0 閲覧数 • 3:50 分 • April 30th, 2023
- 循環腫瘍細胞(CTC)は、原発腫瘍に由来し、血液循環に入るがん細胞です。ほとんどのCTCは、表面に付着することなく血流中で生存することができます。したがって、ほとんどのがん患者の血液から直接検出できます。
血中のCTCは、腫瘍が体内に広がっていることを示している可能性があるため、CTCを特定することでがんの進行を理解するのに役立ちます。まず、麻酔をかけた大腸がんマウスモデルを採取し、心臓穿刺で血液を採取します。血液を密度勾配培地を含む円錐形のチューブに移し、遠心分離して血液成分を分離します。
血漿を含む最上層を廃棄し、界面に存在する末梢血単核細胞画分(PBMC)を別のチューブに集めます。次に、PBMC細胞に抗EpCAM抗体を添加し、蛍光顕微鏡で観察します。循環CTCは、上皮細胞接着分子またはEpCAMとして知られる細胞マーカーを発現します。したがって、抗EpCAM抗体は、EpCAM陽性のCTCの特定に役立ちます。
CTC を収集し、さらにダウンストリーム分析のために保存します。次のプロトコルでは、結腸直腸癌マウスモデルの血液の末梢単核細胞画分からEpCAM発現CTCを特定します。
- 適切な実験エンドポイントで循環腫瘍細胞を単離するために、チューブあたり5ミリリットルの密度勾配培地で15ミリリットルの円錐管を満たし、腫瘍担体動物から収集した全血サンプルを密度勾配層に慎重に移します。
遠心分離により細胞を分離し、単核細胞を含む界面を慎重に回収します。単核細胞を新しい15ミリリットルチューブにピペットで移し、2回目の遠心分離を行い、続いてPBSで2回洗浄します。2回目の洗浄後、ペレットをEDTAを添加した200マイクロリットルのPBSに再懸濁し、各サンプルに4マイクロリットルの抗EpCAM抗体を加えて、暗闇で氷上で20分間インキュベートします。
次に、疎水性バリアペンを使用して、サンプルごとに1つの滅菌6センチメートルのペトリ皿に約1センチメートルの円を描き、各円に700マイクロリットルのピッキングバッファーを追加し、続いて50マイクロリットルの細胞懸濁液を追加します。顕微鏡を使用して細胞の密度を確認し、サンプルが約5分間沈殿するのを待ちます。次に、細胞のドロップでEpCAM陽性をスクリーニングし、マイクロマニピュレーターを使用して目的の細胞を50マイクロリットルの適切なバッファーに移し、その後のダウンストリーム分析に使用します。
本記事では、大腸がんマウスモデルの血液から循環腫瘍細胞(CTC)を単離および同定する方法について解説します。CTCは腫瘍の転移を示すため、がんの進行を理解する上で極めて重要です。
マウス大腸がんモデルの全血から循環腫瘍細胞(CTC)を単離することで、転移能や腫瘍細胞の播種を直接的に解析することが可能になります。このワークフローは、下流の分子解析および表現型解析に向けた希少細胞集団へのアクセスを提供し、前臨床腫瘍学における予測の信頼性を向上させます。CTC単離を探索パイプラインに統合することで、メカニズム的なリスク低減を促進し、トランスレーショナルなバイオマーカー戦略に有用な知見をもたらします。
このCTC分離プロトコルは、in vivo腫瘍モデルと下流の分子解析を橋渡しする、前臨床研究のディスカバリー・コンティニュアムに適合します。
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最終更新:22 8月 2026