ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1 EX -オボ文化プロトコル。： <ol><li>受精鶏卵をインキュベート<ol class="lroman"><li>受精鶏卵は13℃で保存できますCを最大5日間インキュベーション前に開発を開始せずに。赤のワインクーラーは、この温度を維持することができます。 </li><li> 72時間の37.5での連続的なロッキングの間に60％恒湿インキュベーター° Cでインキュベーション卵鈍い面を上に。 </li></ol></li><li>ハンモックを準備する（図1a） <ol class="lroman"><li>塗りつぶし¾ 9オンスのプラスチックのコップの暖かい滅菌水で。定期的な9オンスカップは、8cmの上部直径を有している。我々は、このサイズがここで紹介する長い時間培養アプリケーションに最適であることがわかった。 </li><li>約20cmのラップをしがみつくカット。円周のまわりのラバーバンドを配置することによって、カップの上に貼付。プラスチックは、水の上に分散させる必要があります。バンド周りの余分なプラスチックをカット。我々は、輸送中に卵黄の分割の結果、それは卵黄の付着を防止するため、このアプリケーションのための最も適切なものにラップをしがみつく発見。 </li><li> 70％エタノールで湿らせたキムワイプ（キンバリークラーク社）とプラスチックを拭きます。 </li></ol></li><li> 72時間のインキュベーション後にインキュベーターから卵を取り除く。 </li><li> 70％エタノール接液キムワイプで表面を拭いて卵を滅菌する。 </li><li>胚の適切な配置（図1b）のための1-2分のために水平に卵を産む。卵のカートンを水平に卵を産むために使用することができます。胚は、1〜2分後に上に回転します。 </li><li>層流フード内で無菌的にハンモックの上に胚を移す。 <ol class="lroman"><li>卵（図1c）の下側に小さなへこみがあるまでシャープなエッジ（金属製のバケツやガラスのビーカーの端など）を使用して、静かに卵をタップします。覚えておいて、胚は、上側に配置されている。 </li><li>くぼみの反対側に親指を置くと（図1d）離れて水平にシェルを引き出します。 </li><li>胚と同様にアルブミンハンモック（図1E）上に卵黄を置きます。アルブミンは、それが長い文化の実践のための胚に栄養を提供するだけでなく、システムを移動することによって誘発される衝撃を吸収するために卵黄の周りに湿し水環境を提供します。ハンモックの下の水は、水の循環のヒーターが使用されている場合、胚は、撮像時の輸送中に地面に平行に保ち、熱の伝導体として機能することを確実にします。 </li><li>転送が正しく実行されている場合、胚はすでに一番上に配置する必要があります。されていない場合は、アンシャープ、滅菌オブジェクト（閉じた曲線ハサミのすなわち鈍先端）と方向的に愛撫胚が上に回転するように卵黄を使用してください。 </li><li>胚を密封するためにカップの上に直径10cmのシャーレを置きます。 </li></ol></li><li> 37.5でのインキュベーターセットに配置カップの文化℃の携帯用インキュベーターを使用する場合は、蒸留水で満たされた1月2日9オンスのカップを置くと、〜で湿度を保つ60％（図1F）。 </li><li>胎生7日目を超えて培養胚の場合、粉砕卵殻片を骨の発達と成熟のためのカルシウム源として胚の周縁部に点在してください。 </li></ol>外インキュベーターイメージング/操作のためのアクセサリー機器： 循環水浴をインキュベーション温度を維持するために、家の中に建てられましたながらイメージングまたは操作（図3）。カップに合うことができる水浴は水の貯水池への適切なサイズのチューブを介して接続されている。抵抗ヒータは、水の温度に従って、手動で調節されている貯水槽の水を加熱する。ウォーターポンプは、水を循環させる。 Pictoral表現はultrasongraphy / florescent顕微鏡（図3）を介して画像処理しやすさを表しています。 <img src="/files/ftp_upload/2154/2125fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。ハンモックとハンモックにニワトリ胚の転送の準備。 <img src="/files/ftp_upload/2154/2125fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。代表的な結果- 。EX OVO培養技術を介して成長し、異なる段階のニワトリ胚胚HH 17以降からは、この手法を使って成長させることができる。 <img src="/files/ftp_upload/2154/2125fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。