Name: ポリカプロラクトン、エラスチン、コラーゲンを使用してネイティブ動脈アーキテクチャを模倣するためにトライレイヤーエレクトロスピニング：予備的研究 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-01-04T16:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 47 s
Description: 学ぶ三層エレクトロスピニング法によりポリカプロラクトン、エラスチン、コラーゲンを用いて動脈壁のネイティブ構造を模倣する方法。機械的特性を評価し、血管移植片の開発に応用する。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

我々は、資金調達のために米国心臓協会中部大西洋のアフィリエイトを（0555407U、GLB）に感謝いたします。

<ol><li>エレクトロスピニングする前に、コラーゲンは、6ヶ月のウシ真皮から、酢酸ベースのプロセスを使用して抽出する必要があります。この抽出されたコラーゲンは、その後解散、沈殿、およびdialysisの複数形のそれに続く一連の精製される。一度コラーゲンを凍結乾燥され、エレクトロスピニングプロセスを開始できます。 </li><li>ポリカプロラクトン（PCL）、エラスチン（ELAS）、及びコラーゲン（COL）：3つの材料がたちこめている。これらの材料は別々にそれぞれ100 mg / mlの、200 mg / mlの、および70 mg / mlの濃度で1,1,1,3,3,3ヘキサフルオロ-2 - プロパノール（HFP、TCIアメリカ）に溶解されます。 </li><li>材料は98-2-0 PCL - ELAS - COL（内膜）、45-45-10、55-35-10、および65-25-10 PCL - ELAS - COLの体積比が少なくとも5つの異なるシンチレーションバイアル中でブレンドされています（メディア）、および70-0-30 PCL - ELAS - COL（外膜）。 </li><li>バースト、縫合糸の保持、およびコンプライアンステストのための多層人工血管を3〜1構成からエレクトロスピニングされたまま一軸引張試験および個々の層のコンプライアンステストに、材料のそれぞれは、個別にエレクトロだった。一軸引張試験の足場が平坦で長方形であった（2.5 cm幅X 10.2 cm厚× 0.3 cmの長さ）個々の層と多層の移植をelectrospinするために使用される直径2mmのマンドレルからは、試験試料を打ち抜きのために余りに小さかった。 </li><li>個々とマルチレイヤの両方エレクトロスピニングの場合は、ポリマー溶液は、18ゲージ鈍先端針付きプラスチック3ミリリットルBecton Dickinson社製の注射器に充填した、と一連の診療所の速度でシリンジポンプの上に置く。多層エレクトロレートは転移と層に応じて変化している間、個々のエレクトロスピニングのレートは、4ミリリットル/時間に設定されていました。流量とボリュームは、このような通りであった：内膜は4ミリリットル/時間の速度でエレクトロであり、0.5mlの容積は2ml /時間ごとに0.2 mlの内膜と中膜注射器の両方を組み合わせて、遷移が続きます。内膜注射器は、遮断され、内側層を2ml /それぞれの時間ではポリマーの溶液0.2mlに対して、メディアと外膜の間の遷移に続いて4ミリリットル/ hrで0.6ミリリットルのためにスピンさせた。最後に、メディアを停止し、外膜を4ml /時で0.4 mlのスピンさせた。 </li><li>すべてのサンプルは前にどんなテスト1〜18時間、50 mMのEDCで架橋された。 </li><li>一軸引張試験は、24時間PBSで水和oneエレクトロスピニングシートから6つのサンプルで実施した。 &quot;ドッグボーン&quot;型のサンプルは、エレクトロマットから打ち抜き、100 Nのロードセルと10.0 mm /分の延長率とのMTS Bionix 200のテストシステムでテストされました。ピーク応力、弾性率、および破断時のひずみはTestWorksのバージョン4を用いて計算した。 </li><li>縫合糸保持テストは、50 Nのロードセル（MTS Systems社）とMTS Bionix 200テストシステム上で37℃で24時間PBSに浸し、6種類のエレクトログラフト、° C、より6枚の内径管状試験片を実施したと米国規格協会2で説明した手順でストレートに基づき150.0ミリメートル/分の延長率。 5から0までの商業PDS II紫のモノフィラメント縫合糸は、試料の端から2 mmを配置し、縫合糸は、移植片を通して引っ張っていたまで延長された。ピーク負荷はTestWorksのバージョン4を使用してグラム - 力で記録された。 </li><li>破裂強度試験は、6つの異なるエレクトロ移植から6つのサンプルで実施した。バーストチューブ、長さ2-3 cmは、デバイスに接続されている、と2から0絹縫合糸で固定さ1.5ミリメートル直径の乳首に装着、PBSで水和した。空気は、チューブは2バーストまでの5 mmHgの/ sの速度で圧力を増加させる、システムに導入されました。結果は、チューブが破裂したときのmmHgの中の圧力として報告されます。 </li><li>ダイナミックコンプライアンスは、シミュレートされた生理的条件下で3cmの長さで6種類のエレクトログラフトから取られた6枚の内径管状移植のために決定した。個々の層と多層のチューブ状構造の両方が、同じ条件下でエレクトロスピニングとテストされました。試料は37℃のPBSで満たした組織成長の技術により開発された機械的な刺激（ITEMS）バイオリアクター℃に介してインテリジェントティッシュエンジニアリングで試験したバイオリアクターは、移植片の内側に、50分の90の3つの異なる圧力レベル、80分の120に1Hzの周期的な圧力変化を提供し、110分の150 mmHgの収縮期/拡張期2を検討した、3。 </li></ol>代表的な結果エレクトロスピニングのプロトコルが正しく行われている場合、最終製品は、ソフト、シームレス管の層の間に剥離のない初期の兆候としてください。一軸引張試験、破裂強度試験、縫合糸の保持テスト、およびコンプライアンスのテストが実行されると、結果は、内側層の剛性が増大するにつれて、エラスチンの減少量と、関連する機械的性質は、硬めのチューブを示す必要があることを示す必要があります。

