方法論記事

レーザースペックルコントラストイメージングを用いたヒト皮膚微小循環における全身微小血管機能の標準化評価プロトコル

DOI:

10.3791/71634

2026年6月26日

この記事について

サマリー

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本プロトコルは、レーザースペックルコントラストイメージングと薬理学的イオントフォレーションおよび生理刺激を組み合わせて、臨床研究現場における微小血管反応性を評価するための標準化された非侵襲的手法を記述しています。

要約

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レーザースペックルコントラストイメージング(LSCI)は、高解像度で非侵襲的な光学技術であり、微小血管の血液灌流をリアルタイムかつ全視野で可視化することを可能にします。本プロトコルは、LSCIを用いてヒト皮膚微小循環における全身微小血管機能を評価するための標準化された方法論を提示します。この技術で得られる測定値は環境的および生理学的な交絡因子に非常に敏感であるため、再現性と実験的信頼性を高めるために厳格な標準化手順を重視しています。プロトコルは、23°C±1°Cでの室温安定化、参加者の位置調整、順応手順、画像取得時の外部干渉の最小化など、重要な環境管理を詳述しています。この方法論は、LSCIを2つの補完的な誘発的手法と統合し、皮膚微小血管反応性を評価する。閉塞後反応性充血は統合的な微小血管反応性を評価するために用いられ、イオントフォレシス駆動の薬理学的課題は内皮機能の評価に用いられます。具体的には、内皮依存性血管拡張を評価するためにアセチルコリンを投与し、内皮依存性血管拡張を評価するためにニトロプルシドナトリウムを投与します。この段階的な可視化プロトコルは、臨床およびトランスレーショナル研究の場で標準化されたLSCI手法の採用を促進することを目的としています。このアプローチは、抵抗性高血圧、糖尿病、冠動脈疾患など、いくつかの臨床疾患における微小血管障害の特定に成功裏に適用されています。微小血管反応性の再現可能かつ非侵襲的な評価を可能にすることで、この手法は全身血管の健康を調査し、疾患の進行を監視し、微小血管を標的とした介入の有効性を評価するための貴重なツールを提供します。

概要

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このプロトコルの主な目的は、レーザースペックルコントラストイメージング(LSCI)と生理学的および薬理学的誘発手法を組み合わせて、全身の微小血管機能と反応性を評価する標準化かつ再現可能な方法論を提供することです。微小循環は、直径約100μm未満の末端血管(動脈、毛細血管、静脈)から構成され、代謝交換の主要な部位であり、末梢血管抵抗の重要な決定因子ですこれらの小さな血管における内皮機能障害は、しばしば大血管変異に先行し、高血圧、糖尿病、冠動脈疾患などの心血管疾患の初期バイオマーカーとして機能します3。重要なのは、微小血管障害が末端臓器損傷に大きく寄与する一方で、多因子性疾患過程において大血管動脈硬化や全身性慢性炎症と連動して作用する点です。したがって、微小血管反応性の非侵襲的評価は、早期診断および治療効果のモニタリングにおいて、トランスレーショナルリサーチにおいて不可欠です。

全身血管の健康の代替として皮膚微小循環を利用する理由は、そのアクセスの容易さと、全体的な内皮機能の代表的な窓口としての役割にあります。従来、レーザードップラーフローメトリー(LDF)は非侵襲的皮膚評価のゴールドスタンダードとされてきました7。しかし、LDFは皮膚灌流の本質的な異質性に非常に敏感な点ごとの測定を提供するため、空間分解能が低いため制限があります。これに対し、LSCIは組織灌流の全視野リアルタイム可視化を高時間・空間分解能で提供し、大きな利点を提供します。レーザー光散乱によって生成される干渉パターンを解析することで、LSCIは物理的接触や外因性染料を必要とせずに複数の血管領域を同時に評価することを可能にします10,11

より広範な文献では、LSCIをイオントフォレシスによる薬理学的刺激(アセチルコリン(ACh)やナトリウムニトロプルシド(SNP)などの薬物刺激と統合することが、内皮依存性および内皮非依存性血管拡張経路を評価するための堅牢なアプローチとして検証されています(12,13)。さらに、閉塞後反応性充血症(PORH)は、内皮媒介物質、神経原性感覚神経、血管平滑筋機能を含む微小血管反応性の統合評価を提供します12。利点があるにもかかわらず、LSCIは環境および生理学的変動に対して高い感度があるため、厳格な標準化手続きが必要です。このプロトコルは、室温23°C±1°Cでの安定化や標準化された参加者の位置調整など、重要な環境制御を詳細に示し、被験者内および被験者間での再現性を向上させることを目指します。この手法は、多様な患者集団にわたる微小血管病態生理を探求するための方法論的根拠のある非侵襲的アプローチを求める臨床およびトランスレーショナル研究者に適しています。