理想的な開発の温度で胚を保つために元卵培養系と組み合わせて使用する水循環システムの概略図と代表的な写真。 2。選択したアプリケーション： I.マイクロインジェクションこの胚培養では、ソリューションがコントラストに基づくイメージング（すなわち、蛍光顕微鏡、マイクロ計算地形など）（図4）のために血管系に注入する必要があるマイクロインジェクションのアプリケーションに適しています。以下のマイクロインジェクションのプロトコルは、次のとおりです。 <ol><li>注射apparaを準備TUS <ol class="lroman"><li>ファッションは、マイクロフォージを使用して、斜め先端のマイクロニードルに0.75 IDのガラスキャピラリーチューブを引っ張った。必要なチップのサイズは、所望の標的静脈径/流量に依存します。 </li><li> 0.03インチIDのシリコンチューブにシリンジを接続してください。 </li><li>注入する溶液でチューブをロードし、チューブにマイクロニードルを接続してください。 </li><li>シリンジホルダーまたはシリンジポンプにマイクロマニピュレータと注射器の上にマイクロニードルを置きます。 </li></ol></li><li>カップに滅菌水を追加し、それによって胚を上げる。我々は、血管（すなわち、卵黄血管）に針の適切な浸透のために、水平方向の浸透が必要であることを経験した。これは、胚はカップの縁と同じ平面上にある必要があります。 <ol class="lroman"><li>胚の下にプラスチックを保持しているゴムバンドを取り出してください。 </li><li>優しくプラスチックの片側を持ち上げて、カップにいくつか滅菌水を加える。 </li><li>再びプラスチックの上にゴムバンドを固定します。 </li></ol></li><li>胚の血管への解決策を注入。我々の経験では、ソリューションが卵黄の容器に注入されると、マイクロニードルは出血を引き起こすことなく効率的な血流を維持するために、血管の直径の約1 / 10サイズにする必要がありました。 <ol class="lroman"><li>気泡のない形成を確実にしないマイクロニードルへの解決策をポンプ。 </li><li>選択された容器の上にマイクロニードルの先端を合わせます。卵黄血管の場合は、フォークのエリアを選択すると、容器を貫通する最大面積を与える。 </li><li>船に向かって針を押してください。船は最初にリトラクトします。針が貫通したら、灌流を開始します。流れる血の色は血流に変更する必要があります。色の変化が見られない場合、針が血管外に浸透している場合があります。容器の色の変化が見られるまで同時にソリューションをポンピングしながらその場合には、徐々にニードルを引っ込める。灌流が完了すると、容器の外マイクロニードルを引っ込める。 </li></ol></li></ol><img src="/files/ftp_upload/2154/2125fig4.jpg" alt="図4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図4"> 図4：EX - OVO培養ニワトリ胚の血管系への蛍光色素のマイクロインジェクション。 II。顕微手順 - 左心房ライゲーションこのEX - OVO文化のセットアップでは、胚への完全なアクセシビリティを提供するため、ニワトリ胚への外科的なアプリケーションの実行に最適です。以下の例のテクニック、左心房ライゲーション（LAL）（図5）ためのプロトコルです。手順は、約24時間培養期間（HH24）に行われます。 <ol><li>ノットをオーバーハンドの準備〜10から0ナイロン縫合糸を使用して、0.5 mmの直径を。 </li><li>細かい鉗子で、局所的に胚を介して絨毛膜と尿膜膜を除去し、胚の左側に表示されていることそれが垂直方向にそのような回転に戻ってから胚を持ち上げます。 </li><li>細かい鉗子を使用して、左心房を介して心膜を取り除く。 </li><li>左心房を介して結び目の位置を合わせ、それを締めます。左側に元の血流の約75％を禁止するように結び目は、その接続する必要があります。 microscissorsと結び目の端をカットし、慎重に余分な縫合糸を除去し捨てる。 </li><li>元の位置（上右側）に戻す胚を回転させる。 </li><li>偽のコントロールは、同じ手順が含まれますが、縫合糸は、ただ通過し、関連付けられていないされます。効果的なLAL治療（75％収縮）が24時間後に手術にてさせていただきます、と失格胚は除外されます。 </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2154/2154fig5.jpg" alt="図5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図5"> 図5：コントロールと左心房の連結されたニワトリ胚矢印は、連結された胚の約75％小型である左心房を示しています。

