Name: でアニマルキャップの移植（ACT）アッセイを用いて組織の決定アフリカツメガエル /em (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-05-16T17:00:00.000+00:00
Duration: 11 min
Description: 学ぶアニマルキャップ移植アッセイによる組織決定の仕組み。Xenopus laevis胚で遺伝子産物が原始表皮を特定細胞運命へ誘導できるかを検証し、異所性組織形成を観察する発生生物学の手法です。

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この作品は、視覚障害（キャリア開発のMEZとASVの受賞と眼科への無制限の助成金）、E.マチルダゼイグラー財団（MEZとASV）と国立眼研究所/ NIH（MEZを防止するための研究からの補助金によって支えられて、助成金R01EY015748とR01EY017964）。

パートI.は、ACTアッセイのセットアップが簡単にできます。 <ol><li>クロロホルム精製法（;アプライドバイオシステムズ/アンビオン、オースティン、テキサス州などmMessage mMachineキット）：自分のフェノールを使用して、製造元が推奨するように注射用キャップRNAを生成する。蛍光タンパク質をコードするRNAをトレーサーとして使用されます。私たちは、黄色蛍光タンパク質（YFP）またはpCS2 +発現ベクターになっているcDNAをmCherry 5のいずれかを書き写す。 </li><li>マイクロピペットプラーを使用してテーパーガラスチップを形成するために、ホウケイ酸ガラス毛細管を引き出します。我々は、サターマイクロピペットプラー、P - 97（サッタインスツルメンツ社、ノヴァト、CA）を使用し、前述の6を説明した。 </li><li> KClを20mMの; 20mMのCaCl 2を 、50mMのHEPES、1MのNaCl、pH7.5に調整し、オートクレーブとに格納されている10 Xマークの修正リンゲル（MMR）ソリューション株式（10mMのMgCl 2から表1の滅菌溶液を作るRT）。 </li><li>男性のカエルから精巣を分離し、1X MMR /ゲンタマイシン（50μg/ mlの硫酸ゲンタマイシン、BioWhittaker、猫＃17 - 518Z）の滅菌溶液に4℃で組織を保存する。これは、実験開始前の週までに行うことができますが、それは時間をかけてその効力を失いますている。 </li><li>産卵溶液（1X：150mMのNaCl、2.62 mMの塩化カリウム、0.8 mMののNa 2 HPO 4、20mMのTrizma塩基、2.62 mMのNaHCO 3と2.75 mMのMgSO 4を用い 、pHを7.6に調整）、8X株式として作ることができる4℃で保存することができます℃で最長2週間のための注記 ：このソリューションの汚染に注意、これは卵の品質に影響を与えるので。 </li><li>注入プレートを生成します。これを行うには、軽く泡を防止し、約のためにクールなように解決の上にエラストマー金型を（図1）アンロール、60 mmのプレートに〜6 mLの溶融アガロース溶液を追加し、電子レンジで0.4X MMRの1％アガロースを溶かす室温で20分。必要な数を決定するために、実験条件の数を考慮してください（ 例：1、YFP、2、YFP +ノギン）及び移植宿主胚の数が必要。我々の実験では、各実験条件に対して、少なくとも20移植宿主胚を生成する。 18〜19℃で、胚は1時間ステージ15になります。それは20の移植を実行するために一時間を要する場合、2つの受精時のポイントは、宿主胚はすべて移植を受け入れると仮定して、必要とされています。したがって、4つの注射の料理は（2のexpの条件× 2受精の時点= 4）必要になります。最大1週間までは4℃でプレートを保管してください。 </li><li>注入プレート用として金型を1％アガロース+ 0.7X MMRを使用してキャップの絶縁板を生成します。注入プレートを加えたつ余分あたり受精の時点（4 + 2受精の時点= 6）のようなキャップの分離の同じ数を作る。 </li><li> 500台でマイクロインジェクションの前日に一日の後半にヒト絨毛性性腺刺激ホルモンを女性に注入する。 ℃で一晩16から18の雌を保管してください。 </li></ol>パートII。 アフリカツメガエルの胚のRNAのマイクロインジェクションマイクロインジェクションのためのA.の準備<ol><li>ホルモン誘発される女性を取り外し、1X産卵ソリューション（ELS）を含む個々のタンクの中に置いてください注意：私達は卵の質が低下するとELSで3つ以上の時間をされている卵を使用しないでください。そのため、 体外受精の前に約一時間、我々は唯一の新鮮な卵が収集されるように、タンクからすべての卵を捨てる。 </li><li> 25〜35μmの直径を得るために先端をオフsnippingによってマイクロインジェクション用のニードルを準備します。 picoinjectorの上に針を置き、それが注射あたり10 NLを分配するようにそれを校正する。 </li><li> 14℃にインキュベーターを設定する</li><li>かつて女性は約1時間、転送ピペットを使用してタンクから卵を除去すると60mmのペトリ皿にそれらを置くための卵を置いている。できるだけ卵から多くELSとして削除し、1X MMRと交換してください。卵は、すぐに受精または1時間まで1X MMRに滞在することができます。移植アッセイのために、それは周りの午前11時、正午と午後1時3つの別々のバッチまでの卵の単層の80％完全な2皿を、受精させる最善の方法です。注射の後、彼らは（;パートI、上記の＃6を参照ステージ15）14 ° Cは非常に彼らはキャップの分離（ステージ8.5〜9）と移植のための必要な段階に成長するとその時点で配置されます。 </li><li>精巣の品質を確認するには、我々は最初から精子が実行可能でない場合、私たちは別の男性から精巣を抽出することができる早朝の受精を（〜午前8時）、実行してください。注：我々は1 mLの1X MMRで〜0.25睾丸をホモジナイズし、卵母細胞のプレート当たり約5〜7滴を追加します。 </li><li> in vitroでは時間後、均質化した精巣に卵を受精し、脱ゼリー液（164μl1M DTT + 10mLの1Mトリス、pH 8.8、50 mLのオートクレーブnanopureの水への）を使用して卵のゼリーのコートを脱ぐ。彼らは18℃でCまたは室温で1.5時間（22℃）を約2時間かかるソートを開始する2細胞期に達するまで待ちます。 </li><li> TRANSFの使い方二ピペット、一様に色素ソートと均等に分割し胚は、として0.4X MMR + 6％フィコールで満たされた注射皿のウェルに、図3の左側のアニマルキャップに示す。 </li></ol> B.マイクロインジェクション<ol><li> 60ミリメートルペトリ皿の蓋の上にパラフィルムを伸ばす。ピペットパラフィルム上に、最初のRNAサンプルを2μlと注射針を埋めるためにPLI - 100を使用して吸引除去する。針はまだ注射を開始する前に、サンプルの10 NLを調剤していることを確認してください。 </li><li>別の皿7の500の皿と、目的の遺伝子（例えば、20 pgのノギンRNA）のPG YFP RNAに加え、YFP RNA 20〜30 2細胞期の胚を（両方の割球）注入。 </li><li>フィコール液で別の注射の皿の中で時間をポイントごとに100から200までの非注入胚を置きます。注入された胚と同時にinとoutインキュベーターのそれらを移動する。これらは、パートIVで使用されるホストです。 </li><li>注入後、14歳ですべての胚をインキュベート℃で一晩。すべての時間ポイントについて繰り返します。 </li></ol>パートIII。注入された胚から動物のキャップを分離する<ol><li>胚を上演するために早朝に到着する。早い時点ではステージ9になっているはず。生存しなかったものを削除します。バッチ内の各時点での作業は、次の手順に進みます。 </li><li>各プレートからフィコール溶液を捨て、バック0.7X MMR /ゲンタマイシン溶液を添加する。キャップの分離皿に、0.7倍MMR /ゲンタマイシンソリューションの寛大な量を追加します。作りたてのキャップの分離皿に転送ピペットと場所を使用してインジェクション皿の井戸から胚を押しのける。 </li><li>ステージング用に2つまたは3つの完全な胚を保ち、0.7X MMR +ゲンタマイシン溶液中で動物のキャップを分離します。黄色の先端は400μmに曲げたり、鋭い番号5ピンセットを装着Gastromaster、どちらを使用することができます。 </li><li>次の日まで、14℃インキュベーターに戻しキャップを置く。宿主胚は、ドナーの組織と同じ発達段階でそれらを保つためにキャップと同時にインキュベーターから削除する必要があります。 </li></ol>パートIV。側面上にキャップの移植<ol><li> 14℃インキュベーターからの最初の時点から、キャップや胚を取り出して、胚を上演。トレーサーの注入（図2）に応じて、均一な黄色または赤色蛍光陽性キャップの並べ替え、。 </li><li>キャップの数をカウントし、0.7倍MMR /ゲンタマイシン溶液を新しく調製した注入皿にステージの数が12から13までの胚を二重削除。シャープ＃5鉗子で、それぞれから卵黄膜を除去。キャップ付きのプレートに移すが、注意してください。彼らの卵黄膜がなければ、胚は、すぐに水の表面で解離することができます。 </li><li> gastromaster（黄色の先端、200 -250μm曲がった線、最高の設定）または＃5ピンセットを使用して、ステージ14から15（図3）における胚の辺上の正方形は200μmを削除します。その後、半分にキャップをカット（gastromasterまたは＃5ピンセット付き）とホスト胚に作られた穴にティッシュを置く。治癒を可能にするためによくに対する胚を回転させる。彼らがステージ15にあるときに、できるだけ多くの胚などに対してこれを行います。すべての時間ポイントについて繰り返します。 </li><li>胚は、通常30分以内に治るでしょう。 ＃5鉗子で穏やかなブラッシング運動と死細胞（白）を取り外します。 18 ° Cで一晩、それらを成長する。 </li><li>解剖蛍光顕微鏡、蛍光標識によるソートの胚、移植組織の下で。 18でそれらを戻す° Cステージ42から43まで成長する。 </li><li> tricaineで動物を麻酔。この時点で、蛍光解剖顕微鏡下で写真を撮ることができます。設定が終了したら、セクションを修正し、免疫染色や、興味のあるあなたの組織のためのマーカーを用いてin situハイブリダイゼーションで行います。 </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1932/1932fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。胚保持料理を作るために使用されるエラストマー金型を鋳造するためのプレキシガラスの設計 。 38 × 38ミリメートル丸三角四角（深さ〜5 mm）を50 × 50 mm角と厚さ25 mmであるプレキシガラスの部分からルーティングされています。円形、等間隔井戸（1.5 mmの直径）は、プラスチックへの深い1mmを掘削している。マイクロインジェクションの料理用エラストマー金型を作るために、我々は、製造元の指示に従って、プレキシガラスにSylgardエラストマーを注ぎ、それが固化することができました。このエラストマー金型を射出し、キャップ絶縁板を作るために使用されます。 <img src="/files/ftp_upload/1932/1932fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。式が変化するように移植する前にソートアニマルキャップは、重要です。右側の外植片は、むらの式があり、破棄される間、左側のアニマルキャップが組織全体に均等にmCherry表現する。 <img src="/files/ftp_upload/1932/1932fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。ホストtadpOLEが移植アニマルキャップ細胞からその山腹の目状の構造を開発しました。蛍光画像が明視野画像上にオーバーレイされています。