<ol><li>McClure, M. J., Sell, S. A., Barnes, C. P., Bowen, W. C., Bowlin, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cross-linking+Electrospun+Polydioxanone-Soluble+Elastin+Blends%3A+Material+Characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Engineered+Fibers+and+Fabrics%22%5BJournal%5D)">Cross-linking Electrospun Polydioxanone-Soluble Elastin Blends: Material Characterization.</a> Journal of Engineered Fibers and Fabrics. 3, 1-10 (2008).</li>
<li><a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Cardiovascular+implants+-+Vascular+graft+protheses%22">Cardiovascular implants - Vascular graft protheses</a>. VP20, AAMI Press. Bethesda, MD. (1994).</li>
<li>McClure, M. J., Sell, S. A., Simpson, D. G., Walpoth, B. H., Bowlin, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+three-layered+electrospun+matrix+to+mimic+native+arterial+architecture+using+polycaprolactone%2C+elastin%2C+and+collagen%3A+A+preliminary+study%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomater%22%5BJournal%5D)">A three-layered electrospun matrix to mimic native arterial architecture using polycaprolactone, elastin, and collagen: A preliminary study.</a> Acta Biomater. , (2010).</li>
</ol>

何人かの著者は、米国および本稿で提示に関する技術を保留中の国際特許を持っている、そしてこの技術は、器官形成、（株）にライセンス供与されている

この研究の最も重要な部分は、エレクトロスピニングプロセスです。 3月1日入力 - 出力のノズルを使用する場合は、アーチ形のと電荷損失が発生する可能性があります。これが発生した場合、回転しているポリマーに関連付けられている電圧は溶接、&quot;ウェット&quot;繊維を引き起こすと三層のそれぞれの間の剥離を作成し減少します。したがって、一貫性の電位は、理想的な多層チューブを得るために不可欠です。 コンプライアンスの不一致は、小径のレベルでグラフト閉塞の主な原因の一つです。多層人工血管を開発するには、ネイティブ動脈の自然な生体力学と建築を模倣できるようなものに向かって調整する移植片の特性機能を提供しています。足場は細胞浸潤のための十分な細孔サイズに加えて、劣化を受ける一方、将来における多層血管移植片の進行の処理ステップとして、私たちの研究室はこのような層の剥離可能な限り制限を調査します。これをテストするには、in vitroでの劣化試験における無細胞と細胞の両方は、静的および動的な文化の下で実行されます。これらのテストは、渡り鳥足場の機能とどのよう...