<ol><li>Zamir, E. A., Czirok, A., Cui, C., Little, C. D., Rongish, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesodermal+cell+displacements+during+avian+gastrulation+are+due+to+both+individual+cell-autonomous+and+convective+tissue+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Mesodermal cell displacements during avian gastrulation are due to both individual cell-autonomous and convective tissue movements.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 19806-19811 (1980).</li>
<li>Ehrman, L. A., Yutzey, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lack+of+regulation+in+the+heart+forming+region+of+avian+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Lack of regulation in the heart forming region of avian embryos.</a> Dev Biol. 207, 163-175 (1999).</li>
<li>Clark, E. B., Hu, N., Rosenquist, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+conotruncal+constriction+on+aortic-mitral+valve+continuity+in+the+stage+18%2C+21+and+24+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Effect of conotruncal constriction on aortic-mitral valve continuity in the stage 18, 21 and 24 chick embryo.</a> Am J Cardiol. 53, 324-327 (1984).</li>
<li>deAlmeida, A., McQuinn, T., Sedmera, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+ventricular+preload+is+compensated+by+myocyte+proliferation+in+normal+and+hypoplastic+fetal+chick+left+ventricle%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Increased ventricular preload is compensated by myocyte proliferation in normal and hypoplastic fetal chick left ventricle.</a> Circ Res. 100, 1363-1370 (2007).</li>
<li>Nakamura, H., Funahashi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Introduction+of+DNA+into+chick+embryos+by+in+ovo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Introduction of DNA into chick embryos by in ovo electroporation.</a> Methods. 24, 43-48 (2001).</li>
<li>Butcher, J. T., McQuinn, T. C., Sedmera, D., Turner, D., Markwald, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transitions+in+early+embryonic+atrioventricular+valvular+function+correspond+with+changes+in+cushion+biomechanics+that+are+predictable+by+tissue+composition%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Transitions in early embryonic atrioventricular valvular function correspond with changes in cushion biomechanics that are predictable by tissue composition.</a> Circ Res. 100, 1503-1511 (2007).</li>
<li>McQuinn, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-frequency+ultrasonographic+imaging+of+avian+cardiovascular+development%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">High-frequency ultrasonographic imaging of avian cardiovascular development.</a> Dev. Dyn. 236, 3503-3513 (2007).</li>
<li>Korn, M. J., Cramer, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Windowing+chicken+eggs+for+developmental+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Windowing chicken eggs for developmental studies.</a> J Vis Exp. , (2007).</li>
<li>Auerbach, R., Kubai, L., Knighton, D., Folkman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+procedure+for+the+long-term+cultivation+of+chicken+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">A simple procedure for the long-term cultivation of chicken embryos.</a> Dev Biol. 41, 391-394 (1974).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