<ol><li>Smith, W. C., Harland, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+cloning+of+noggin%2C+a+new+dorsalizing+factor+localized+to+the+Spemann+organizer+in+Xenopus+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Expression cloning of noggin, a new dorsalizing factor localized to the Spemann organizer in Xenopus embryos.</a> Cell. 70, 829-840 (1992).</li>
<li>Lamb, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+induction+by+the+secreted+polypeptide+noggin%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Neural induction by the secreted polypeptide noggin.</a> Science. 262, 713-718 (1993).</li>
<li>Green, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+Methods+in+Developmental+Biology%3A+Xenopus+%26+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Molecular Methods in Developmental Biology: Xenopus & Zebrafish.</a> Methods in Developmental Biology. , Humana Press. Towata, N.J. (1999).</li>
<li>Viczian, A. S., Solessio, E. C., Lyou, Y., Zuber, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+functional+eyes+from+pluripotent+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Generation of functional eyes from pluripotent cells.</a> PLoS Biol. 7, e1000174-e1000174 (2009).</li>
<li>Shaner, N. C., Steinbach, P. A., Tsien, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+guide+to+choosing+fluorescent+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A guide to choosing fluorescent proteins.</a> Nat Methods. 2, 905-909 (2005).</li>
<li>Brown, A. L., Johnson, B. E., Goodman, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Making+patch-pipettes+and+sharp+electrodes+with+a+programmable+puller%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Making patch-pipettes and sharp electrodes with a programmable puller.</a> J Vis Exp. , (2008).</li>
<li>Lan, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noggin+Elicits+Retinal+Fate+in+Xenopus+Animal+Cap+Embryonic+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Noggin Elicits Retinal Fate in Xenopus Animal Cap Embryonic Stem Cells.</a> Stem Cells. , (2009).</li>
</ol>