<table><tbody><tr><td>ポリカプロラクトン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>エラスチン</td><td>Elastin Products Company</td><td></td><td></td></tr><tr><td>コラーゲン</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>酢酸</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TRIS</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6 L Avanti J-HC 遠心機</td><td>Beckman Coulter Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,1,1,3,3,3 ヘキサフルオロ-2-プロパノール</td><td>TCI America</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3 ml Becton Dickinson シリンジ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CZE1000R ラックマウント電源</td><td>Spellman</td><td></td><td></td></tr><tr><td>高圧シリンジポンプ</td><td>Cole-Parmer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド</td><td>Pierce, Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>70 % エタノール</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ImageTool 3.0 ソフトウェア</td><td>UTHSCSA提供シェアウェア</td><td></td><td></td></tr><tr><td>走査型電子顕微鏡</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MTS Bionix 200 試験システム</td><td>MTS Systems Corp.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TestWorks バージョン 4</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Intelligent Tissue Engineering via Mechanical Stimulation (ITEMS) バイオリアクター</td><td>Tissue Growth Technologies</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

ポリカプロラクトン、エラスチン、コラーゲンを使用してネイティブ動脈アーキテクチャを模倣するためにトライレイヤーエレクトロスピニング：予備的研究

Tri-layered Electrospinning to Mimic Native Arterial Architecture using Polycaprolactone, Elastin, and Collagen: A Preliminary Study

ネイティブ動脈を通じて、コラーゲンとエラスチンは、機械的なバックボーンを提供する血管の破裂を防止し、拍動性変形下での回復を促進する、重要な役割を果たす。本研究の目的は、45-45-10のブレンド、55から35とエラスチンとコラーゲンの添加によりポリ（カプロラクトン）（PCL）で構成される多層エレクトロ導管を作製することによって、ネイティブ動脈の構造を模倣することでした - 10、65-25-10 PCL - ELAS - COL組織再生に資する維持しながら、ネイティブ動脈組織を示す機械的性質を実証する。全体の移植と個々の層は、一軸引張試験、動的コンプライアンス、縫合糸の保持、および破裂強度を用いて分析した。 11.8 MPaの - 一軸結果が2.0の平均弾性率の範囲を明らかにしながら2.8パーセント/ 100 mmHgの、 - コンプライアンスの結果は、内側/中間層への変更は、0.8に至るまで全体の移植片のコンプライアンス値を持つ全体的な移植片の動作を変更したことを明らかにした。係数とコンプライアンスデータの両方がネイティブ動脈の範囲内の値を表示します。数学的モデリングは、層の剛性の変化が全体の円周方向壁応力をどのように影響するかを示すために、そして設計支援として、材料の最高の機械的な組み合わせを実現するために実装されました。全体的に、結果は、移植片がレイヤーのプロパティを変更することにより、三層構造を模倣するように設計することができることを示した。

本研究の目的は、動脈壁のネイティブ三層アーキテクチャを模倣することでした。これを達成するために、エレクトロスピニングは3-1（入力 - 出力）ノズルを使用することで採用し、ポリカプロラクトン、エラスチン、コラーゲンのブレンドされた。

天然の動脈全体において、コラーゲンとエラスチンは重要な役割を担っており、機械的な骨格を提供し、血管の破裂を防ぎ、回復を促進しています...