光アクセスと鳥類の胚の実験は、卵の殻の制約のため困難である。のウィンドウが大幅に注入し、顕微鏡を使った手術のアプローチ8のアクセス可能な微小血管の数を制限します。結果としてのみ初期胚を操作して連続観測が不可能であることができる。長期的な文化9を防止胚での表面張力の不十分な制御のためのペトリ皿を使用して初期のEX - OVOの文化は、使用が制限さでした。我々は最近、許容表面tenstion 7を維持する六角形の重さのボートを使用してこのテクニックを改善し、これらの文化は、輸送に困難でした。ここで紹介するテクニックは、この問題を解決し、大幅にマイクロインジェクションし、外科的処置を含む、用いることのできる実験手法とイメージング技術の種類を拡大する。研究は後で形態形成イベントを理解することに焦点を当てとして、この技術は現在、実験的に継続的に勉強することは不可能な開発のイベントの監視と変調が可能になります。

<table><tbody><tr><td>受精したホワイトレグホン鶏卵</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Model GB1, Avery Incubators, Hugo CO</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>サランラップ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>キムワイプス</td><td>Kimberly-Clark Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ゴムバンド</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>温めた滅菌水</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>9 oz プラスチックカップ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>直径 100 mm ペトリ皿</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1602N サーマルエアー</td><td>GQF Manufacturing</td><td></td><td></td></tr><tr><td>フルオレセイン標識デキストラン (2 MDa, リン酸緩衝生理食塩水中 1% w/v)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロフォージ</td><td>Glassworx, Inc, St Louis MO</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ガラスキャピラリー管 (内径 0.75 mm)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>マイクロマニピュレーター</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>Model M3301L</td><td></td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td>Z20</td><td></td></tr><tr><td>精密ピンセット 55-forceps</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10-0 ナイロン手術用縫合糸</td><td>Ethicon Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>チューブ</td><td>VWR international</td><td></td><td>外径 1mm</td></tr><tr><td>3 mL シリンジ</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>200 &amp;mu;L ピペッターおよびピペットチップ</td><td>VWR international</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

アン ex - ovo</emイメージングとマイクロサーアプリケーションに適して>ニワトリ胚培養システム

An ex-ovo Chicken Embryo Culture System Suitable for Imaging and Microsurgery Applications

正常と不正な形式の胚発生を促進遺伝子と微環境要因間の関係を理解することは新たな治療戦略を発見するための基本です。イメージング技術の進歩は、身体の計画の組織と成熟の定量的な調査を有効にしているが、後の段階の胚の形態形成にはあまり明確ではない。ニワトリ胚のための文化と手術操作の容易さのこのアプリケーションのための魅力的な脊椎動物の動物モデル系です。初期胚は、細胞のパターニングと運命学の1,2のための完全な光アクセスを可能にするろ紙のリング、上に短い時間のために培養することができる。このような心臓の形態形成などの勉強を高度な発達過程は伝統的に卵殻3-5の窓を通して行われますが、この手法は、ウィンドウのサイズに起因する光アクセスを制限している。我々は以前までの超音波検査6,7を経由して高分解能のイメージングを有効にして10日間、にのために六角形の重船の文化胚EX - OVO全体を簡単に計測する手法を開発した。これらの文化は、ライブの実験で使用可能なイメージングツールの種類を制限する、輸送することが困難でした。ここでは、費用対効果の高い、ポータブル環境室との改善されたシェルレス培養系を提示する。卵は、部分的に滅菌水で満たされたプラスチック製のコップに円周方向に貼付ポリウレタン膜（ラップしがみつく）によって作成されたハンモックに割れていた。ハンモックと水の下の力学が輸送によって誘発される振動を減衰させる助けながら、ハンモックの円周と深さの寸法は、両方の表面張力を維持するために重要でした。水浴を循環させ、小さなフットプリントは、実験中に連続的な温度制御を可能にするために開発されました。我々は、形態形成の欠陥または遅滞なく、少なくとも14日間この方法における培養胚に能力を発揮し、いくつかの顕微およびイメージングアプリケーションでこのシステムを採用しています。

この記事では、我々は長期的な有効にするシンプルな方法論を提示<em&gt; EX - OVO</em&gt;鳥類の胚培養。この手法は、鳥類胚における完全な光のアクセシビリティおよび/または無菌輸送を必要とする縦の実験に最適です。