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プロトコル

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人間参加者を含むすべての手技は、ブラジル保健省国立心臓病学研究所の倫理基準に従い、国家規則(国立研究倫理委員会(INAEP – 2024年5月法第14,874号より)およびヘルシンキ宣言(2024年改正)に準拠して行われました。

1. 参加者の準備と環境管理

  1. 検査環境を安定させる
    1. 専用サーモスタットを使って検査室温(RT;23°C±1°C)に安定させ、安定した熱環境を維持します。
    2. 10分ごとに校正済みのデジタル温度計(精度±0.1°C)でRTを監視します。
      注:皮膚微小血管機能は温度変動に非常に敏感です。
  2. 評価前に参加者を準備させてください
    1. 評価前24時間は喫煙、カフェインやアルコールの摂取を控え、激しい運動を行うよう指示してください。
    2. 評価前に少なくとも2時間断食し、水分摂取を許可するよう指示してください。
      注意:カフェインや激しい運動の禁断は、皮膚血管張りへの外部からの干渉を最小限に抑えます。カフェインはアデノシン受容体受容体受容拮抗薬として作用し、運動は交感神経の駆動や体温調節に作用することで、曝露後数時間持続する微小血管反応性の変化を引き起こす可能性があります4,14
  3. 画像取得のために参加者の位置を決める
    1. 参加者の利き腕でない腕を心臓の高さに位置させ、ボディクッションを使って前腕を水平かつ安定した位置に保ちます。
    2. 前腕の腹面を評価部位として使いましょう。
      注:非利き前腕は日常生活に伴う側方血管再構築の影響を最小限に抑えます。腹側前腕は、毛髪密度の低下や皮膚厚の減少など、光学イメージングに適した解剖学的特徴を提供し、信号アーティファクトを最小限に抑え、イオントフォレティック薬物送達の再現性を向上させます。
  4. 心血管の安定化を促す
    1. 微小血管記録を開始する前に、参加者を少なくとも20分間安静に保ちます。
    2. 休息期間中は、参加者が話すこと、評価された手足の動かすこと、電子機器の使用を制限します。
      注:安定化期間は、ベースライン獲得前の自律神経および心血管の変動を最小限に抑えます。
  5. モーションアーティファクトの最小化
    1. 参加者の利き手でない前腕を真空クッションシステムに置きます。
    2. 画像取得中、腹側前腕面を安定した水平位置に保つようにクッションを調整してください。
  6. 皮膚の表面を準備してください
    1. すべての測定では、毛髪が見えない皮膚部位を選びます。
    2. 必要に応じて、検査の24時間前に手術用バリカンを使って髪を抜きましょう。
      注意:皮膚の刺激が微小血管測定に影響する可能性があるため、カミソリの使用は避けてください。
  7. 動脈血圧を測定してください
    1. 参加者の腕周に合わせてカフのサイズを選びます。
    2. 測定間隔1分を設け、校正済みの自動オシロメトリック装置を用いて3回連続で血圧測定を行います。
    3. 最初の測定値は廃止し、最後の2つの測定値の平均を計算して、ESC/ESHおよびAHA心血管ガイドラインに従い平均動脈圧(MAP)を算出します。