本実験の全般的な目的は、異なる層の材料特性の変化が、グラフト全体の機械的特性にどのように影響するかを観察することです。これは、天然および合成ポリマー溶液を調製し、最適なエレクトロスピンニング条件を決定することで達成されます。第2段階として、溶液を特定の比率で混合し、目的とする材料特性の変化を実現させます。次に、溶液を円筒状のマンドレル上に電界紡糸し、機械的特性が異なる多層構造を作製します。コンプライアンス、破断強度、縫合保持力、単軸引張試験、および数学的解析に基づいた機械的特性の変化を示す結果が得られます。こんにちは、マイケル・マクルーアです。本日は、グラフトの3層構造エレクトロスパン電場紡糸法についてお話しします。単一の血管グラフトなどの他の手法と比較した際の本手法の主な利点の一つは、個々の層における材料特性を微調整でき、それによって材料全体の機械的特性を制御できる点にあります。エレクトロスパンを行う前に、酢酸ベースのプロセスを用いて、6ヶ月齢の牛真皮からコラーゲンを抽出します。抽出されたコラーゲンは、その後、一連の溶解、沈殿、および透析を経て精製されます。エレクトロスパンの手順のために、凍結乾燥コラーゲンを少なくとも 500 milligrams 回収してください。次に、20 mLのシンチレーションバイアルを用いて、150 mgのモノマーペレットを量り取り、50 mLの1,1,1,3,3,3-ヘキサフルオロ-2-プロパノールに溶解させて、100 mg/mLのポリカプロラクトン溶液を調製します。同様の手順で、200 mg/mLのエラスチン溶液7 mLと、7 mg/mLのコラーゲン溶液を調製します。その後、5本のシンチレーションバイアルを使用し、各バイアルに計5 mLのPCL、エラスチン、コラーゲン溶液を以下の体積比で混合します。動脈内膜を模したPCL:エラスチン:コラーゲン＝98:2:0、動脈中膜を模した45:45:10、55:35:10および65:25:10、そして動脈外膜を模した70:0:30です。次に、3 mLの18ゲージ鈍端針を使用し、3 mLの溶液をシリンジポンプに充填します。各PCL-エラスチン-コラーゲン溶液の個別の材料特性に従い、吐出速度を4 mL/hに設定し、計3 mLを吐出させます。これらの溶液を矩形のマンドリル上に電界紡糸し、PCL、エラスチン、コラーゲンのポリマー溶液を用いて多層構造のグラフトを作製します。電界紡糸速度は、移行層および各層の紡糸に応じて変化させます。内膜用のポリマー溶液は、流速 4 mL/h で 0.5 mL 分を紡糸します。続いて、内膜用と中膜用の両方のシリンジを組み合わせた移行層を、それぞれ 0.2 mL、流速 2 mL/h で紡糸します。次に、内膜用シリンジを停止し、中膜層を 4 mL/h の流速で 0.6 mL 分紡糸します。続いて、培地用シリンジとadventis用シリンジの間で、ポリマー溶液0.2 millilitersをそれぞれ2 milliliters/hourの速度で移行させます。最後に、培地用シリンジを停止し、adventisを4 milliliters/hourの速度で0.4 milliliters分、電界紡糸し続けます。電界紡糸後、各サンプルに50 millimolar EDCを使用し、さらなる試験を行う前に18時間かけて架橋させます。電方も紡糸材料の一軸引張パラメータを試験するには、まず電方も紡糸シートを1×PBS 15 mLに入れ、ペトリ皿内で24時間水和させます。次に、標点距離7.5 mm、最も狭い部分の幅が2.5 mmのドッグボーンパンチを用いて、電方も紡糸マットから6つのサンプルを打ち抜きます。この形状にすることで、材料の破断が最も狭い部分で起こることが保証されます。次に、MTS Bionics 200試験システムを用い、100 Nのロードセルおよび分速10 mmの伸長速度で、電極BUNサンプルを試験します。試験用ソフトウェアを使用して、各材料製品の最大応力、弾性係数、および破断ひずみを算出します。