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- まず、カルベニシリンと1ミリモルのIPTGを添加して、S基礎培地を含む培養フラスコを制御および試験します。成長段階1の幼虫(L1幼虫とも呼ばれる)の入ったチューブを数分間回転させます。次に、上清を取り除き、2マイクロリットルのL1を寒天プレートに置きます。プレートを解剖顕微鏡の下に置き、幼虫の数を数えます。
非特異的なRNAiプラスミドを保有するRNAi細菌をコントロールフラスコに、遺伝子標的RNAiを有する細菌を試験フラスコに添加します。追加される細菌の量は、ワームの数に比例する必要があります。
適切な酸素供給を確保するために、幼虫を絶えず振って成長させます。幼虫はバクテリアを食べます。幼虫の内部では、小さな干渉RNAが標的遺伝子によって生成された相補的なmRNAに結合し、タンパク質発現を阻害します。最後に、関心のある表現型についてワームを調べます。
プロトコル例では、液体培養で、daf-2遺伝子を標的とするRNAiでL1幼虫を治療します。
- 治療を開始するには、添付のテキストプロトコルに記載されているように、207.45ミリリットルのS基礎培地と追加の試薬を2,800ミリリットルのFernbach培養フラスコに加えます。カルベニシリン1ミリリットルあたり50マイクログラムとIPTG1ミリモルの最終濃度を加え、フラスコをメンブレンスクリューキャップで閉じます。
L1を摂氏25度のインキュベーターから取り出し、15ミリリットルのチューブに移します。L1sを1,900倍gで3分間遠心分離します。回転後、上澄み液を取り除きます。顕微鏡下で、2マイクロリットルあたりのL1を数え、少なくとも9滴から得られた数値を平均
化します。次に、前のステップで準備した4つのFernbach培養フラスコに、若いワームコレクション用の50,000匹のワームと老化したワームコレクション用の100,000匹のワームを追加します。次に、線虫の数に比例して、コントロールRNAi細菌と目的の遺伝子のRNAi細菌を追加します。
バクテリアを追加した後、S基底で完全な線虫培養を行い、総容量を300ミリリットルにします。採取するまで、150 RPMの振とうインキュベーターで25°Cでワーム培養物をインキュベートします。
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