アン EX - OVO</emイメージングとマイクロサーアプリケーションに適して>ニワトリ胚培養システム

正常な胚発生および形態異常を伴う胚発生を駆動する遺伝的要因と微小環境要因の間の関係を理解することは、…にとって不可欠です。

X ovo 鶏胚培養システムにおいて、シェルレス鶏胚培養を調製することで、胚発生の研究が可能になります。手順は、受精卵を入手し、37.5 °Cで72時間インキュベートすることから始まります。成長中の胚を含む卵黄を保持するためのハンモックを準備します。次に、卵黄をハンモックに転移させることで、殻の外で胚発生を継続させることができます。この手法は、脈管系へのマイクロインジェクション、超音波検査、および微小外科手術に適用でき、正常な条件および摂動条件下で胚がどのように発達するかを明らかにすることができます。こんにちは、私はAkshay Shakerです。コーネル大学生物医学工学科のJonathan Butcher教授が率いる心血管発達バイオエンジニアリング研究室の修士課程学生です。本手法の、in ovo 卵培養などの従来法に対する主な利点は、胚への完全な光学的アクセスが可能であることと、損傷なく容易に輸送できることです。こんにちは、Char Hinです。私はコーネル大学生物医学工学部のJonathan Chu研究室、心血管発達バイオエンジニアリング研究室の博士研究員です。この手法は、胚発生過程において心疾患がどのように進行するかなど、発生生物学分野における重要な疑問を解決するのに役立ちます。本手順を開始する前に、すべての器具を70% ethanolで拭いて滅菌してください。まず、9オンスのプラスチックカップの4分の3まで、温めた滅菌水を満たします。必要数だけ同様に繰り返します。一般的な9オンスのカップは上部直径が8 cmであり、本手法で提示する長期培養アプリケーションに最も適したサイズです。次に、20 cmの長さのラップを切り出します。温かい滅菌水を満たした9オンスのプラスチックカップの上部をラップで覆い、輪ゴムで固定します。卵黄の付着による破裂を防ぐことができるため、この用途にはラップが最適です。運搬時は、ラップが水面に触れるように広げてください。バンド周囲の余分なプラスチックを切り取り、プラスチックを拭き取ります。70% ethanolを浸したKim wipeで拭き上げることで、胚を保持するためのハンモックの準備が整います。受精した鶏卵は、孵化させるまで最大5日間、13 °Cで保存することが可能です。発生を誘導させない状態で、赤ワインクーラーを用いてこの温度を維持し、卵を培養可能な状態に保ちます。卵を60%の恒温恒湿インキュベーターに入れ、37.5 °Cで72時間、継続的にロッキングしながら培養することで、胚の発生を誘導させます。卵の準備が整ったら、インキュベーターから取り出します。70% ethanolを浸したKimwipeで拭き、卵を滅菌します。胚を適切に配置するため、卵を卵ホルダーの上に横向きに寝かせ、1〜2分間置きます。一度に6個以上の卵を割ろうとすると困難なため、一度に操作する卵は最大6個までとしてください。室温にさらされる時間が長すぎると、生存率に影響を及ぼす可能性があります。1〜2分後、胚が卵の最上部まで移動します。各胚をハンモックに移行させる際は、ラミナーフローフード内で無菌的に操作してください。まず、金属製バケツの縁やガラスビーカーの縁などの鋭い角を利用して、卵の下側をゆっくりと割ります。胚は上側にあることに注意してください。次に、両親指で左右に引くようにして、卵殻の2つの半分をそっと分離させます。次に、胚、卵黄、および白質をハンモック上に配置します。白質は、システムの移動によって生じる衝撃を吸収し、卵黄の周囲に緩衝環境を提供します。また、白質は長期の培養期間中、胚に栄養を供給する役割も果たします。胚の移送が適切に行われていれば、胚はすでに上側に位置しているはずです。胚が下側にある場合は、クローズドカーブや小型のハサミ、またはその他の同様の鈍的な器具を使用して卵黄を軽く刺激し、卵黄を回転させて胚を上側に移動させてください。胚を胚発生7日目以降まで培養する場合は、骨の発達と成熟のためのカルシウム源として、胚の周囲に砕いた卵殻片を散布してください。