多層グラフトの縫合保持力を試験するために、直径2 mm、長さ3 mmの電極スポンジ管状検体を6つ採取し、37 °Cのインキュベーター内で1×PBSを入れたペトリ皿に24時間浸漬させます。次に、50 Nのロードセルを使用し、伸長速度を150 millimeters per minuteに設定します。MTX bionic 200システムを用いて縫合保持強度を試験するには、市販の5-0 PDS II バイオレット モノフィラメント糸を配置します。キャリパーを用いてサンプルの端から2 mmの位置を測定し、縫合します。その後、グラフトが縫合糸から抜け出すまで伸展させ、TestWorks Version 4を用いて最大荷重をgfで記録します。電解紡糸グラフトの破裂強度を試験するために、直径2 mm、長さ2〜3 cmの電解紡糸管状検体をさらに6個採取し、37 °CのPBS中で24時間水和させます。水和後、デバイスに取り付けられた直径1.5 mmのニップルにチューブを装着し、グラフトとニップルの端をサージョンノットで結んで2-0シルクサutureで固定します。次に、破裂試験システムに空気を導入し、チューブが破裂するまで5 mmHg/sの速度で圧力を上昇させます。チューブが破裂した時の水銀柱ミリメートル（mmHg）としての圧力で、破裂強度のデータを収集します。最後に、6つの異なる電界紡糸グラフトから、直径2 mm、長さ3 cmに切断した管状グラフトを6本採取し、動的コンプライアンスを評価します。サンプルをPBS中で24時間水和させます。37 °Cにて。カスタムメイドの直径 1.5 mm のニップルにグラフトを装着し、2-0 シルク縫合糸を用いてサージョンノットで固定する。これらのグラフトを、Tissue Growth Technologies社によって開発された、機械的刺激によるインテリジェント組織工学バイオリアクターに設置する。バイオリアクターに37 °CのPBSを500 milliliters充填します。バイオリアクターを設定し、グラフト内部に1 hertzの周期的な圧力変化を与え、収縮期・拡張期血圧として90/50、120/80、150/110 millimeters of mercuryの3つの異なる圧力レベルでテストします。エレクトロスピンニングのプロトコルが正しく実施されていれば、最終製品は、ここに示すように、層間の剥離の初期兆候が見られない、継ぎ目のないソフトなチューブになります。比較のために、層間剥離したチューブをここに示します。この画像は、特定のPCL・エラスチン・コラーゲン混合物を含む内膜、中膜、外膜の各層における、接線方向のピーク応力および破断ひずみの単軸引張試験値に関する情報を提供しています。傾向として、PCL含有量の増加に伴いピーク応力と接線弾性係数は増加し、一方で破断ひずみは減少することが示されています。縫合保持強度の結果がここに示されており、E-P-T-F-Eが最高の縫合保持強度を示し、65:25:10が破線で示された外在静脈の標準値に最も近い結果となりました。比較として、非生存豚の大腿動脈およびE-P-T-F-Eが試験されました。このグラフに示されている破裂圧力から、55:35:10および65:25:10の材料が最も高い破裂圧力を持つことがわかります。これは、米国国家規格協会（ANSI）が市販目的のすべての血管グラフトに要求している1,600 mmHgという基準に近い値です。最後に、3つの異なる平均動脈圧における内部半径から算出したコンプライアンス試験により、中膜層のみのPCL含有量を増加させると、3種類すべての生理学的圧力においてコンプライアンスが段階的に低下することが示されました。本研究において最も重要な部分は、法制化のプロセスです。3対1の入力・出力を使用すると、ノズルのアーキン電荷損失が発生することがあります。これが起こると、現在電界紡糸されているポリマーに伴うバルジが減少する場合もあります。これにより、繊維が濡れた状態で融着したり、3つの層の間で剥離が生じたりすることがあります。したがって、三層構造の血管グラフトを電界紡糸する際には、一定の電位を維持することが不可欠です。