このビデオでは、我々はアニマルキャップの移植アッセイを作成するために再配置アフリカツメガエルの生物学者によって使用される古典的なテクニック、私たちのバージョンを示している。室温では、 アフリカツメガエルの胚では、ステージ9と15を介して非常に迅速に開発する。 14 ° Cでそれらを置くことによって、胚の発達が遅くなると、より多くの移植が一つの実験で行うことができます。それは古い段階（&gt; 43分の42）に胚を成長させる必要があるなら、私たちは、古いおたまじゃくしに注入された蛍光タンパク質の信号のフェードので、トランスジェニック金星YFPの動物を使用することをお勧めします。我々は眼様組織を形成するために指定されているEFTFsまたはノギンを発現する動物のキャップの組織を確立するために、このアッセイを使用していました。このアッセイは、目的の遺伝子（s）は、特定の細胞の運命を決定するために必要であるかどうかを確立するために簡単なテストとして使用することができる。

<table><tbody><tr><td>mMessage mMachine SP6 Kit</td><td>Applied Biosystems</td><td>AM1340</td><td></td></tr><tr><td>ホウケイ酸ガラスキャピラリーチューブ (外径 1.0mm x 内径 0.5mm)</td><td>FHC, Inc.</td><td>27-30-1</td><td></td></tr><tr><td>Sutter マイクロピペットプラー</td><td>Sutter Instrument Co.</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>ゲンタマイシン硫酸塩 [50 mg/ml]</td><td>Fisher Scientific</td><td>BW17-528Z</td><td></td></tr><tr><td>Sylgard/エラストマーキット 1.1lb</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9644388</td><td></td></tr><tr><td>60 x 15 mm ポリスチレン製シャーレ</td><td>USA Scientific, Inc.</td><td>8609-0160</td><td></td></tr><tr><td>ヒト絨毛性ゴナドトロピン</td><td>Intervet Inc.</td><td>22219</td><td></td></tr><tr><td>Pico-Injector マイクロインジェクションシステム</td><td>Harvard Apparatus</td><td>650003</td><td></td></tr><tr><td>Torrey Pines Scientific ECHOtherm インキュベーター</td><td>Fisher Scientific</td><td>11-680-21</td><td></td></tr><tr><td>転送ピペット</td><td>Krackeler Scientific, Inc.</td><td>6290-20635A</td><td></td></tr><tr><td>Dumostar #5 ピンセット</td><td>Fisher Scientific</td><td>11295-10</td><td></td></tr></tbody></table>

でアニマルキャップの移植（act）アッセイを用いて組織の決定アフリカツメガエル</em

Tissue Determination Using the Animal Cap Transplant (ACT) Assay in Xenopus laevis

