使用
アクリルアミドSigma-Aldrich (Merck)A8887ステップ4.2–4.5に必要な15% SDS-PAGEゲルの調製に使用
抗Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase抗体、マウスモノクローナル、クローン 6C5Merck MilliporeMAB374RRID:AB_2107445 反応性:
ヒト、ネコ、ブタ、マウス、ウサギ、魚、イヌ、ラット。ノックダウン効率を評価するためのローディングコントロールとして使用（図2Cおよび2D）
抗マウスIgG抗体、HRP標識Cell Signaling Technology7076RRID: AB_330924。ステップ4.10の二次抗体溶液の調製に使用
抗ウサギIgG抗体、HRP標識Cell Signaling Technology7074RRID: AB_2099233。ステップ4.10の二次抗体溶液の調製に使用
抗β-Actin (ACTB)抗体、マウスモノクローナル、AC-15Sigma-Aldrich (Merck)A1978RRID:AB_476744 反応性: ヒツジ、コイ、ネコ、ニワトリ、ラット、マウス、ヒル (Hirudo medicinalis)、ウサギ、イヌ、ブタ、ヒト、ウシ、モルモット。図2A、2B、2E、2F、2G、2Hのローディングコントロールとして使用
ブロモフェノールブルーSigma-Aldrich (Merck)B0126ステップ3.8のSDS-PAGEサンプル調製用4× Laemmliサンプルバッファーの調製に使用
エチレンジアミン四酢酸 (EDTA)Sigma-Aldrich (Merck)E9884低界面活性剤溶解バッファーの調製に使用（図2Gおよび2H）
ウシ胎児血清NATOCOR Lintc-634細胞培養用完全培地の調製に使用（ステップ1および2）
FijiオープンソースソフトウェアN/A画像解析ソフトウェア
グリセロールSigma-Aldrich (Merck)G5516ステップ3.8のSDS-PAGEサンプル調製用4× Laemmliサンプルバッファーの調製に使用
グリシンSigma-Aldrich (Merck)G7126ステップ4.5の転写バッファーの調製に使用
Immun-Blot PVDFメンブレン、ロール、0.2 µm、26 cm x 3.3 mBio-Rad1620177ステップ4.5の転写に使用
Intercept (TBS) ブロッキングバッファーLI-COR BioScience927-60001ステップ4.6のブロッキング、およびステップ4.7と4.10の一次および二次抗体溶液の調製に使用
LC3 A/B (D3U4C) ウサギモノクローナル抗体 Cell Signaling Technology12741RRID: AB_2617131 反応性:
ヒト、マウス、ウサギ。ステップ4.7の一次抗体溶液の調製に使用
LC3B (D11) ウサギモノクローナル抗体Cell Signaling Technology3868SRRID: AB_2137707 反応性: ヒト。図2HのLC3一次抗体として使用
メタノールAnedra6197PVDFメンブレンの活性化およびステップ4.5の転写バッファーの調製に使用
Millex-HV シリンジフィルターユニット、0.45 μm PVDF Merck MilliporeSLHV033RSレンチウイルス含有培地のろ過に使用（ステップ1.1）
ミニデジタルドライバスLabnet International, Inc.D 5060075ステップ4.1のサンプル加熱に使用
Mini-PROTEAN Tetra 電気泳動システムBio-Rad1658025FCステップ4.2、4.3、および4.5のSDS-PAGEおよび転写に使用
マウスVmp1標的MISSION shRNA (TRCN0000279038)Sigma-Aldrich (Merck)SHCLND-NM_029478安定VMP1ノックダウン細胞株の作製に使用（ステップ1.1）
N,N'-メチレンビスアクリルアミド (Bis-acrylamide)Sigma-Aldrich (Merck)M7279ステップ4.2–4.5に必要な15% SDS-PAGEゲルの調製に使用
Nabigem 1g ゲムシタビンMicrosules ArgentinaM3060584-3ステップ2のゲムシタビン処理に使用
Pen-Strep溶液Sartorius03-031-1B細胞培養用完全培地の調製に使用（ステップ1および2）
Pierce BCAプロテインアッセイキットThermo Fisher Scientific23227タンパク質定量に使用（ステップ3.7）
Pierce プロテアーゼインヒビタータブレットThermo Fisher Scientific A32953ステップ3.2の溶解バッファーの調製に使用
Polyethylenimine HCl MAX, Linear (PEI MAX), MW 40,000Polysciences24765-1レンチウイルスプラスミドを用いたトランスフェクションに使用（ステップ1.1）
塩化カリウム (KCl)Sigma-Aldrich (Merck)P9333ステップ3.1のPBS調製に使用
リン酸一カリウム (KH2PO4)Sigma-Aldrich (Merck)P5655ステップ3.1のPBS調製に使用
PowerPac Basic 電源装置Bio-Rad1645050ステップ4.2、4.3、および4.5のSDS-PAGEおよび転写に使用
プレステインタンパク質ラダーGenbiotechPM201ステップ4.2 - 4.4のSDS-PAGEに使用
ピューロマイシン (10 mg/mL溶液) InvivoGenant-pr-1安定導入細胞の選抜に使用（ステップ1.1）
RPMI 1640GenbiotechMC2012L細胞培養用完全培地の調製に使用（ステップ1および2）
塩化ナトリウム (NaCl)Sigma-Aldrich (Merck)S9888ステップ3.1のPBS、ステップ3.2の溶解バッファー、およびステップ4.9のTBSの調製に使用
ドデシル硫酸ナトリウム (SDS)Sigma-Aldrich (Merck)L3771ステップ3.2の溶解バッファーおよびステップ4.2–4.5に必要な15% SDS-PAGEゲルの調製に使用
フッ化ナトリウム (NaF)Sigma-Aldrich (Merck)S7920低界面活性剤溶解バッファーの調製に使用（図2Gおよび2H）
リン酸二ナトリウム (Na2HPO4)Sigma-Aldrich (Merck)S9763ステップ3.1のPBS調製に使用
Sorval ST 16R 遠心機Thermo Fisher Scientific75004380ステップ1.1の細胞およびステップ3.5の溶解物の遠心分離に使用
化学発光基質 SuperSignal West Pico PLUSThermo Fisher Scientific34577ステップ5.1の化学発光検出に使用
Thermo Scientific 1300 Series A2 Class II, Type A2 バイオセーフティキャビネットThermo Fisher Scientific1386ステップ1.1、1.3、および2.1の無菌的な細胞培養操作に使用
Thermo Scientific BB 150 CO2 インキュベーターThermo Fisher ScientificBB150-2TCS-Lステップ1.2および2.2の細胞培養に使用
TMEM49/VMP1 (D1Y3E) ウサギモノクローナル抗体 Cell Signaling Technology12929RRID: AB_2714018 反応性: ヒト、マウス、ラット。図2Cおよび2DのVMP1ノックダウン効率を検証するための一次抗体として使用
TrisベースSigma-Aldrich (Merck)T1503ステップ4.5の転写バッファーの調製に使用
Tris塩酸塩 (Tris-HCl)Sigma-Aldrich (Merck)T3253ステップ3.2の溶解バッファー、ステップ3.8の4× Laemmliサンプルバッファー、ステップ4.2–4.5に必要な15% SDS-PAGEゲル、およびステップ4.9のTBSの調製に使用
Triton X-100Sigma-Aldrich (Merck)T8787ステップ3.2の溶解バッファーの調製に使用
Trypsin EDTAGibco11570626ステップ1.1の細胞継代に使用

参考文献

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