tri-layered-electrospinning-to-mimic-native-arterial-architecture

Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

エレクトロ足場は、組織工学アプリケーションのためのポストプロダクションを処理することができます。ここでは、複雑な足場を回転するためのメソッドを（連続した回転で）記述し、厚い足場（マルチレイヤーによる熱を使用するか、水蒸気アニール）を行うために、無菌性（無菌製造又は殺菌のポストプロダクション）を達成するために、適切な生体力学的特性を達成するために。...

組織工学のためのエレクトロ繊維のポスト処理

ポリ（グリセロール - ドデカン）という小説の生分解性ポリマーから新たに設計されたコレクタを経由して、より大きな沈着領域にまたがるエレクトロ長繊維（PGD）の合成及び製造が報告された。繊維は、マウス多能性幹細胞に由来する細胞の増殖を支持することができた。...

マウス胚性幹細胞からの神経組織エンジニアリングのためのポリエレクトロ繊維状足場（グリセロール - ドデカン）

ここでは、繊維のグラデーション組織とのエレクトロスピンナノファイバー足場を作製し、細胞形態/方向を調節することでアプリケーションを探求するプロトコルを提示する。ナノファイバー足場の物理的および化学的性質に関して勾配が生物医学分野での幅広い用途を提供する。...

繊維組織における階調の電界紡糸ナノファイバー足場

動物モデルは、組織改変された移植片を評価するための重要なツールです。この論文では、前十字靭帯組織工学で使用するためのエレクトロスピニング生分解性ポリマーグラフトを調製するためのプロトコルと、ラットモデルに移植するための外科的プロトコルを示します。...

エンジニアード前十字靭帯移植片の評価のための無胸腺ラットモデル

生体材料技術の進歩により、3次元のマルチセルタイプのコンストラクトの開発が可能になりました。私たちは、気道の主要な構造細胞を培養するための3つの個別の足場を作製するエレクトロスピニングプロトコルを開発しました...

三層のための3つのユニークな環境を提供するために、エレクトロスピニング法を適応させます<em&gt;インビトロ</em&gt;気道壁のモデル

二次元および三次元の超疎水性高分子材料は、生分解性ポリマーをエレクトロスピニングまたはエレクトロスプレーして調製し、類似の組成の低表面エネルギーポリマーと混合します。...

バイオメディカル応用のための超疎水性高分子材料を製造します

このプロトコルでは、直接書き込みモードで溶けるポリマー エレクトロスピニング足場を作製する包括的なガイドラインとして提供しています。我々...

組織工学的応用の制御可能な形態の三次元 Poly(ε-caprolactone) 足場のエレクトロスピニング記述を溶かす

エレクトロスピニング ラットモデルにおける最適化された構造を有する人工血管の移植

提示された方法は、3次元(3D)足場(例えば、心臓弁小葉)における生体模倣繊維構造を工学するための革新的な方法を提供する。3Dプリントされた導電性形状を使用して、形状と寸法を決定しました。繊維配向および特性は、層ごとに個別に調整可能であった。1つのセットアップで複数のサンプルを製造できます。...

3Dプリンティングとエレクトロスピニングを組み合わせて、生体模倣心臓弁リーフレットを製造

メルトエレクトロスピニングライティング(MEW)、ポリカプロラクトン(PCL)スキャフォールド、フィブリンハイドロゲルをhiPSC由来の心筋細胞および線維芽細胞と組み合わせた3D心筋組織を作製するための再現性の高い方法を紹介します。この手法は、スキャフォールドアーキテクチャを正確に制御し、前臨床薬物試験や心疾患モデリングに適用できます。...

ポリカプロラクトン足場およびhiPSC由来心細胞の溶融エレクトロスピニングライティングを用いたヒト心筋組織作製

学ぶ三層エレクトロスピニング法によりポリカプロラクトン、エラスチン、コラーゲンを用いて動脈壁のネイティブ構造を模倣する方法。機械的特性を評価し、血管移植片の開発に応用する。

ポリカプロラクトン、エラスチン、コラーゲンを使用してネイティブ動脈アーキテクチャを模倣するためにトライレイヤーエレクトロスピニング：予備的研究

さらに動画を探す