胚の移植が完了したら、胚を密封するために直径10 cmのペトリ皿をカップの上に置きます。ハンモックを37.5 °Cに設定したインキュベーターに入れます。ポータブルインキュベーターを使用する場合は、水を満たした9オンスのカップを1〜2個、同様にインキュベーター内に入れます。湿度を約60%に維持することで、胚は成長を続け、顕微外科的なアプリケーションにおけるマイクロインジェクションに使用することが可能になります。この胚培養は、血管系に溶液を注入する必要があるマイクロインジェクションアプリケーションに適しています。まず、マイクロフォージを用いてガラスキャピラリーチューブを延伸し、先端を斜めにカットしたマイクロニードルを作成することで、注入装置を準備します。チップのサイズは、目的の流量によって異なります。マイクロニードルシリンジを内径0.03 inchのシリコーンチューブに接続します。シリンジチューブに注入する溶液を満たし、シリンジマイクロニードルをチューブに接続します。マイクロニードルをマイクロマニピュレーターに、シリンジをシリンジホルダーまたはシリンジポンプに固定します。注入アセンブリの準備が整ったら、胚を回収します。主要血管などの血管に正確に針を刺入するためには、針を水平に貫入させる必要があります。したがって、胚はそれを保持しているカップの縁と同じ高さにある必要があります。胚を上げるには、胚を支えているプラスチックラップを固定しているゴムバンドを外します。プラスチックの一方をそっと持ち上げ、胚をあまり動かさないように注意しながら、カップに水を加えます。次に、ゴムバンドを再びプラスチックの上に配置します。胚が持ち上げられた状態で、溶液を胚の血管内に注入できます。生存している血管に注入する場合、マイクロニードルのサイズは血管径の約10分の1である必要があることに注意してください。出血させずに効率的な灌流を維持するため、まず、内部に空気が溜まらないように溶液をマイクロニードルに注入します。次に、生存血管に対して、マイクロニードルの先端を選択した血管に合わせます。適切な領域を選択することで、血管を標的とするための最大の領域を確保できます。注入部位を決定したら、血管に向かって針を押し込みます。まず血管が後退します。針が貫通したら灌流を開始してください。灌流に伴い、流れる血液の色が変化します。色の変化が見られない場合は、針が血管を貫通してしまった可能性があります。その場合は、血管内で色の変化が見えるまで、溶液を注入しながらゆっくりとマイクロニードルを後退させてください。灌流が完了したら、マイクロニードルを血管から静かに引き抜きます。この胚培養法は、培養4日目に行われる左心房結紮などの微小外科的手法にも適しています。まず、10-0ナイロン手術用縫合糸を用いて、直径0.5 mmの結び目を用意します。微細鑷子（ピンセット）を使用して、胚から絨毛膜と羊膜を取り除きます。胚を背面から持ち上げ、胚の左側が上になり、アクセス可能な状態になるように垂直に回転させます。その後、左心房上の心膜を除去します。結び目を左心房の上に合わせ、ピンセットで両側から保持して引っ張りながら締め付けます。この際、左側への元の血流の約75%が遮断されるように結びます。マイクロシザーで結び目の端を切り、余分な縫合糸を慎重に取り除いて廃棄します。最後に、胚を回転させ、右側を上にした元の向きに戻します。ここでは、先ほど実演したように X ovo で培養された異なる段階の胚を示しています。水循環式ヒーターを使用することで、イメージングや微小外科的処置の際に必要となる長時間にわたる環境条件の維持が可能です。ex ovoで培養したニワトリ胚は、マイクロインジェクションに適しています。本実験では、ex ovoで培養したニワトリ胚の血管系に蛍光染料を注入しました。ex ovoで培養したニワトリ胚は、マイクロサージェリーにも適しています。本実験では、ex ovo 培養したニワトリ胚に対して左心房結紮術を実施しました。ex ovo ニワトリ胚の培養に習熟すれば、1個の胚につき約5分で完了させることができます。このビデオを視聴することで、イメージングや顕微手術への適用に適した ex ovo ニワトリ胚培養の作製方法、および培養物の輸送が必要な場合の対処法について十分に理解できるはずです。

