2009年10月30日
ヒト血小板溶解液は、増殖因子や細胞培養における強力なサプリメントの豊富な情報源となります。このプロトコルは、多血小板血漿から始まるいくつかの凍結融解サイクルを実行し、血小板の断片を枯渇させることによってヒト血小板溶解物の大規模なプールを準備するプロセスを示します。
このプロトコルでは、血小板豊富血漿から開始し、大量のヒト血小板溶解液を調製するプロセスについて説明します。1回の凍結融解サイクルを行うことで、血小板を溶解させます。その後、10ユニット以上のヒト血小板溶解液を1つのバッチにまとめ、プールヒト血小板溶解液(PHPL)を作成します。
この約3リットルの容量をさらに分注し、再び凍結して血小板断片を除去します。これらの分注液を解凍してバイアルに移し、遠心分離します。上清が、血小板由来成長因子を含み、細胞培養のサプリメントとして使用される血小板断片除去済みPHPLとなります。
残りの血小板断片ペレットを廃棄します。こんにちは、Grads医科大学幹細胞研究ユニットのDr.TROの研究室から来ましたKadina Sharmoです。本日は、ヒト血小板分離プールの調製手順について説明します。
まず、血小板血漿(PRP)を用意し、数回の凍結融解サイクルを行った後、血小板断片を除去します。当研究室では、胎児牛血清の代替として細胞培養に十分なサプリメントを得るために、この手順を採用しています。それでは、始めていきましょう。
本プロトコルでは、PRPと呼ばれる多血小板血漿を用います。この血漿は、細胞成分採取(Cy Apheresis)によって調製されたか、あるいはバフィーコートから得られたものである可能性があります。輸血医学分野以外の方は、地域の血液銀行やその他の認定提供元からPRPを購入してください。
各PRPユニットから20 millilitersを小型の接続バッグに転送し、ウェルダーでバッグを切り離すことで、PRPユニットの無菌性を確認します。この分注サンプルは、調製後すぐに微生物検査ラボへ送付して無菌試験を行うことができます。PRPユニットは、元の保存バッグに入れたまま、少なくともminus 20 degreesまで凍結させることが重要です。
細菌検査の結果が陰性であることを確認した後、次のステップに進みます。ヒト血小板溶解物(以下、HPL)が過度に加熱されないよう注意しながら、氷結塊が消失するまでHPLユニットを37 °Cのウォーターバスに浸します。各血小板溶解物プールで標準化された製品を調製するため、この凍結融解ステップの後に血小板を溶解させる必要があります。
解凍したPRPを10~15ユニット用意します。連続する各HPLバッグをプーリング用ダブルバッグに接続し、HPLをこれら2つのバッグに転送します。ウェルダーを使用して、空になったHPLバッグを取り外します。
2つのバッグの内容物を混合し、プールしたヒト血小板溶解物の最終容量を3〜4 Lにします。これをPHPLと呼びます。小型のバッグを接続し、プールした製品の無菌性を確認するために、PHPLのサンプルを20 mL採取します。
プーリング用のダブルバッグに小型バッグを接続し、PHPLサンプルを分注します。小型保存バッグに約250 millilitersずつ移し、充填されたバッグをウェルダーで切り離します。次に、血小板の断片化率と放出される成長因子の量を増加させるため、さらに1回の凍結融解サイクルを行います。
分注したPHBLの小さなバッグを-20°Cで凍結させます。その後、ラミナーフローフード内で、37°Cのウォーターバスを用いてバッグを解凍してください。
滅菌したハサミを使用して各バッグのチューブを切断して開封し、PHPLを50 milliliterのバイアルに分注します。血小板断片は血小板を凝集させる傾向があり、同種免疫を誘導する場合もあります。これらの状態を避けるため、冷却遠心機を用い、4, 000 GSで15分間遠心分離を行い、PHPLから断片を除去します。
次に、血漿上清を最終保存容器にピペットで移し、細胞培養液中にフラグメントが混入するのを防ぐため、血小板ペレットを廃棄します。PHPLを50 milliliterずつ分注し、次回の使用まで再びminus 20 degreesで凍結保存します。これで血小板フラグメント除去済みPHPLが作成されたので、ライセートの特性を分析することができます。
プールされた血小板溶解液の機能と品質は細胞培養で検証されており、細胞増殖の効率的な促進、間葉系ストローマ細胞(MSCs)および血管内皮コロニー形成細胞(E CFCs)の増殖において、血小板断片を除去したPHPLを用いて成功することが証明されています。培地組成の詳細は、こちらの書面プロトコルをご参照ください。プールされたヒト血小板溶解液の2つの用途について。
間葉系ストローマ細胞の培養において、ドナー1から得られたMSCをPHPLまたは血小板断片除去済みPHPLで培養した結果を示しています。記載の通り、断片除去済みPHPL単独と比較して、こちらではより多くの断片混入が認められます。血小板断片だけでは、MSCの増殖を十分にサポートすることはできません。
3枚の画像はすべて、培養13日後に撮影したものである。ドナー2由来のMSCは、血小板豊富血漿(PRP)ではなく、血小板断片を除去したPHPLで9日間培養した。血小板溶解を行わないPRPでは、MSCの増殖を十分にサポートできないことに注目されたい。
また、ヒト臍帯血由来MSCの単離および培養におけるフラグメント除去済みPHPLの使用について記述したAndreas ReishによるJoVEプロトコルも併せて参照してください。ここまで、幹細胞培養において動物血清を完全に代替するためのPHPLの作製方法について説明しました。この手順を行う際は、培養培地にヘパリンとPHPLを添加する前に、血小板フラグメントを除去することを忘れないでください。
以上となります。ご視聴ありがとうございました。皆さんの実験の成功を願っております。
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本プロトコルでは、多血小板血漿(PRP)からヒト血小板溶解液(HPL)を調製する方法について詳述します。このプロセスでは、凍結融解サイクルを用いて血小板を溶解させ、細胞培養のサプリメントとして適した、成長因子が豊富で血小板断片の少ない溶解液を作製します。
動物血清不使用の培養システムは、幹細胞治療を臨床応用および規制遵守へと進めるために不可欠です。本プロトコルでは、間葉系ストローマ細胞の増殖および血管内皮コロニー形成細胞の伝播をサポートする、定義済みのゼノフリーサプリメントとして、ヒト血小板溶解物(pHPL)をスケールアップして製造する方法を提示します。血小板の溶解およびフラグメント除去を標準化することにより、ロット間のばらつきを抑え、初期探索および前臨床ワークフローにおける再現性を向上させます。
本手法は、初期のターゲット検証から前臨床段階での拡大培養に至るまで、幹細胞培養用の無血清サプリメントを提供することで、リード化合物の同定およびメカニズム的なリスク低減を支援し、創薬の連続的なプロセスに統合されます。