2. LSCIシステムセットアップおよびソフトウェア構成

  1. LSCIシステムの準備
    1. 画像取得の少なくとも10分前にLSCIシステムを起動し、レーザー光源の安定化を図ります。
    2. 録画開始前にソフトウェアステータスインジケーターでレーザーの安定化を確認してください。
  2. レーザーヘッドの位置
    1. レーザーヘッドを参加者の前腕の真上に位置させます。
    2. メーカー提供の距離測定ツールを使って、レーザーヘッドを皮膚表面から正確に15cmの距離まで調整します(図1A)
      注意:固定の取得距離を維持することで、最適な画像のピントと参加者間の一定の視野角を確保します。
  3. 取得ソフトウェアの設定
    1. 画像取得ソフトウェアを起動し、新しいスタディファイルを作成します。
    2. 参加者の人口統計情報と、以前に計算されたMAPを入力します。
      注意:該当する場合は、詳細なソフトウェア操作手順や代表的なスクリーンショットを補助資料として同封してください。
  4. 取得パラメータの設定
    1. 取得サンプリングレートを1画像/秒(1Hz)に設定します。
    2. ターゲット取得領域の空間分解能を約0.1 mm/ピクセルに調整します。
      注:1 Hzのサンプリングレートは、時間的解像度と信号対雑音比の適切なバランスを提供しつつ、高吸血および薬理学的応答動態を十分に捉えます。
  5. 周囲光の干渉を最小限に抑える
    1. 画像取得前にシステムの要件に応じて背景雑音チェックまたは暗黒フレームの減算を行います。
    2. 暗フレームの引き算が使えない場合は、すべての録音時に部屋の照明を暗くし、遮光カーテンで外部の日光を遮ります。
      注:標準化された環境照明は光学的干渉を最小限に抑え、信号の再現性を向上させます。
  6. 関心領域(ROI)を定義する
    1. 取得ソフトウェア内のライブプレビュー画面で、約80 mm2 の円形ROIを少なくとも3回作成してください。
    2. イオントフォレスシス電極部位に2つのROI、PORH評価部位に1つのROIを配置します。
    3. すべてのROIは肘窩から約5cm先の腹側前腕に置き、目に見える浅い静脈は避けます。
      注:ROI領域を標準化することで、皮膚灌流における空間的異質性の影響を最小限に抑え、薬物投与チャンバーに関連するエッジアーティファクトを減らします。
  7. ベースライン灌流記録を取得してください
    1. 血管刺激の前に5分間連続して安静時の皮膚血灌流を記録してください。
    2. リアルタイムの灌流信号を監視し、ベースライン取得時に動作による急増がないことを確認します。
    3. 基準安定性を、連続した2分間の間隔で<10%の灌流信号変動と定義します。
  8. 皮膚血管伝導(CVC)解析を可能にする
    1. 参加者のMAPを取得ソフトウェアに入力します。
    2. ソフトウェア設定でCVCの自動計算を有効にしてください。
  9. 灌流および伝導率データの記録
    1. ソフトウェアを設定して、リアルタイム灌流値(APU)をMAPで割ってCVCを自動的に計算するように設定してください。
    2. プロトコル全体を通じて、生の灌流単位(PU)と計算されたCVC値を同時に記録してください。
      figure-protocol-1
      注:微小血管灌流をCVCとして表現することで、全身性血圧変動の交絡影響を最小限に抑え、異なる血行動態プロファイルを持つ参加者間の比較がより信頼性の高いものとなります。

figure-protocol-2
図1。レーザースペックルコントラストイメージング(LSCI)とイオントフォレシスを組み合わせて、皮膚微小血管灌流を評価するための実験装置。(A) 血管拡張剤のレーザースペックルコントラストイメージングおよびイオントフォレーションを用いた皮膚微小血管評価に用いられる代表的な実験装置。(b)アセチルコリン(ACh)の累積用量による経皮イオントフォレーション送達中の代表的な微小血管灌流反応。(C) ACイオントフォレスシスの代表画像。(D) 車両搭載制御電極の代表画像。ラベルは以下の部品を示します:(1) イメージャーヘッド;(2) イオントフォレシス薬剤送達電極;および(3)分散電極。この図の拡大版はこちらをクリックしてご覧ください。