多くのタンパク質は、胚発生における二重の役割を果たす。特定の組織の細胞の運命決定を制御するものも、胚の大きな領域の発展に影響を与える可能性があります。これは解析が困難、特定の組織にその役割を定義することができます。例えば、<em&gt;頭</emの&gt;過剰発現<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚では眼を含めて、全体の前方領域の拡大を引き起こす<sup&gt; 1,2</sup&gt;。この結果から、ノギンは、神経組織の拡大を引き起こすことによって眼の決定またはその直接的な役割を果たしている場合、ノギンは間接的に目の形成に影響を与える知られていない。この複雑な表現型を持つことは、分析することは困難細胞の運命決定における眼特異的な役割を研究することができます。我々はこの問題を克服するアッセイを開発した。の多能性の性質を活用して<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;アニマルキャップ<sup&gt; 3</sup&gt;、我々は同じように、遺伝子産物の機能（複数可）をテストするためのアッセイを開発した<em&gt;頭</em胚の側にこの組織を移植することにより、特定の組織または細胞型にキャップを変換する&gt;または目のフィールドの転写因子（EFTFs）、<sup&gt; 4</sup&gt;。我々は、ノギン蛋白質の治療や転写因子のコレクションのいずれかを発見した一方で、動物のキャップで網膜細胞の運命を決定することができます、この手順は同様に他の組織を指定することに関与する遺伝子産物を同定するために使用することができます。

アニマルキャップを過剰発現する遺伝子産物（s）を開発の側面に移植されています<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚組織が決定されているかどうかを確立するため。

でアニマルキャップの移植（ACT）アッセイを用いて組織の決定アフリカツメガエル</em

多くのタンパク質が、胚発生において二重の役割を担っています。特定の組織における細胞運命決定を制御するタンパク質は、同時に……の開発（発達）にも影響を及ぼす可能性があります。

