2009年10月30日
ヒト血小板溶解液は、増殖因子や細胞培養における強力なサプリメントの豊富な情報源となります。このプロトコルは、多血小板血漿から始まるいくつかの凍結融解サイクルを実行し、血小板の断片を枯渇させることによってヒト血小板溶解物の大規模なプールを準備するプロセスを示します。
本プロトコルでは、多血小板血漿から大量のヒト血小板溶解物を調製するプロセスについて説明します。1回の凍結融解サイクルを行うことで、血小板を溶解させます。その後、少なくとも10単位のヒト血小板溶解物を1つのバッチにまとめ、プールヒト血小板溶解物(PHPL)を作成します。
この約3リットルの液量をさらに分注し、血小板断片を除去するために再度凍結させます。これらの分注液を融解してバイアルに移し、遠心分離にかけます。上澄み液が、細胞培養の補充に使用される血小板由来成長因子を含む、血小板断片除去済みPHPLとなります。
残りの血小板断片ペレットは廃棄します。こんにちは、Grads医科大学幹細胞研究ユニットのDr.TRO研究室のカディナ・シャルモです。本日は、ヒト血小板分離プールの調製手順について解説します。
まず血小板豊富血漿(PRP)を用意し、凍結融解サイクルを数回繰り返した後、血小板断片を除去します。当研究室では、胎児牛血清の代替として細胞培養に十分なサプリメントを得るためにこの手順を用いています。それでは始めていきましょう。
本プロトコルでは、PRPと呼ばれる多血小板血漿を使用します。この血漿は、サイフェレーシス(成分採血)によって調製されたか、バフィーコートから誘導されたものである可能性があります。輸血医学の専門外の方は、地域の血液センターやその他の認定提供元からPRPを購入してください。
各PRPユニットから20 millilitersを接続された小型バッグに分注し、ウェルダーを用いてバッグを切り離すことで、PRPユニットの無菌性を確認します。この分注サンプルは、調製後すぐに微生物検査室へ送り、無菌試験に供することができます。PRPユニットは、元の保存バッグに入れた状態で、少なくとも-20 degreesまで凍結させることが重要です。
細菌検査の結果が陰性になったら、次のステップに進みます。ヒト血小板溶解物(以下、HPLと呼ぶ)が過度に加熱されないよう注意しながら、氷結した凝塊が消失するまで、HPLユニットを37°Cの恒温水槽に入れます。各血小板溶解物プールで標準化された製品を調製するため、この凍結融解ステップの後に血小板を溶解させる必要があります。
解凍済みのPRPユニットを10〜15個収集します。連続する各HPLバッグをプーリング用ダブルバッグに接続し、HPLをこれら2つのバッグに転送します。空になったHPLバッグをウェルダーで切り離します。
2つのバッグの内容物を混ぜ合わせ、プールヒト血小板溶解物(pooled human platelet lysate)の最終容量を3〜4 Lにします。以降、これをPHPLと呼びます。小型バッグを接続し、プールした製品の無菌性を確認するためにPHPLのサンプルを20 mL採取します。
プーリング用ダブルバッグに小型バッグを接続し、PHPLサンプルを分注します。小型保存バッグに約250 millilitersずつ移し、ウェルダーを用いて充填済みバッグを切り離します。次に、血小板の断片化率と放出される成長因子の量を増加させるため、さらに1回の凍結融解サイクルを行います。
分注したPBMCの小袋を-20°Cで凍結させます。その後、ラミナーフローフード内で、37°Cのウォーターバスを用いて袋を融解させます。
滅菌済みハサミを使用して各バッグのチューブを切断して開き、PHPLを50 milliliterバイアルに注ぎます。血小板断片は血小板を凝集させる傾向があり、同種免疫を誘導する場合もあります。これらの状況を避けるため、冷却遠心機を用い、4, 000 GSで15分間遠心分離してPHPLから断片を除去します。
次に、血小板ペレットが細胞培養液の凍結時に断片として混入するのを防ぐため、血漿上清を最終保存容器に分注し、血小板ペレットは廃棄してください。PHPLを50 mLずつ分注し、次回の使用まで再び-20 °Cで凍結保存します。これで血小板断片除去PHPLが作成されたため、溶解物の特性を分析することができます。
プールした血小板溶解物の機能と品質は細胞培養にて試験されており、細胞増殖の効率的な促進、間葉系ストローマ細胞(MSCs)および血管内皮コロニー形成細胞(E CFCs)の増殖において、血小板断片を除去したPHPLを用いて成功することが証明されています。培地の組成については、こちらの書面によるプロトコルをご参照ください。プールしたヒト血小板溶解物の2つのアプリケーション。
間葉系ストローマ細胞の培養において、ドナー1由来のMSCをPHPLまたは血小板フラグメント除去PHPLを用いて培養した結果を示します。示されている通り、フラグメント除去PHPL単独と比較して、ここではより多くのフラグメント混入が認められます。血小板フラグメントでは、MSCの増殖を十分にサポートすることはできません。
3枚の画像はすべて培養13日後に撮影されたものである。ドナー2由来のMSCは、血小板豊富血漿(PRP)ではなく、血小板断片を除去したPHPLで9日間培養された。血小板溶解を行っていないPRPでは、MSCの増殖を十分に維持できないことに留意されたい。
また、ヒト臍帯血由来MSCの分離および培養にフラグメント除去PHPLを使用する方法について記述したAndreas ReishによるJoVEプロトコルも参照してください。幹細胞培養において動物血清を完全に代替するためのPHPLの作製方法について説明しました。この手順を行う際は、培養液にヘパリンとPHPLを添加する前に、血小板フラグメントを除去することが重要です。
以上になります。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りしております。
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本プロトコルでは、多血小板血漿(PRP)からヒト血小板溶解液(HPL)を調製する方法について詳述します。このプロセスでは、凍結融解サイクルを用いて血小板を溶解させ、細胞培養のサプリメントとして適した、成長因子が豊富で血小板断片の少ない溶解液を作製します。
動物血清不使用の培養システムは、幹細胞治療を臨床応用および規制遵守へと進めるために不可欠です。本プロトコルでは、間葉系ストローマ細胞の増殖および血管内皮コロニー形成細胞の伝播をサポートする、定義済みのゼノフリーサプリメントとして、ヒト血小板溶解物(pHPL)をスケールアップして製造する方法を提示します。血小板の溶解およびフラグメント除去を標準化することにより、ロット間のばらつきを抑え、初期探索および前臨床ワークフローにおける再現性を向上させます。
本手法は、初期のターゲット検証から前臨床段階での拡大培養に至るまで、幹細胞培養用の無血清サプリメントを提供することで、リード化合物の同定およびメカニズム的なリスク低減を支援し、創薬の連続的なプロセスに統合されます。