3. イオントフォレーシスと薬理学的誘発

  1. 皮膚をイオントフォレーションのために準備してください
    1. 選んだ腹側前腕の皮膚部位は、アルコールを含まない生理食塩水または穏やかな洗剤で洗浄してください。
    2. 電極を挿入する前に、皮膚を優しく叩いて乾かします。
      注意:皮膚準備時の過剰な機械的刺激は避けてください。機械的誘導による血管拡張は基準値測定に干渉する恐れがあります。
  2. 薬物投与電極の位置を取れ
    1. 両面接着ディスクを用いて、準備された皮膚部位に2つの薬剤送達電極を取り付けます(図1A)。
    2. 電流の干渉を防ぐために、電極間距離を約5cmに保ちましょう。
  3. AC溶液を準備します
    1. 最初の電極室に200μLの2%ACh溶液を0.9%生理食塩水で調製します。
    2. ACh電極を使って内皮依存性血管拡張を評価します。
      注:選択された薬剤濃度は、非特異的刺激やガルバニックアーチファクトを最小限に抑えつつ、強健な線量依存的な微小血管応答を誘導するよう最適化されました。
  4. SNP解を準備する
    1. 200μLの2%SNP溶液を0.9%の生理食塩水で調製し、第2電極室を満たします。
    2. SNP電極を使って内皮非依存性血管拡張を評価してください。
      注意:SNPは光に敏感です。アルミホイルで溶液を光から保護し、調製から4時間以内に薬理学的安定性を維持するために溶液を使用しましょう。
      注:選択されたSNP濃度は安定したプラトー血管拡張を促進し、非特異的な電気的影響を最小限に抑えます。
  5. 閉じ込められた気泡を取り除きましょう
    1. 皮膚を取り付ける前に、電極室に閉じ込められた気泡がないか点検してください。
    2. 目に見える気泡は、電極室を優しく叩くか、滅菌プラスチック製のシリンジ先端を使って除去してください。
      注意:気泡は電流の流れを妨げ、不均一な薬物送達を引き起こす可能性があります。
  6. 基準電極の位置を取る
    1. 参照(中性)電極を薬剤送達電極の約15cm近位に導電性ゲルまたは接着剤で取り付けます(図1A)。
    2. イオントフォレーションを開始する前に、電極接触が安定しているか確認してください。
      注:薬理学的評価領域とPORH評価領域の空間的分離により、交絡相互作用を最小限に抑え、ACh誘発性軸索反射フレアとPORH測定領域の重複を防げます。
  7. イオントフォレーシスシステムを接続します
    1. 電流を適用する前に、すべての電極をイオントフォレーシス供給装置に接続してください。
    2. プロトコル開始前に電極極性を確認してください(AChは陽極、SNPは陰極)。
      注意:電極極性が誤ると薬物送達効率が低下し、血管反応が変化することがあります。
  8. イオントフォレシスの現在プロトコルを実施してください
    1. 両方の薬理学的薬剤に対して、30、60、90、120、150、180μAの6回の増分電流投与を行います。
    2. 現在の各用量を10秒間塗布します。
      注:インクリメンタルカレント・カレントプロトコルは線量反応曲線の構築を可能にし、微小血管感受性およびプラトー応答の評価を容易にします11。低電流振幅と短い刺激間隔の組み合わせにより、非特異的なガルバニック血管拡張が最小限に抑えられます。
  9. 刺激の間隔を保ちましょう
    1. 連続した電流の適用間隔を60秒保ちましょう。
    2. 投与間隔の安定化期間中に灌流信号を監視してください。
      注:選択された間隔は、局所薬物送達を維持しつつ、微小血管反応の安定化を可能にします。
  10. 微小血管反応を記録してください
    1. すべてのイオントフォレシス刺激を通じて、微小血管灌流信号を継続的に記録します。
    2. 最終的な電流適用後、最大プラトー応答を捉えるために少なくとも10分間記録を続けてください。代表的な線量依存応答は 図2Aに示されています。

figure-protocol-3
図2。イオントフォレーションおよび閉塞後反応性充血(PORH)における皮膚微小血管灌流の代表的な記録。(A) イオントフォレーション中にLSCIを用いて得られた2% AChの皮膚微血管血流の代表記録。陽極電流は30、60、90、120、150、180 μAの増大する陽極電流を10秒間隔で1分間供給。(B) PORH評価中に得られた代表的な記録。この図の拡大版はこちらをクリックしてご覧ください。

4. 閉塞性反応性充血(PORH)