an-ex-ovo-chicken-embryo-culture-system-suitable-for-imaging

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

このビデオでは、新しい文化、最大24時間までのニワトリ胚が卵の外側に培養される方法を示しています。このメソッドは1つが、マウスのE7 - 9に相当する期間を早期に開発を（14 SOMの原条。）勉強することができます。この技術のアプリケーションでは、in...

初期のニワトリ胚をex vivo（新文化）の文化のための方法

ニワトリ漿尿膜（CAM）は、血管新生と腫瘍形成を研究するユニークな、自然に免疫不全支える文化環境です。このビデオの記事では、ニワトリの異なるステップを示しています...

チック EX卵文化と EX卵 CAMアッセイ：それが実際にどのように動く

このビデオは、トランスジェニックマウス胚からの眼球運動切片のex...

トランスジェニックマウス胚からの眼球運動切片のEx Vivo培養とイメージング

スライス培養、遺伝子的および薬理学的摂動による胚の操作を容易にする。しかしながら、培養条件は、通常の開発では、スライスの低減環境内で進めることができることを確認する必要があります。我々は、少なくとも24時間にわたって進行する通常の脊髄の開発が容易にプロトコルを示している。...

ニワトリ胚脊髄スライス培養プロトコル

神経前駆有糸分裂は、神経新生の重要なパラメータである。神経前駆糸分裂の我々の理解の多くは、固定された組織の分析に基づいている。胚性脳スライス内のライブイメージングは​​、制御された環境で、高い時間·空間分解能で有糸分裂を評価するための汎用的な手法である。...

発生中のマウス胚性皮質における有糸分裂のライブイメージング

発生中にニワトリの胚を見てアクセスすることは困難な場合があります。私たちは、シンプルで費用対効果が高く、教室や研究現場で簡単に使用できるex ovo法を開発しました。この方法は、胚発生の後期段階(HH...

最適化された元OVO開発の進んだ段階にニワトリ胚の培養

ここでは、透過光と蛍光顕微鏡を用いたタイムラプスイメージングのためのニワトリ胚ex...

長期用水中フィルターペーパーサンドイッチ例OVOタイムラプスイメージング

このプロトコルでは、造影剤増強超音波イメージングとマイクロバブル媒介薬物送達を研究するためのin...

造影剤増強超音波イメージングおよびマイクロバブル媒介薬物送達研究のためのin vivoモデルとしてのニワトリEx Ovo胚および絨毛尿膜血管の調製

この論文の全体的な目標は、ニワトリ胚への外因性物質の卵管細胞内注入 において...

オヴォで ニワトリ胚における血管内注射

このプロトコルは、ニワトリ胚の神経形成中の神経板組織の機械的特性を縦断的に監視するために開発されました。これは、ブリルアン顕微鏡とステージ上のインキュベーションシステムの統合に基づいており、 卵子...

ニワトリ胚の神経管閉鎖中の組織の機械的進化のモニタリング

学ぶニワトリ胚のエクスオーボ培養法を用いた発生生物学研究。37.5℃で72時間培養した受精卵をハンモックに移し、殻外で胚発生を継続させる技術です。マイクロインジェクションやマイクロサージェリー、超音波イメージングに適用可能で、正常および異常条件下での胚発生を詳細に観察できます。

アン EX - OVOニワトリ胚培養システム

さらに動画を探す