ACTアッセイの全体的な目的は、目的の遺伝子が原皮膚を特定の細胞運命へと分化させることができるかを検証することです。まず、蛍光レポーター遺伝子および目的遺伝子をコードするRNAを、発生中のアフリカツメガエル（Xenopus laevis）胚に過剰発現させます。次に、過剰発現RNAを発現しているアニマルキャップまたは原腸胚を切り出し、ステージ15まで成長させます。本手順の第3ステップは、ステージ15のホスト胚の側腹部の組織を除去することです。最終ステップでは、ドナー動物C-cap組織の半分をホスト胚の側腹部に移植し、ホストをステージ42から43まで成長させます。結果として、切片作成および組織特異的マーカーを用いた免疫染色により、眼のような構造などの異所性組織の形成が示されます。こんにちは。私はアップステート医科大学眼科学部のand sineです。今日は、私がMike Suber氏と共同で開発した、アニマルキャップ移植アッセイと呼ばれる手法をご紹介します。私たちは両方の研究室でこのアッセイを用い、眼の形成に十分な条件となる遺伝子について研究しています。それでは、始めていきましょう。この手順を開始するために、注入用のキャップRNA（nogginまたはその他の目的遺伝子、およびトレーサーとして使用するYFP）を転写して準備します。また、MMRベースの溶液（8倍濃度の産卵溶液ストック）と、胚への注入に使用する針を準備してください。カスタムメイドのエラストマー型を用いて、胚保持用ディッシュを作製します。電子レンジで0.4 XMMR中の1%AROSを溶解させ、実験条件ごとに1枚の注入プレートを作製してください。溶液を約6 mL、60 mmプレートに分注します。気泡の発生を防ぐため、溶液の上にエラストマーモールドをそっと載せ、約20分間冷却します。室温にて、注入用プレートと同様に、1%AGROSと0.7 XMMRを用いたモールドを使用し、実験条件ごとに1枚のキャップ分離プレートを作成します。各タイムポイント用に予備のプレートを準備してください。タイムポイントの計算の詳細については、付属の書面によるプロトコルを参照してください。次に、雄のカエルから組織を単離し、50 µg/mLのGentamycinを添加した1X MMR滅菌溶液中で4°Cで保存します。この操作は実験開始の最大1週間前までに行うことができますが、精子は時間の経過とともに有効性が低下するため、マイクロインジェクション前日の夜遅い時間に行うことに注意してください。雌にヒト絨毛性ゴナドトロピンを500 units注射します。雌を16〜18 °Cで一晩保持します。これで翌日のマイクロインジェクションの準備がすべて整いました。まず、ホルモン誘導した雌を回収し、XELSを1匹ずつ入れた個別のタンクに配置します。次に、先端を切断してマイクロインジェクション用の針を準備します。25〜35 µmの直径を得るために、針をPLI 100 pico injectorに装着し、1回の注入につき10 nLを分注するように校正します。インキュベーターを14 °Cに設定します。RNAを注入した後、これらの卵をこの低温環境に置くことで胚の発達が遅くなり、1回の実験でより多くの移植を行うことが可能になります。受精の約1時間前に、タンクから卵を取り出します。雌がさらに1時間産卵した後、トランスファーピペットを使用して、新しく産卵された卵をタンクから取り除きます。ELS溶液に2時間以上浸漬した卵は使用しないでください。卵の品質が低下するため、卵を60 mmのペトリ皿に移します。皿の約80%を卵の単層で満たします。卵から可能な限り多くのELSを取り除き、1回分のXMMRに置換します。卵はXMMR内に最大1時間まで保持できます。次に、ホモジナイズした精巣を用いて卵をin vitroで受精させます。胚を目的のステージまで成長させるため、午前11時、正午、午後1時の3回に分けて受精させるのが最適です。キャップ分離にはステージ8.5から9、移植にはステージ15まで成長させます。卵を受精させてから1時間後、D jelly Solutionを用いて卵のジェリーコートを除去し、0.1 XMMRで十分に洗浄した後、受精卵が2細胞期に達するまで待ちます。ソーティングを開始します。0.4 XMMRに6%F ccalを加えた溶液を満たした注入皿を用意します。胚が2細胞期に達したら、転送ピペットを使用して、色素沈着が均一で均等に分裂している胚を注入皿のウェルに選別して移します。マイクロインジェクションに進みます。まず、60 mmのペトリ皿の蓋の上にストレッチフィルムを張ります。RNAサンプル 2 µLをバイオフィルム上にピペットで滴下し、吸引します。ピコインジェクターを用いて、注入用ニードルに充填します。注入を開始する前に、ニードルから引き続き10 litersのサンプルが分注されていることを必ず確認してください。RNAを2細胞期の胚の両方のブラスターに注入します。20から30個の胚にそれぞれ500 picogramsのY-F-P-R-N-Aを注入し、1つのディッシュにまとめてください。さらに20〜30個の胚に、Y-F-P-R-N-Aとあらかじめ混合した20 picogramsのNain RNAをそれぞれ注入し、ディッシュに配置します。加えて、各タイムポイントにつき100〜200個の非注入胚を、FICO溶液を含む別の注入用ディッシュに配置します。これらの胚を、注入した胚と同じタイミングでインキュベーターに出し入れしてください。これらは、注入後のキャップ移植に使用するホストです。すべての胚を14 °Cで一晩インキュベートしてください。計画しているすべてのタイムポイントについて同様の操作を繰り返します。一晩のインキュベーション後、アニマルキャップを分離することができます。早朝にラボに到着し、胚のステージングを行ってください。また、注射を行っていないホスト胚もインキュベーターから取り出すことを忘れないでください。最短のタイムポイントはステージ9とする必要があります。まず、生存しなかった胚を取り除きます。次に、生存している胚からアニマルキャップを分離し、タイムポイントごとにまとめてキャップ分離用ディッシュへ移します。0.7 XMMRおよびゲンタマイシン溶液を十分に加えます。次に、注入済みの胚が入った各プレートから溶液を捨て、0.7 XMMRおよびゲンタマイシン溶液を再度加えます。トランスファーピペットを使用して注入ディッシュのウェルから胚を回収し、新たに準備したキャップ分離ディッシュに移します。400 µmに曲げたイエローチップを装着したガストロマスター、または鋭い5番ピンセットを使用して、0.7 XMMR＋Gentamycin溶液中で動物極キャップを単離します。ステージ判定用に、完全な胚を2〜3個保持しておきます。動物極キャップを単離した後、翌日にホスト胚の側腹部へ移植するまで、ホスト胚と共に14 °Cのインキュベーターに戻します。14 °Cのインキュベーターから、最初のタイムポイントのキャップとホスト胚を取り出し、胚のステージを判定して、蛍光陽性が均一なキャップを選別します。キャップの数を数えて取り除きます。鋭い5番ピンセットを用いて、ホスト胚の2倍の数を、Gentamycinを添加した0.7 XMMR溶液が入った新しく準備した注入皿に移します。各ホスト胚からLene膜を取り除きます。キャップ付きのプレートに転写しますが、Lene膜がないため慎重に操作してください。200〜250 µmの曲げワイヤーを装着したイエローチップ付きのgastro masterを最高設定で使用するか、5番ピンセットを使用して、水面で胚を迅速に解離させることができます。ステージ14から15の胚の側面から200 µm四方の領域を切り出します。次に、ガストロマスタまたは5番ピンセットを用いて、切り出した組織を半分に切り、ホスト胚に設けた穴に移植します。ウェルに沿って胚を回転させ、治癒を促します。ステージ15にある可能な限りの胚に対してこの操作を行ってください。すべてのタイムポイントで同様に繰り返します。胚は通常30分以内に回復します。次に、5番ピンセットを用いて、白く見える死細胞を優しく払うようにして除去します。移植した胚を18 °Cで一晩培養します。一晩のインキュベーション後、解剖用蛍光顕微鏡下で、蛍光標識された移植組織を持つ胚を分取します。選別した胚を再び18 °Cに戻し、ステージ42から43まで成長させます。個体が目的のステージに達したら、トリカインで麻酔をかけ、蛍光解剖顕微鏡下で観察し、写真を撮影します。移植した胚を固定し、切片を作成して免疫染色を行うか、あるいは目的の組織のマーカーを用いてin situハイブリダイゼーションを行うことができます。ここでは、移植の1日後に、蛍光トレーサーとnogginを発現するドナー組織を持つホストオタマジャクシの代表的な結果を示します。組織がオタマジャクシの側面に球状に集まっていることに注目してください。蛍光トレーサーのみを発現する対照ドナー組織を移植したホスト胚では、すでに動物極外胚葉細胞が側腹部に取り込まれ始めています。数日後、nainを発現するドナー細胞を移植したオタマジャクシの側面に眼のような構造が形成される一方で、対照ドナー組織を移植したオタマジャクシの皮膚表面には蛍光細胞が見られるのみとなります。以上で、Xenopus laevisにおける動物極外胚葉移植アッセイの手順を説明しました。このアッセイを行う際は、胚が想定以上の速さで発達してしまわないよう、当日の手順を開始する前にすべての準備を整えておくことが重要です。以上となります。ご視聴ありがとうございました。皆様の実験の成功をお祈りいたします。