  1. 閉鎖カフの位置を取る
    1. LSCI記録に使う同じ肢の上腕に、幅約12cmの標準的な空気圧カフを装着します。
    2. カフを選定された微小血管評価部位の近位部に置きます。
  2. PORH評価領域を定義する
    1. イオントフォレシス電極の隣接する腹側前腕に3つ目のROIを作成します。
    2. 薬理学的干渉を避けるために、治療を不要な皮膚領域にROIを配置してください。
      注意:独立した血管反応を維持するために、薬理刺激部位とPORH評価領域の間に空間的な分離を維持してください。
  3. PORHのベースライン記録を取得する
    1. 動脈閉塞前に5分間連続して安静時皮膚灌流を記録してください。
    2. カフ膨張前に基準的な灌流信号をモニタリングし、信号の安定性を確認してください。
  4. 動脈閉塞を誘発する
    1. 自動インフレーターまたは手動膨張バルブを使って、<5秒以内に空気圧カフを素早く膨らませてください。
    2. カフ圧を参加者の以前に測定した収縮期血圧(SBP)より50 mmHgまで上げます。
      注意:閉塞期間を開始する前に動脈閉塞が完全にあることを確認すること。不完全な閉塞は充血反応を損なう可能性があるため。
  5. 閉塞期間を維持する
    1. 動脈閉塞を正確に3分間連続で維持してください。
    2. LSCI信号が生物学的なゼロプラトー(< 10 APU)に低下することを確認して完全な閉塞を確認しましょう。
      注:生物学的ゼロ信号は、ブラウン運動を含む、指向性血流とは独立した血球の残留運動を反映しています。
  6. 閉塞カフを外せ
    1. 急排気バルブを使ってカフ圧力を瞬時に解放します。
    2. 血流の即時回復を許し、反応性充血反応を開始する。
  7. 充血反応を記録してください
    1. カフを外した後、少なくとも5分間はLSCIの録音を続けてください。
    2. ピークの灌流反応とその後の基準灌流レベルへの回復を捉えます。代表的なPORH応答は 図2Bに示されています。
  8. PORH応答を定量化してください
    1. 画像取得ソフトウェア内でピークCVCを計算します。
    2. 解析ソフトウェアを使って、超吸動応答信号の曲線下面積(AUC)を計算します。

5. データ抽出と統計解析

  1. 記録されたデータを開いて検証します
    1. 画像解析ソフトを使って記録された取得ファイルを開いてください。
    2. すべての事前定義されたROIが対応する測定地点に正しく配置されていることを確認してください。
      注意:再配置ROIは、モーションアーティファクトや獲得ドリフトによって元の配置が損なわれた場合のみ行います。
  2. 解析区間を定義する
    1. 灌流およびCVCトレンドグラフ上の具体的な分析区間を特定します。
    2. 最初の血管刺激直前の連続した60秒の基準間隔を選択します。
    3. イオントフォレーション刺激後の各60秒間隔の最後の30秒を選択して、プラトーの微小血管反応を捉えます。
      注:ベースライン安定性を、データ解析前に血管運動振動や運動アーティファクトの影響を最小限に抑えるため、灌流信号の5%<変動係数(CV)と定義してください。
  3. PORH応答変数の特定
    1. PORHプロトコルの動脈閉塞期における生物学的ゼロ信号を特定します。
    2. カフリリース直後にCVCのピーク値を特定してください。
  4. 区間平均値を計算します
    1. 画像解析ソフトウェアを使って、各あらかじめ定義された分析区間の平均CVC値を計算します。
    2. 最終的な計算値を確定する前に、動きのアーティファクトがないか確認してください。
  5. 抽出したデータを整理する
    1. 平均生のPU値と平均CVC値をエクスポートするか手動で文字起こしし、構造化されたスプレッドシートにしてください。
    2. データセットは、アセチルコリン、ニトロプルシドナトリウム、PORH反応などの血管刺激や研究グループごとに整理します。
      注意:データ処理時にはファイル名と参加者識別コードの一貫性を維持し、文字起こしの誤りを最小限に抑えてください。
  6. 二次的な血管転帰の計算
    1. 基準灌流またはCVC値からの増加率を計算し、血管反応性を判断します。
    2. 二次評価項目分析のために必要な場合にAUCを計算します。
  7. 統計解析を行う
    1. 統計分析ソフトウェアを使ってデータを分析します。
      注意:該当する場合は、ソフトウェアベースの解析に関する代表的なスクリーンショットやワークフロー指示を補助資料として含めてください。
    2. データ分布の評価
      1. シャピロ・ウィルク検定を用いてデータの正規性を評価します。
      2. 正規分布データを平均±標準偏差(SD)として表現します。
      3. 非正規分布のデータを中央値および四分位数範囲(IQR)として表現します。
    3. 微小血管反応の比較
      1. 正規性仮定が満たされた場合、独立したt検定を用いて2グループデータセットを比較します。
      2. 複数のグループを一方向ANOVAで比較し、その後Tukeyの事後検定を行います。
    4. 統計的有意基準の定義
      1. 統計的有意性をp < 0.05と定義します。
      2. 影響を受けた分析からペアワイズ削除または除外を用いて、運動アーティファクトによる欠損データを処理します。
        注意:分析の完全性を維持するために、すべての研究グループで同じ欠損データ戦略を一貫して適用してください。

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結果

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

このプロトコルを成功裏に適用すると、安定したベースラインが得られ、その後各血管刺激に対して明確かつ識別可能な微小血管反応が得られます。技術的に成功した実験では、ベースライン記録が最小限の変動で安定した灌流信号を示し、平均信号の< 10%の標準差(SD)と定義されます。ACおよびSNPのイオントフォレーション中は、APUが段階的に増加することが予想され、これは線量依存的な血管拡張を反映しています。成功したPORH反応は、動脈閉塞時に灌流が急速に低下して安定した生物学的ゼロにし、その後カフ解除直後に急激な充血ピークが現れ、健康な被験者では基準値を数倍も上回る傾向があります。 図1A は、LSCIおよびイオントフォレーシスを用いた皮膚微小血管評価に用いられる実験装置を示しています。 図1B–1D は、代表的なイオントフォレシス応答と電極位置を示しています。 図2A ...

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ディスカッション

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

LSCIは、高い空間的・時間的分解能を持つ標準化かつ非侵襲的な全身微小血管機能評価を提供します。LDFは単点測定に限定され、皮膚灌流の空間的異質性に非常に敏感であるのに対し、LSCIは全視野画像化と複数のROIの同時評価を可能にします。この特性は測定の再現性を大幅に向上させ、臨床微小血管研究における変動係数を低減します。さらに、LSCIの非接触性により、プローブ技術に一般的に伴う局所的な圧力アーティファクトが最小限に抑えられ、トランスレーショナルおよび臨床研究の場での繰り返し評価に適しています。

このプロトコルの重要な要素は、灌流データをMAPに正規化してCVCを計算することです。皮膚血の灌流は全身灌流圧に強く影響されるため、生のAPU単独の解釈では、特に高血圧や脂質異常などの血行動態プロファイルが変化する集団では有意な交絡を引き起こす可能性があります。このため、プロトコルでは、異なる生理学的および病理的条件下での微小血管機能の解釈を改善するために、生のPU値と正規化されたCVC値の両方を報告することを推奨していま...

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開示事項

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

著者らは関連する財務的または非財務的な利益相反を一切認めていません。

謝辞

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$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

この研究は国立心臓病学研究所(INC/MS)、リオデジャネイロ州カルロス・チャガス・フィーリョ研究支援財団(FAPERJ)、およびブラジルの国立科学技術開発評議会(CNPq)によって支援されました。著者らは、マイクロサークル評価中の優れた技術的支援をいただいた看護師のマルシオ・マリーニョ・ゴンザレス氏と技術者のマイラ・ドゥケ氏に感謝の意を表しています。

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材料

この記事で使用された材料の一覧
名前会社カタログ番号コメント
機器
自動振幅血圧計オムロンヘルスケアHEM-7120ベースライン平均動脈圧(MAP)評価(3回測定)に使用
デジタル校正温度計Delta OHMHD2301.0室温モニタリングの精度± 0.1°C
分散(基準)電極Perimed ABPF 384大表面積中性電極
薬剤送達電極Perimed ABPF 383 / LI 611非侵襲性イオントフォレーシスチャンバー(約80 mm²)
イオントフォレーシス電源コントローラPerimed ABPeriIont微小血管診断システムデュアルチャンネル電流コントローラ(最大200 µA)
レーザースペックルコントラストイメージング(LSCI)システムPerimed ABPeriCam PSI NR高解像度の血液灌流イメージャ
医療グレードの真空クッションAB GermaN/A心臓レベルでの手首を安定させるのに使用
片手操作の真空ポンプAB GermaN/A真空クッションの排気のために使用
ラピッドカフインフレーターD.E. Hokanson, Inc.E20ラピッドカフインフレーター標準化された3分間の動脈閉塞に使用
試薬と消耗品
アセチルコリン塩化物(ACh)Sigma-AldrichA66252%で調製された内皮依存性血管拡張薬
アルコール消毒パッドBecton Dickinson326895皮膚準備用70%イソプロピルアルコールパッド
脱イオン水Sigma-Aldrich38796電極の最終的なすすぎに使用
塩化ナトリウム(0.9%生理食塩水)地元のサプライヤーN/A薬剤の調製と皮膚の洗浄溶媒
ニトロプルシドナトリウム(SNP)Sigma-AldrichS05012%で調製された内皮非依存性血管拡張薬
滅菌ガーゼ地元のサプライヤーN/A清掃後の皮膚表面の乾燥に使用
ソフトウェア
灌流分析ソフトウェアPerimed ABPIMSoftLSCIデータ取得とROI分析用ソフトウェア
統計解析ソフトウェアGraphPad SoftwarePrism 10用量反応曲線の適合と曲線下面積(AUC)計算に使用

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