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Biology

生物学

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私たちは、有能な外胚葉で応答を誘発することができる遺伝子の発現クローニングのためのXenopus卵子と動物キャップシステムについて説明し、そのような遺伝子のその後の解析技術について議論します。このシステムは、幅広い遺伝子産物の機能同定に役立ちます。...

用いた機能クローニング<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;卵母細胞発現システム

この記事では、切片で免疫蛍光染色を用いて、 アフリカツメガエル胚の中枢神経系における異なる神経細胞集団を可視化するための便利で迅速な方法を提示します。...

でプライマリ神経発生を評価します<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚用いた免疫染色

このプロトコルは、脈管構造を視覚化し、 Xenopus tropicalisにおけるその複雑性を定量化する蛍光ベースの方法を実証する。インビボでの心臓血管発達を研究するために、遺伝的および/または薬理学的操作の後、胚の拍動する心臓に蛍光色素を注入した後、数分後に血管を撮像することができる。...

の胚性血管新生の可視化と定量分析<em&gt;ツメガエル</em

透明ゼブラフィッシュ胚の卵黄への異種移植のプロトコルについて、シンプルで迅速な病期分類法によって最適化されています。注射後の解析には、生存率と、フローサイトメトリーによる異種移植細胞の疾患負荷の評価が含まれます。...

透明ゼブラフィッシュ胚における腫瘍異種移植解析のための簡便、迅速、効果的な方法

成体Xenopusにおけるアクセシブルな組織を包括的にサンプリングするための効率的な技術

学ぶアニマルキャップ移植アッセイによる組織決定の仕組み。Xenopus laevis胚で遺伝子産物が原始表皮を特定細胞運命へ誘導できるかを検証し、異所性組織形成を観察する発生生物学の手法です。

でアニマルキャップの移植（ACT）アッセイを用いて組織の決定アフリカツメガエル

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